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方法文章

黑腹果蝇Drosophila melanogaster幼虫盘的解剖与免疫染色

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DOI:

10.3791/51792

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2014年9月20日

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本文内容

摘要

成体结构 果蝇 来源于一种称为成虫盘的囊状结构。对这些成虫盘的分析有助于深入了解多种发育过程,包括组织决定、区室边界建立、细胞增殖、细胞命运特化以及平面细胞极性。本实验方案用于制备适用于光学/荧光显微镜观察的成虫盘。

摘要

在果蝇Drosophila melanogaster的胚后发育过程中,很大一部分发生在一组囊状结构——成虫盘(imaginal discs)中。这些成虫盘发育为成体果蝇体内绝大多数的成体结构。本文描述了一种经过优化的实验方案,用于回收这些成虫盘并使其适用于抗体、转录报告基因和蛋白质捕获标记的分析。该方案最适合用于成虫盘等较薄的组织,但也可稍作修改后用于较厚的组织,如幼虫大脑和成体卵巢。书面协议及配套视频将指导读者/观看者完成三龄幼虫的解剖、组织固定以及成虫盘的抗体处理。该方案也可用于解剖较年轻的的一龄和二龄幼虫的成虫盘。本方案的优点在于步骤相对简短,并且已针对解剖后组织的高质量保存进行了优化。另一个优点是所采用的固定程序与绝大多数识别Drosophila蛋白的抗体具有良好兼容性。根据我们的经验,仅有极少数敏感抗体不适用于此固定方法。在此类情况下,补救措施似乎是改用其他固定液配方,同时继续遵循我们在解剖步骤和抗体孵育方面所设定的操作规范。

引言

一个多世纪以来,果蝇(Drosophila melanogaster)一直是研究发育、行为和生理学的首选模式系统。果蝇的发育可分为两个主要阶段:胚胎期和胚后期,其中后一阶段的大部分过程发生在称为成虫盘的单层上皮组织中1-3。 成虫盘的示意图最早由奥古斯特·魏斯曼(August Weismann)于1864年发表,作为其关于昆虫发育的综合性专著的一部分1。这些成虫盘在胚胎发生期间开始发育,在幼虫阶段进行模式形成,在蛹早期经历大规模组织溶解后仍能存活,并最终形成成体果蝇中大部分的成体结构1-14。在幼虫发育过程中,每个成虫盘需做出多个关键决定,包括细胞命运、形状和大小。在第一和第二龄幼虫阶段,成虫盘需确定基本命运、建立区室边界、获得正确的形态并产生所需数量的细胞15-16。在第三龄幼虫及早期前蛹阶段,成虫盘继续进行细胞分裂,同时细胞逐步确定其终末命运,完成模式构建16。

在果蝇(Drosophila)发育生物学的早期研究中,成虫盘几乎仅在正常发育背景下进行研究,仅在少数功能缺失或功能获得性突变体能够存活的情况下才被分析。利用X射线诱导有丝分裂重组的方法,使得在幼虫和成体组织中的细胞克隆内分析致死性突变成为可能。随着转基因技术的引入,该方法得到改进,可用于在幼虫和成体组织中分析功能缺失和功能获得性突变。此....

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方案

1. 幼虫的制备

  1. 在35 mm培养皿中加入解剖缓冲液。
  2. 将幼虫放入培养皿中,使其游动数分钟(自清洁步骤)。
  3. 将幼虫转移至硅胶解剖板上的一团解剖缓冲液中。该液滴应位于解剖板的一侧边缘。解剖板由倒入玻璃培养皿中并固化的硅胶溶液构成。
  4. 使用巴斯德吸管,在解剖板中央放置较大体积的解剖缓冲液。
  5. 使用#5镊子,将一只已清洁的单个幼虫从小液滴转移至中央较大的解剖缓冲液中。

2. 幼虫的粗解剖

  1. 当幼虫仍处于大量解剖缓冲液中时,用镊子夹住幼虫。用一对镊子夹住口钩,同时用另一对镊子固定幼虫身体(在体长约1/3处轻柔夹住),使其保持静止。
  2. 稳稳握住夹住口钩附近表皮的那对镊子,同时用第二对镊子迅速将身体其余部分拉离。
  3. 当幼虫开始撕裂时,会感到轻微的张力释放。此时松开镊子,使幼虫的“内脏”自然流出。这有助于保持成虫盘的正常形态,防止其发生变形。
  4. 用一对镊子再次夹住口钩,以固定幼虫前端。使用另一对镊子移除包括内部脏器在内的幼虫下半部(约占整体的2/3)。注意:剩余结构应包含口钩、眼-触角成虫盘、脑半球、腹神经节、唾液腺、部分足成虫盘以及覆盖其上的表皮。
  5. 用镊子小心去除覆盖的表皮、唾液腺、足成虫盘及其他组织。注意:最终仅应保留口钩、眼-触角成虫盘、脑半球和腹神经节(图&#....

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结果

上述方法可稳定地制备出高质量的分析用材料 原位 探针、转录报告基因、蛋白质捕获工具和抗体。在 图1 我们展示了通过该方法常规获得的眼-触角、生殖器、翅、平衡棒和腿成虫盘。这些成虫盘经鬼笔环肽偶联的荧光染料处理,该染料可结合F-肌动蛋白,从而标记每个细胞的轮廓。若组织固定得当,眼成虫盘中的形态发生沟、生殖器、触角和腿成虫盘中同心环状组织褶皱的边缘,以及翅和平衡棒成虫盘的背腹轴均会呈现清晰的边界。若组织固定良好,则抗体、荧光蛋白及 原位 探针也将显示出清晰的图案。以下是几个示例。 图2上方三个图显示了用不同抗体染色的圆盘,下方三个图显示了利用GFP标记细胞群体的圆盘。

眼-触角盘最显著的特征之一是形态发生沟(图 1A),其在组织中表现为沿背腹轴延伸的一道凹陷1, 22。在三龄幼虫期之前,发育中的眼区所有细胞均未形成模式、未分化,且在形态上彼此无法区分。在三龄幼虫期开始时,形态发生沟从眼区的后缘启动,并向前推进至眼-触角边界

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讨论

尽管本方案主要侧重于眼-触角盘的分离及后续处理,但也可用于分离和分析翅、平衡棒、足和生殖盘(图 4)。与其他盘(如眼-触角盘)相比,分离这些盘所需的唯一修改在于粗解剖方法(方案第2节)。第一胸节足(T1)成对位于幼虫前端,可按照眼-触角盘分离方案进行回收。然而,第二胸节足(T2)盘附着于体壁。为分离这些盘,应使用一对镊子夹住口钩(如上所述),同时用另一对镊子夹住动物腹侧体壁(确保夹取位置距口钩约1/3体长处),然后通过撕开腹侧体壁的方式将幼虫剖开,T2足将保留在体壁上。第三胸节(T3)足与翅和平衡棒盘共同组成一个复合体,该复合体也附着于体壁。此时可选择将盘复合体和T2足从体壁上分离,也可在后续固定/抗体孵育步骤中保持体壁-盘复合体完整,并在精细解剖阶段(方案第4节)再分离各盘。对于生殖盘的回收,建议用一对镊子夹住幼虫中段,再用另一对镊子从腹侧中段开始向后端剥离体壁。推荐使用镊子清除所有多余组织,然后用P-200移液器配合切去末端的黄色枪头,将生殖盘转移至固定液中。

该方法最适合厚度有限的组织,例如成虫盘,且当所用抗体具有高滴度和高特异性时.......

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披露

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

致谢

我们感谢 Donald Ready 和 Kevin Moses 教授 JPK 最初的成虫盘解剖技术。我们还感谢 Bonnie Weasner 提供了图 1B中的生殖盘和图 2A中的眼盘,Brandon Weasner 提供了图 3,布卢明顿果蝇品系中心(Bloomington Drosophila Stock Center)提供的果蝇品系,以及发育研究杂交瘤库(Developmental Studies Hybridoma Bank)提供的抗体。CMS 得到了美国国立卫生研究院(NIH)GCMS 培训项目(T32-GM007757)、Frank W. Putnam 研究奖学金和 Robert Briggs 研究奖学金的资助。JPK 得到了美国国家眼科研究所资助项目(R01 EY014863)的支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
Sylgard 184 硅酮弹性体试剂盒Dow Corning184 SIL ELAST KIT 0.5 KG用于制作解剖板的基底
Pryex 玻璃培养皿 150 x 20 mmDow Corning3160-152CO用其盖子作为解剖板
#5 解剖镊Ted Pella525镊子必须保持非常锋利
9 孔表面皿Various Vendors用于固定成虫盘复合体
50 ml 锥形烧瓶Various Vendors
小型搅拌子Various Vendors尺寸需足够小以放入锥形烧瓶中
50 ml 离心管Various Vendors
1.5 ml 微量离心管Various Vendors根据应用选择透明或避光管
微量离心管架Various Vendors
台式旋转混合仪Various Vendors低速设置下 100 μl 体积不应产生飞溅
多聚甲醛Macron Chemicals2-26555-1用作固定剂
磷酸二氢钠Sigma Chemical CoS-3139用于配制解剖和洗涤缓冲液
磷酸氢二钠Sigma Chemical Co71636用于配制解剖和洗涤缓冲液
赖氨酸Acros Organics125221000用于固定液溶液中
高碘酸钠Sigma Chemical CoS-1878用于固定液溶液中
吐温 X-100EMD ChemicalsMTX1568-1用于穿孔处理成虫盘
氢氧化钠EM ScienceSX0593-3用于溶解多聚甲醛
100% 正常山羊血清Jackson Laboratories005-000-121用作封闭溶液
一抗Various Vendors按生产商说明用 10% 山羊血清稀释
二抗Various Vendors按生产商说明用 10% 山羊血清稀释
VectashieldMolecular ProbesH-1000防止样品荧光淬灭
显微镜载玻片Fischer Scientific48312-003
玻璃盖玻片 18 x 18 mmFischer Scientific12-542A
Kimwipe 擦镜纸Various Vendors防止载玻片粘附于硅胶基底
Panit 000 号画笔Various Vendors用于轻柔地将盖玻片覆盖在样品上

参考文献

  1. Weismann, A. Die nachembryonale entwicklung der Musciden nach beobachtungen an Musca vomitoria und Sarcophaga carnaria. Zeit. Wiss. Zool. 14, 187-336 Forthcoming.
  2. Cohen, S. M. Imaginal disc development. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. 747-841 (1993).

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重印与许可

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