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方法文章

小鼠肺功能表型分析 在体 内 肺部弥散能力

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DOI:

10.3791/52216

2015年1月6日

本文内容

摘要

我们介绍了一种快速、简便测量小鼠肺弥散能力的方法,并证明该方法对多种常见肺部疾病的表型变化具有足够的敏感性。由于弥散能力在人类中同样易于测量,因此该指标使小鼠模型具有直接的转化相关性。

摘要

目前,小鼠是用于模拟多种肺部疾病的主要动物模型。为了研究这些病理背后的机制,需要采用能够量化病理变化的表型方法。此外,为了使小鼠模型具有转化医学意义,这类测量方法应当是在人类和小鼠中均易于实施的检测手段。然而,目前文献中很少有肺功能的表型测量方法可直接应用于人类。其中一项例外是一氧化碳弥散量(diffusing capacity for carbon monoxide),这是临床上常规用于人类检测的指标。在本报告中,我们描述了一种在小鼠中快速、简便测量一氧化碳弥散量的方法。该操作包括对麻醉小鼠进行短暂的肺部充气,使用示踪气体,随后进行1分钟的气体分析。我们已测试该方法检测多种肺部病理的能力,包括肺气肿、肺纤维化、急性肺损伤、流感病毒和真菌性肺部感染,以及监测幼鼠肺部的发育成熟过程。结果显示,在所有上述肺部病理状态下,一氧化碳弥散量均显著降低,而在肺部发育成熟过程中则呈现升高趋势。因此,肺弥散量的测定提供了一种肺功能检测手段,具有广泛的应用价值,能够检测现有大多数肺部病理模型中的表型结构改变。

引言

小鼠现已成为用于模拟多种肺部疾病的主要实验动物。为了研究这些病理背后的作用机制,需要采用能够量化病理变化的表型分析方法。尽管已有大量小鼠研究对通气力学进行了测量,但这些测量通常与临床上对人类肺功能的标准评估方法无关。这种情况令人遗憾,因为在小鼠和人类受试者中进行等效测量的能力,有助于将小鼠模型的研究结果更好地转化为对人类疾病的认知。

在人体受试者中,最常见且易于进行的测量之一是一氧化碳弥散量(DLCO)1,2,但在小鼠模型中,该测量却很少被实施。在已有报道的研究中3-7,尚未见后续研究跟进,部分原因在于这些实验操作通常较为繁琐,或需要复杂的设备。另一种方法是采用稳态系统中的一氧化碳重复呼吸法,其优势在于能够对清醒状态的小鼠进行一氧化碳扩散的测量。然而,该方法操作极为繁琐,且测量结果可能因小鼠通气水平以及O2和CO2浓度的变化而产生波动8,9。尽管一氧化碳弥散量检测具有多项优势,但上述困难似乎阻碍了其在小鼠肺部病理检测中的常规应用。

为避免小鼠弥散能力测量中的问题,近期已报道了一种在小鼠中进行该测量的简便方法10。该方法通过快速采集与整个吸入气体体积相等的样本,消除了采集未受污染的肺泡气体这一技术难题。该操作可获得高度可重复的测量值,称为一氧化碳弥散因子(DFCO),其对肺部表型的多种病理变化具有敏感性。DFCO 的计算公式为 1 – (CO9 / COc) / (Ne9 / Nec),其中下标 c 和 9 分别指注入的校准气体以及在屏气 9 秒后采集的气体中的浓度。DFCO 是一个无量纲变量,取值范围为 0 到 1,1 表示所有一氧化碳被完全摄取,0 表示无一氧化碳摄取。

在本演示中,我们将展示如何进行弥散能力的测定,以及如何将其用于记录几乎所有现有小鼠肺部疾病模型中的变化,包括肺气肿、纤维化、急性肺损伤以及病毒和真菌感染。

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方案

注意:所有动物实验方案均经约翰斯·霍普金斯大学动物护理与使用委员会批准。

1. 动物准备

  1. 按照下文步骤2.3所述方法,使用氯胺酮和赛拉嗪麻醉6只C57BL/6对照小鼠,以准备进行DFCO测量。
  2. 采用与对照组相同的操作步骤,准备表1中所列具有不同肺部病理状态的其他小鼠。建立每种模型所需的具体细节参见相关参考文献。对照小鼠及其他病理组小鼠的年龄均为6至12周。

2. 一氧化碳扩散因子(DFCO)的测定

  1. 设置仪器附带的气相色谱模块,用于检测氮气、氧气、氖气和一氧化碳的峰。本应用中仅使用氖气和一氧化碳的数据。
    注意:该仪器使用分子筛色谱柱,载气为氦气,色谱柱膜厚为 12.00 µm,内径为 320.00 µm,长度为 10 m。色谱柱体积为 0.8 ml,但我们使用 2 ml 以确保样品连接管路得到充分冲洗。
  2. 在每个实验日开始时,在对小鼠样品进行测量之前,直接从含有约 0.5% 氖气、0.5% 一氧化碳及余量为空气的混合气体袋中抽取 2 ml 气体样品,并用此样品校准气相色谱仪。
  3. 使用氯胺酮(90 mg/kg)和赛拉嗪(15 mg/kg)对小鼠进行麻醉,并通过无反射性运动确认麻醉效果。在小鼠眼部涂抹兽用眼膏以防止干燥。使用短针套管(成年小鼠用 18 G,幼龄小鼠用 20 G)对小鼠进行气管切开术。
    注意:DFCO 测量在麻醉后 10 分钟内完成,且在任何机械通气或其他操作之前进行。
  4. 对于年龄超过 6 周的小鼠,使用 3 ml 注射器从混合气体袋中抽取 0.8 ml 气体。将注射器连接至气管套管,迅速充气使肺扩张。使用节拍器计时 9 秒,然后迅速抽出 0.8 ml(呼出气体)。
  5. 将抽出的 0.8 ml 呼出气体用室内空气稀释至 2 ml,静置至少 15 秒。然后将整个样品注入气相色谱仪进行分析。
  6. 在分析第一个 DFCO 样品的同时,用混合气体袋中的另一份 0.8 ml 气体再次充盈小鼠肺部,随后以与第一个样品相同的方式处理该样品。取两次 DFCO 测量值的平均值。
    注意:对于低至 2 周龄的小鼠,应使用 0.4 ml 的体积,因为 0.8 ml 对幼龄小鼠肺部而言体积过大。建议对 6 周龄以上小鼠使用 0.8 ml 体积;若某些小鼠需使用 0.4 ml 体积,则在同一研究队列中所有小鼠均应一致使用该体积。
  7. DFCO 的计算公式为 1 – (CO9 / COc) / (Ne9 / Nec),其中下标 c 和 9 分别表示注入的校准气体和经过 9 秒屏气后采集气体的浓度。
  8. 使用单因素方差分析(one-way ANOVA)分析并比较各组小鼠之间的差异,并采用 Tukey 校正法评估多重比较的显著性水平。将 p <0.05 视为具有统计学意义。
    注意:本研究所使用的所有小鼠均参与了涉及后续多次肺通气、肺力学、肺灌洗或组织学检测的实验研究,但这些内容未在此报告。此外,由于所有实验模型中的方法均与对照组小鼠所用方法相同,此处仅展示各种病理模型的结果。有关这些模型的更多信息见补充表格。
  9. 通过深度麻醉过量后实施颈椎脱位或断头法处死动物。如需进一步生物学或组织学处理与分析,可从死亡小鼠中取出肺细胞和/或肺组织。

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结果

图1展示了A、B、C、D、E和F组成年小鼠的DFCO测量结果。在曲霉菌和流感感染模型中,DFCO均出现显著下降,纤维化、肺气肿及急性肺损伤模型中也观察到显著降低。图2显示了G组小鼠在2至6周龄期间随着肺部发育,DFCO随时间变化的发育趋势。在此期间,随着肺的发育,DFCO呈现轻微但显著的升高。在6周时间点,使用较小充气容积的影响也十分明显。雌性小鼠的DFCO倾向于略高,但这种差异仅在5周时间点具有统计学意义。

组别病理或状况备注
AC57BL/6 对照组(8–10 周),n = 6健康小鼠
B经鼻内接种 25 TCID50 流感病毒 A 型(P...

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讨论

在本研究中,我们定义了一种新的指标,用于量化小鼠肺部的气体交换能力。该指标类似于弥散能力,后者是一种常见的临床检测指标,用于测量肺的主要功能,即气体交换能力。弥散能力是唯一一种可在小鼠和人类中均能快速、简便完成的肺功能检测方法。在小鼠肺部疾病检测中,一个主要目标是量化对照组与实验组之间肺功能的变化。为实现这一目标,我们定义并应用了DFCO,以证明其在大多数常见小鼠肺部疾病模型中量化表型变化的能力,包括肺发育过程中的功能变化。

简化小鼠DFCO测量方法所固有的一项假设是,忽略了解剖死腔和器械死腔中未混合吸入气体的影响。然而,如先前所述10,使用0.8 ml的充气容积会在所有测量中引入虽小但一致的误差。该误差的大小取决于充气容积与死腔容积的相对比例。在本方法中,通过消除三通阀或T型连接管中的死腔,并如视频所示,仅用指尖封闭注射器以促进气体转移,从而将此误差降至最低。该操作使各次测量之间具有高度的可重复性。幼龄小鼠所需较小充气容积的影响在图2所示的6周龄小鼠中表现得尤为明显,其中每只小鼠先立即进行0.4 ml的测试,随后紧接着进行0...

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披露

无利益冲突,无可披露内容。

致谢

本工作由 NIH HL-10342 资助

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
气相色谱仪InficonMicro GC Model 3000AAgilent 提供类似型号
18 G 鲁尔短针头Becton Dickenson其他多个供应商也可提供
3 ml 塑料注射器Becton Dickenson其他多个供应商也可提供
聚丙烯气体采样袋SKC1 或 2 L 容量效果良好其他气密性采样袋也可使用
气体钢瓶,含 0.3% Ne、0.3% CO,余量为空气(ME 规格)Airgas, IncZ04 NI785ME3012此为人类 DLCO 检测中使用的标准混合气体
稀释于磷酸盐缓冲液中的流感病毒 A/PR8,剂量为每只小鼠 25 TCID50
猪胰弹性蛋白酶Elastin Products, Owensville, MO5.4 U
博来霉素APP Pharmaceuticals, Schaumburg, IL0.25 U
Escherichia coli LPSSigma L2880每克体重 3 μg;O55:B5
Aspergillus fumigatus (分离株 Af293)分生孢子取自马铃薯葡萄糖琼脂培养基上成熟的菌落

参考文献

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