我们提供了一种可重复的方法，通过过继转移针对胰岛抗原的特异性初级 CD4+ T 细胞，在两周内诱导小鼠产生 1 型糖尿病（T1D）。
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本文内容
摘要
摘要
非肥胖型糖尿病（NOD）小鼠在出生12周后会自发发展为自身免疫性糖尿病，是目前研究最广泛的人类1型糖尿病（T1D）动物模型。通过对经照射的受体小鼠进行细胞转移研究，已证实T细胞在该模型T1D发病机制中起关键作用。本文介绍一种简便的方法，通过将来自糖尿病前期、表达胰岛特异性T细胞受体（TCR）BDC2.5转基因NOD小鼠的纯化初级CD4+ T细胞过继转移至NOD.SCID受体小鼠，可快速诱导T1D。该技术的主要优势在于：分离和过继转移致糖尿病T细胞可在同一天内完成，无需对受体小鼠进行照射，且在T细胞转移后2周内即可诱发高发病率的T1D。因此，与依赖来自糖尿病NOD小鼠的异质性T细胞群体或克隆的方法相比，本方法可更快速地开展T1D发病机制及治疗干预的研究。
引言
NOD小鼠可自发产生自身免疫性糖尿病，已被广泛用作人类1型糖尿病（T1D）的动物模型1,21型糖尿病在NOD小鼠中的发病机制特征表现为，从3-4周龄开始，树突状细胞和巨噬细胞浸润胰岛，随后T细胞和B细胞也相继浸润。这一非破坏性胰岛周围炎阶段导致胰岛素生成性胰腺β细胞缓慢而进行性地被破坏，最终在4-6月龄时发展为明显的糖尿病。3脾细胞转移4,5，CD4+6,7 或 CD8+8,9 已发现，来自糖尿病NOD小鼠的T细胞可在免疫缺陷的NOD小鼠中介导糖尿病的发生，表明胰岛反应性T细胞在1型糖尿病（T1D）发病机制中起核心作用。在这些研究中，受体小鼠的糖尿病发展过程较缓慢，通常需数周时间，具体取决于实验条件。类似地，已有报道显示，通过耗时且成本较高的培养方法获得的多种致糖尿病T细胞克隆，在转移至受体小鼠后数周内也可介导糖尿病的发生。7,10随着表达源自CD4或CD8限制性致糖尿病T细胞克隆的TCR转基因小鼠的出现，多家实验室随后证实，此类小鼠的脾脏T细胞能够将糖尿病转移至受体动物11-13具体而言，BDC2.5 NOD 小鼠是转染了 BDC2.5 TCR 基因的转基因小鼠，该 TCR 特异性识别胰腺β细胞中的嗜铬粒蛋白 A（chromogranin A）14-16转移 体外-激活或未激活的来自明显糖尿病或糖尿病前期BDC2.5小鼠的全脾细胞或分选脾....
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方案
1. 从BDC2.5小鼠脾脏和淋巴结中分离T细胞
- 使用6周龄的糖尿病前期雌性BDC2.5小鼠作为致糖尿病性CD4+ T细胞的供体。小鼠应通过尿糖检测确认无糖尿病（见下文）。
- 采用CO2窒息法处死每只小鼠，并在无菌条件下取出脾脏、腋窝和臂部淋巴结。取出脾脏时，先用70%乙醇浸湿毛发，然后剪开并牵拉皮肤。脾脏将呈现为小鼠左侧的暗红色器官。使用小剪刀在腹膜上做约1英寸的切口，用小镊子轻轻夹住脾脏中央部位。尽可能小心地修剪结缔组织和附着的脂肪，然后取出脾脏。
- 将脾脏和淋巴结收集至含有10 ml杜氏改良伊格尔培养基（DMEM）的15 ml锥形管中，并置于冰上。
- 使用无菌10 ml注射器活塞末端，将淋巴器官轻轻压过70 μm细胞筛网（每个筛网处理一个脾脏，或每筛网处理4–6个淋巴结），收集至同一个50 ml锥形管中，以制备单细胞悬液。
在操作过程中，用 1 ml DMEM 多次冲洗每个滤网，以最大程度回收滤网中的细胞。
- 将收集的细胞从50 ml锥形管转移至15 ml锥形管中，在室温下以300–400 × g离心7分钟。
- 为裂解红细胞，弃去上清液，将细胞重悬于5 ml氯化铵-氯化钾（ACK）缓冲液（pH 7.2）中，并将ACK-细胞悬液在室温下孵育5分钟。
- 向ACK-细胞悬液中加入10....
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结果
我们的结果表明，分离出了表达CD62L的转基因BDC2.5细胞，而CD62L对T细胞归巢至次级淋巴器官（如胰腺淋巴结）至关重要。我们的研究结果进一步证明，这种单特异性T细胞群体能够快速且高效地将1型糖尿病（T1D）转移至NOD.SCID受体小鼠。
从BDC2.5小鼠中分离致糖尿病性CD4+ T细胞的过程如图2所示。每只供体小鼠在细胞分选前可获得约5 × 107个来自脾脏和淋巴结的混合细胞。根据所示的设门策略，经流式细胞分选后，每只BDC2.5供体小鼠可获得约2.5 × 106个初始型转基因CD4+ T细胞（CD4+TCR Vβ4+ CD62L+）。
与预期一致，从BDC2.5供体小鼠转移少量CD4+TCR Vβ4+CD62L+细胞（约1 × 106 个细胞/只小鼠）可在11天内使全部NOD.SCID受体小鼠发生1型糖尿病（T1D，发病率为100%），依据为尿糖水平升高（图3）。相比之下，转移异质.......
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讨论
通过将来自糖尿病NOD小鼠或携带致糖尿病T细胞克隆来源的T细胞受体（TCR）转基因小鼠的全脾细胞或T细胞亚群过继转移至受体小鼠，可诱导产生1型糖尿病（T1D），但效率存在差异。本文报道了一种可重复的方法：将经FACS纯化的BDC2.5转基因CD4+ T细胞中的CD62L+细胞转移至NOD.SCID小鼠，可在两周内以100%的发生率诱导受体小鼠产生T1D。
此处所述BDC2.5 T细胞转移模型的特定优势包括：与自发性糖尿病需数月时间相比，1型糖尿病（T1D）的诱导时间极短，且相较于致糖尿病性T细胞亚群或T细胞克隆介导的糖尿病转移通常所需的数周时间，该模型效率更高。此外，由于BDC2.5 T细胞具有高度均一性，仅需少量纯化的BDC2.5转基因T细胞即可高效且稳定地实现T1D转移。与其他某些T细胞转移方法不同， 体外 在我们的方案中，转导型BDC2.5 T细胞在转移前无需激活。我们这种单特异性T细胞转移方法的另一个优势在于，相较于使用异质性T细胞群体转移糖尿病的其他方案，可更特异性地研究干预胰岛抗原特异性T细胞向靶器官归巢的新型治疗策略。
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披露
所有小鼠均饲养于宾夕法尼亚州立大学医学院的特定病原体-free（SPF）设施中，饲养条件遵循宾夕法尼亚州立大学机构动物护理与使用委员会的指南。
作者声明不存在任何竞争性经济利益。
致谢
感谢 Robert Bonneau 博士和 Neil Christensen 博士提出的有益建议。
本工作由宾夕法尼亚州立大学医学院基金资助。
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材料
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| BDC 2.5 TCR 转基因 NOD 小鼠（NOD.Cg-Tg(TcrαBDC 2.5，TcrβBDC 2.5 | JAX | 004460 | |
| NOD.SCID 小鼠 (NOD.CB17-Prkdcscid/J) | JAX | 001303 | |
| 杜尔贝科改良伊格尔培养基（DMEM） | 赛默飞世尔科技 | SH30022.01 | |
| Bayer Diastix | Fisher Scientific | AM2803 | |
| 15 ml 离心管 | Falcon | 352095 | |
| 50 ml 锥形管 | Falcon | 352070 | |
| 无菌手术镊 | |||
| 无菌小型剪刀 | |||
| 无菌大号剪刀 | |||
| 70 μm细胞滤筛 | Fisher Scientific | 22363548 | |
| 35 μm 细胞滤筛帽管 | BD生物科学 | 352235 | |
| 氯化铵-氯化钾（ACK）缓冲液 | 0.15 M NH4Cl, 1 mM KHCO₃3, 0.1 mM Na2EDTA，pH 7.2，溶于 dH₂O2O | ||
| BD FACSFlow™ 鞘液 | BD 生物科学 | 342003 | |
| FACS 染色缓冲液 | PBS、0.2 mM EDTA、0.5% BSA/FCS，滤膜除菌 | ||
| 相差显微镜 | |||
| 台盼蓝 | |||
| 血细胞计数板 | |||
| 抗CD4（APC）单克隆抗体 | Biolegend | 1005616 | 克隆 RM4-5 |
| 抗TCR Vβ4（FITC）单克隆抗体 | BD 生物科学 | 553365 | 克隆 KT4 |
| 抗CD62L（PE）单克隆抗体 | BD 生物科学 | 553151 | 克隆 MEL-14 |
| 细胞分选仪 | BD 生物科学 | 例如 BD FACSAria III | |
| 加热灯 | |||
| 小鼠固定器 | |||
| 1 ml 注射器 | Becton Dickinson | 309602 | |
| 18-1½ 规格针头（无菌） | Becton Dickinson | 305196 | |
| 27½ 规格针头（无菌） | 贝克顿·迪金森 | 305109 |
参考文献
- Makino, S., et al. Breeding of a non-obese, diabetic strain of mice. Jikken Dobutsu. 29, 1-13 (1980).
- van Belle, T. L., Coppieters, K. T., von Herrath, M. G. Type 1 diabetes: etiology, immunology, and therapeutic strategies. Physiol. Rev. 91, 79-118 (2011....
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重印与许可
