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方法文章

双分子荧光互补的流式细胞术分析:一种高通量定量研究蛋白质-蛋白质相互作用的方法

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DOI:

10.3791/50529

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2013年8月15日

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本文内容

摘要

双分子荧光互补的流式细胞术分析为研究蛋白质-蛋白质相互作用提供了一种高通量的定量方法。该方法可用于绘制蛋白质结合位点图谱,以及筛选调控蛋白质-蛋白质相互作用的因素。

摘要

在研究细胞内蛋白质-蛋白质相互作用的方法中,双分子荧光互补(BiFC)技术相对简单且灵敏。BiFC 技术基于使用一种荧光蛋白的两个非荧光片段(此处使用黄色荧光蛋白变体 Venus)产生荧光信号。将非荧光的 Venus 片段(VN 和 VC)分别与两个相互作用的蛋白质(本例中为 AKAP-Lbc 和 PDE4D3)融合,当发生 VN-AKAP-Lbc-VC-PDE4D3 相互作用时,可在细胞内重新形成具有功能的荧光蛋白,从而产生荧光信号。

双分子荧光互补(BiFC)技术可根据荧光强度提供蛋白质复合物的亚细胞定位信息以及蛋白质相互作用强度的信息。然而,利用显微镜进行BiFC分析以量化蛋白质-蛋白质相互作用强度时,由于蛋白质表达和相互作用存在异质性,该方法耗时较长且具有一定主观性。通过将流式细胞术分析与BiFC技术相结合,可在短时间内准确测量大量细胞中的荧光BiFC蛋白质-蛋白质相互作用信号。本文展示了该方法在绘制PDE4D3中与AKAP-Lbc相互作用所必需区域中的应用。这种高通量方法可用于筛选调控蛋白质-蛋白质相互作用的因素。

引言

据估计,人类相互作用组中存在约 650,000 种蛋白质-蛋白质相互作用,在维持正常细胞功能中发挥着关键作用1,2。除了共免疫沉淀(co-IP)这一从细胞裂解液中研究蛋白质-蛋白质相互作用的金标准方法外,目前已开发出多种蛋白质片段互补检测法(PCA),以提高在细胞内检测蛋白质-蛋白质相互作用的灵敏度3。相关技术包括 Förster 共振能量转移(FRET)、生物发光共振能量转移(BRET)以及双分子荧光互补(BiFC)4,5。BiFC 技术基于两个荧光蛋白片段(本文使用 Venus,一种 YFP 变体)的促进性结合,这两个片段分别与潜在相互作用的蛋白质伴侣融合(本示例中为 AKAP-Lbc 和 PDE4D3)。当目标蛋白质在细胞内发生相互作用时,可形成具有功能的荧光蛋白复合物,从而产生可检测的荧光信号,可通过荧光显微镜在活细胞或固定细胞中进行观察6,7,8。与其他 PCA 方法相比,BiFC 具有较高的灵敏度且技术难度较低,适用于研究活细胞中蛋白质的亚细胞定位。然而,该技术的主要缺点在于,一旦荧光蛋白复合物形成便不可逆转,因此不适合用于研究动态变化的蛋白质-蛋白质相互作用。在本研究中,我们利用 BiFC 技术通过监测 Venus 的荧光强度来绘制 PDE4D3 与 AKAP-Lbc 之间的相互作用位点。与传统的荧光显微镜分析相比(若未采用自动化高通量设备,则该方法耗时且劳动强度大),流式细胞术可在短时间内对异质细胞群体中的数千个细胞进行直接的定....

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方案

1. 细胞转染

  1. 转染前一天接种细胞,进行免疫荧光实验时接种较少数量的细胞。
    1. 用于免疫荧光:在6孔板中,将盖玻片(每孔1片)用0.02%明胶在37 °C下包被至少4小时,用培养基洗涤1次,然后每孔接种1 × 105个HEK 293T细胞于2 ml完全生长培养基中[DMEM培养基(Dulbecco改良Eagle培养基)加10%胎牛血清(FBS)]。
    2. 用于流式细胞术和Western blot分析:在6孔板中每孔接种1.2 × 105个HEK 293T细胞于2 ml完全生长培养基中(或在24孔板中每孔接种0.3 × 105个HEK 293T细胞于0.5 ml完全生长培养基中)。
  2. 根据制造商说明书准备用于转染的DNA:免疫荧光实验使用Effectene(Qiagen),流式细胞术和Western blot分析使用TransIT-LT1(Mirus)。所用DNA量如下表所示。
     24孔板(ng)6孔板(ng)
    CFP-载体10....

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结果

AKAP-Lbc 和 PDE4D3 构建体(图 1B)分别与 VN 和 VC 片段融合。AKAP-Lbc 与 PDE4D3 的相互作用可产生功能性 YFP 荧光(图 1A)。本文采用双分子荧光互补(BiFC)方法绘制 PDE4D3 中 AKAP-Lbc 的结合位点。上游保守区 1(UCR1)、上游保守区 2(UCR2)和催化区(CAT)在 PDE4 家族蛋白中高度保守,因此,使用全长(FL)、UCR1 以及 UCR2 加 CAT 片段筛选 PDE4D3 与 AKAP-Lbc 的结合位点。在 HEK 293T 细胞中表达 VN-AKAP-Lbc 与 VC-PDE4D3 片段可产生不同强度的荧光信号(图 1C)。BiFC 结果表明,UCR1 和 UCR2+CAT 均参与 PDE4D3 与 AKAP-Lbc 的相互作用。AKAP-Lbc 与 UCR1 相互作用产生的荧光强度高于 AKAP-Lbc 与 UCR2+CAT 的相互作用,表明 PDE-UCR1 与 AKAP-Lbc 的结合能力强于 PDE-UCR2+CAT。

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讨论

BiFC 是一种简单且灵敏的蛋白质-蛋白质相互作用研究方法。该方法不能用于发现新的蛋白质-蛋白质相互作用,但特别适用于在细胞内确认蛋白质-蛋白质相互作用并研究其功能特性,例如蛋白质复合物的亚细胞定位、蛋白质-蛋白质相互作用位点的定位,以及筛选能够调节蛋白质-蛋白质相互作用的小分子/多肽。由于 VN 和 VC 片段本身不具荧光,背景荧光较低,从而提高了该检测方法的灵敏度。VN-蛋白质-VC-蛋白质相互作用需要一定时间成熟/稳定,因此观察蛋白质-蛋白质相互作用存在延迟,最佳观察时间点可能需要通过实验经验确定。还应注意的是,VN-蛋白质-VC-蛋白质相互作用不可逆,因此遗憾的是,使用当前的 Venus BiFC 构建体时,该方法不适用于研究蛋白质-蛋白质相互作用的动态动力学过程。

适当的对照对于BiFC分析至关重要。合适的阴性对照包括在相应的BiFC载体中表达不相互作用的蛋白质或非特异性肽段,或者如果可能,使用破坏蛋白-蛋白相互作用的突变体。空的BiFC载体不是良好的对照,因其会导致非特异性的高背景荧光。如果在两种相互作用蛋白之间未观察到BiFC信号,应分析其表达情况。此外,BiFC信号.......

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披露

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

致谢

感谢伊利诺伊大学芝加哥分校(UIC)O'Bryan 实验室对本研究的实验评估与深入讨论。本研究由美国心脏协会资助项目11SDG5230003(资助对象:GKC)以及美国国立卫生研究院国家转化科学促进中心—UIC临床与转化科学中心资助项目UL1TR000050支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
试剂
Dulbecco’s 改良 Eagle’s 培养基(DMEM)Invitrogen11965-092
青霉素-链霉素(青/链),100 倍浓度Invitrogen15070-063
胎牛血清(FBS)Invitrogen16000-044
抗 Flag 抗体SigmaM2, F1804
抗 HA 抗体Covance16B12, MMS-101R
α-微管蛋白SigmaDM1A, T9026
抗 GFP 抗体Clontech632569
细胞培养板,6 孔,组织培养处理Thermo Fisher Scientific130184
HEK 293T 细胞ATCCCRL-11268
质粒大量提取试剂盒,高速型Qiagen12663
Dulbecco’s 磷酸盐缓冲液(DPBS),无菌 1×Invitrogen14190-144
胰蛋白酶-EDTA,0.05%(w/v)Gibco25300
用于流式细胞术染色的聚苯乙烯圆底管BD Biosciences352052
多聚甲醛Fisher ScientificS74337MF
含 DAPI 的 Prolong Gold 抗荧光淬灭封片剂InvitrogenP-36931
Superfrost Plus 显微镜载玻片Fisher Scientific12-550-15
Fisherfinest Premium 盖玻片Fisher Scientific12-548-5P
设备
CO2 气套式培养箱NuAIR DH autoflow
共聚焦显微镜 LSM510 METACarl Zeiss, Inc
电泳及转膜装置Biorad
Cyan ADP 流式细胞仪Beckman Coulter

参考文献

  1. Collura, V., Boissy, G. From protein-protein complexes to interactomics. Subcell Biochem. 43, 135-183 (2007).
  2. Stumpf, M. P., et al. Estimating the size of the human interactome. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 6959-6964 (2008).
  3. Shekhawat, S. S., Ghosh, I. ....

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重印与许可

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