对人类诱导多能干细胞(iPS细胞)、由人类诱导多能干细胞衍生的视网膜色素上皮细胞(iPS-RPE)以及胎儿视网膜色素上皮细胞(fetal RPE)的微小RNA(miRNA)表达谱进行了比较。
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对人类诱导多能干细胞(iPS细胞)、由人类诱导多能干细胞衍生的视网膜色素上皮细胞(iPS-RPE)以及胎儿视网膜色素上皮细胞(fetal RPE)的微小RNA(miRNA)表达谱进行了比较。
本报告的目的是描述比较人类诱导性多能干细胞(iPS细胞)、由人iPS细胞衍生的视网膜色素上皮细胞(iPS-RPE)以及胎儿RPE细胞中微小RNA(miRNA)表达谱的实验方案。这些方案包括通过微阵列分析收集RNA,以及对微阵列数据进行分析,以鉴定在三种细胞类型间差异表达的miRNA。本文还解释了iPS细胞和胎儿RPE细胞的培养方法,并描述了将人iPS细胞分化为RPE细胞所用的实验流程。所介绍的RNA提取技术旨在最大程度地回收极小分子量RNA,以用于miRNA微阵列分析。最后,本文阐述了对微阵列数据进行细胞信号通路和网络分析的方法。这些技术将有助于比较三种不同细胞类型的miRNA表达谱。
干细胞具有无限增殖的能力,并且能够分化为任何一种体细胞类型。将体细胞重编程为多能干细胞的技术发展,已在科研界和临床医学领域引起极大关注,因为个性化组织再生的时代即将到来1诱导性多能干细胞(iPS细胞)具有与胚胎干细胞(ES细胞)相同的无限增殖潜能和多能性,同时避免了与胚胎干细胞相关的伦理争议。此外,患者来源的干细胞不会引发免疫反应,从而显著提高了治疗应用成功的可能性2-3在特定的培养条件下,iPS细胞已被证实可分化为多种不同类型的细胞 体外包括心肌细胞、神经元、胰岛β细胞、肝细胞和视网膜色素上皮细胞(RPE)4-12.
视网膜色素上皮(RPE)是位于视网膜后部的一层特化的色素性上皮细胞,具有多种对视觉健康和功能至关重要的作用,例如吸收散射光、吞噬光感受器外节段以及视黄醇类物质的代谢,以生成视觉发色团。由于损伤或疾病导致的RPE功能障碍会严重影响光感受器的健康和视觉功能,这一点在由RPE病变引起的致盲性疾病中得到了证实,例如年龄相关性黄斑变性(AMD)、Stargardt病和视网膜色素变性(RP)13。目前尚未实现真正有效的恢复视力的治疗方法,而用健康的RPE替代病变的RPE可能是防止视力丧失的最佳选择14-15。诱导多能干细胞来源的RPE(iPS-RPE)是一种潜在的细胞来源,可用于替代受损的RPE。iPS-RPE表达典型的RPE特异性蛋白,如LRA....
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1. 培养试剂和培养板的准备
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iPS 细胞(图 1A)在分化条件下培养,以诱导其分化为 iPS-RPE 细胞。iPS-RPE 表现出典型的 RPE 表型,呈六边形色素细胞形态(图 1B),与胎儿 RPE(图 1C)相似。
为了更好地理解miRNA在iPS细胞向iPS-RPE分化过程中可能发挥的作用,进行了miRNA表达的微阵列分析。使用mirVana miRNA分离试剂盒从iPS细胞、胎儿RPE细胞和iPS-RPE细胞中提取总RNA,以最大程度保留小分子RNA。RNA在杂交至微阵列芯片前进行定量并检测纯度。采用代表1,205种人类miRNA和144种病毒miRNA的探针,分析各组样本的miRNA表达情况。通过分析信号强度,确定各样本中各miRNA的相对表达水平。利用所得数据比较iPS-RPE与iPS细胞及胎儿RPE细胞之间的miRNA表达谱。生成热图以直观展示各组间miRNA表达的差异情况图2A)。与iPS-RPE相比,在iPS中差异表达的miRNA共有83个,其中47个在iP.......
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综上所述,本报告描述了诱导多能干细胞(iPS细胞)、iPS来源的视网膜色素上皮细胞(iPS-RPE)以及胎儿RPE细胞的培养方法。由iPS细胞衍生的RPE在形态和功能上均与胎儿RPE相似。iPS-RPE还表达典型的RPE相关基因,包括RPE65、CRALBP、PEDF和LRAT16。为了进一步表征这些细胞,提取RNA并进行微阵列分析,以鉴定差异表达的miRNA。信号强度分析显示,在胎儿RPE与iPS-RPE的比较中检测到的差异表达miRNA数量最多,提示iPS-RPE可能更为成熟。后续研究计划采用RT-PCR验证这些结果。
在本实验过程中,有几个关键步骤必须谨慎操作,以确保检测成功并获得准确的数据。第一个关键步骤发生在iPS细胞的培养过程中。iPS细胞必须保持在多能状态,以维持其干性。需每天仔细检查细胞是否出现分化迹象。未分化的iPS细胞以紧密的多细胞集落形式生长,具有较高的核质比和明显的核仁。iPS细胞集落具有清晰的边界,中心区域由多层细胞构成。分化迹象包括集落边界模糊、细胞形态不均一,以及出现明显的特定细胞类型(如神经元和成纤维细胞)。已分化的单个细胞可通.......
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作者无任何利益冲突需要披露。
本文作者的观点或主张仅为个人见解,不应被视为官方立场,也不应解释为美国陆军部或国防部的观点。
本研究是在作者 Whitney A. Greene、Alberto Muñiz 和 Ramesh R. Kaini 于美国陆军医学研究与发展司令部(USAISR)担任国家研究委员会博士后研究协会成员期间完成的。
微阵列实验由位于圣安东尼奥的德克萨斯大学健康科学中心Greehey儿童癌症研究中心微阵列核心实验室和生物信息学部门完成。
本工作由美国陆军临床康复医学研究计划(CRMRP)和军事作战医学研究计划(MOMRP)资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| mTeSR1 培养基 + 5X 补充剂 | Stem Cell Technologies | 5850 | |
| DMEM/F12 | Life Technologies | 11330-032 | |
| 2-β-巯基乙醇 | Sigma | M-7154 | |
| 非必需氨基酸 | Hyclone(Fisher) | SH30853.01 | |
| 无血清替代物 | Life Technologies | 10828-028 | |
| 庆大霉素 | Life Technologies | 15750-060 | |
| MEM 培养基 | Life Technologies | 10370-021 | |
| N1 补充剂 | Sigma | N-6530-5ML | |
| 牛磺酸 | Sigma | T-8691-25G | |
| 氢化可的松 | Sigma | H0888-1G | |
| 胎牛血清 | Hyclone(Fisher) | SH3008803HI | |
| 三碘甲腺原氨酸钠盐 | Sigma | T6397 | |
| 氢氧化钠 | Sigma | S5881 | |
| 胎儿视网膜色素上皮细胞培养基 RTEGM 试剂盒 | Life Technologies | 195406 | |
| 分散酶 | Life Technologies | 17105-041 | |
| Matrigel | BD Biosciences | 354277 | |
| 磷酸盐缓冲液 | Hyclone(Fisher) | 10010-023 | |
| 胰蛋白酶 | Hyclone(Fisher) | 25200-072 | |
| Miltenyi Biotec 洗涤缓冲液 | StemGent | 130-092-987 | |
| Miltenyi Biotec 冲洗缓冲液 | StemGent | 130-092-222 | |
| 抗 TRA-1-60 磁珠分选试剂盒 | StemGent | 130-095-816 | |
| Miltenyi Biotec 细胞分选柱 | StemGent | 130-021-101 | |
| RNeasy 微量提取试剂盒 | Qiagen | 74004 | |
| QIA shredder | Qiagen | 79654 | |
| RNA 6000 Pico LabChip 试剂盒 | Agilent | G2938-90046 | |
| 人 miRNA 微阵列 v16 | Agilent | G4471A |
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