了鱼喂食实验室生物测定，从海洋生物的组织评估次生代谢产物的Antipredatory活动

通过化学家和生态学家的合作化学生态学的发展。虽然陆地化学生态学的分支学科已经有一段时间了，那海洋化学生态学的只有几十年的历史，但已经提供了重要的见解海洋生物^1-8的进化生态学和群落结构。以水肺潜水和核磁共振光谱的新兴技术的优势，有机化学迅速产生，描述上世纪70年代和80年代，从⁹底栖海洋无脊椎动物和藻类代谢产物的小说出版了大量。假设次级代谢产物必须为某种目的，许多这些出版物没有经验证据冲高重要生态价值属性的新化合物。大约在同一时间，生态学家还采取水肺潜水的来临优势和描述的分布和底栖动物和植物的前身来回的丰度米相对无效的抽样方法，如疏浚。这些研究人员的假设是，任何无柄和软体必须捍卫化学，以避免掠食者¹⁰消费。在努力引进经验什么是关于物种丰度，否则描述工作中，一些生态学家开始从毒性试验¹¹推断的化学防御。大多数毒性测定法涉及的整鱼或其他生物体的脊椎动物组织的粗有机萃取水性悬浮液的曝光，随后确定负责杀死半数试验生物提取物的干重的浓度。然而，毒性试验不效仿其潜在的掠食者自然条件下感知猎物的方式，和随后的研究发现毒性和^12-13适口性之间没有任何关系。令人惊讶的是，在著名期刊出版物使用具有很少或没有。生态技术升相关^14-15，今天，这些研究仍然被广泛引用。而更令人震惊的要注意的是基于毒性数据研究继续出版^16-18。这里所描述的生物测定方法的开发，在20世纪80年代后期，为海洋化工生态学家的生态相​​关的方法来评估antipredatory化学防御。该方法需要一个模型捕食样品从目标生物体的粗有机提取物在营养食品可比矩阵天然浓度，从而提供适口的数据，比毒性数据更加生态有意义。

一般的方法来评估海洋生物的组织的antipredatory活动包括四个重要的标准：（1）一个适当的通才捕食必须馈送测定法中使用，（2）所有极性有机代谢物必须详尽地从所述的组织中提取靶生物，（3）的代谢物必须BE在相同体积浓度混入营养合适的实验食品如在先前从其中提取，并且（4）的实验设计和统计方法必须提供一个有意义的度量，以指示相对于令人厌恶的生物体中发现。

下面的程序是专为评估加勒比海海洋无脊椎动物antipredatory化学防御。我们采用了双带锦鱼，Thalassoma bifasciatum，作为一种模式掠食性鱼类，因为这是种常见的对加勒比海的珊瑚礁，被称为采样底栖无脊椎动物¹⁹各式各样。从目标生物体组织被首先提取出来，然后与一种食物混合物，最后提供给T的组bifasciatum，观察他们是否拒绝提取物治疗食品。使用这种方法测定的数据提供了重要的见解海洋生物^12,20-21，L的化学防御IFE历史权衡^22-24和群落生态学^25-26。

注：本协议的第3步涉及脊椎动物科目。该程序已被设计成动物获得了最人性化的治疗可能和已经批准的机构动物护理和使用委员会（IACUC）在北卡罗莱纳州威尔明顿的大学。

1）组织提取

1. 使用组织是在其天然水，而不是挤压，干涸的或过于潮湿的状态，因为这将改变次生代谢产物的体积浓度。切剁的组织，以片或片可插入到50ml离心管中。注意：新鲜组织可以在某些情况下使用，但它往往是更好地切剁冷冻组织，这是不受挤压时切。
2. 加组织片到30毫升1:1的二氯甲烷1:1混合物（DCM）和甲醇（MeOH）中一个刻度离心管中，直到40 ml的终体积达到。一定要进行涉及转移的所有步骤溶剂在通风橱中有足够的通风。
3. 帽筒并倒转几次，然后在4小时的提取周期反复搅动。注意：在此期间，水结合的MeOH和所得甲醇：水相从DCM相分离。组织被交替地暴露于DCM和MeOH：水作为乳液的试管进行搅拌。
4. 对DCM萃取转移到一个圆底烧瓶中，并使用低热量蒸发至干，在旋转蒸发器（<40℃）。使用最少的溶剂，将干燥的提取物转移到20ml的闪烁瓶中。适合的小瓶用旋转蒸发器适配器和使用低热量再次蒸发至干，在旋转蒸发器（<40℃）。
   注：下一步需要使用自制的压缩器械可通过拧顺序以下项目上的螺纹杆的端部进行组装的：（1）螺母，（2）垫圈，和（3）橡子螺母。垫圈必须或者被穿孔或装，使得它小于50毫升的离心管的内直径。
5. 返回到包含组织和甲醇毕业的离心管：水提取物，通过压缩挤压中提取出来的组织。在甲醇转移：水提取到同一个圆底烧瓶中，并冷冻保存（<10°C）。
6. 加入甲醇到该带刻度的离心管中，直至现在的脱水组织浸没为2至6小时的持续时间的第二提取，然后传输新的MeOH提取到含有甲醇的冷却圆底烧瓶：水提取物。如果有，该组织还没有得到充分提取的任何关注，重复2至6小时的MeOH萃取。
7. 干燥掉MeOH中在旋转蒸发器使用低热量（<40℃）。从圆底烧瓶中含有干燥的非极性提取物中的闪烁小瓶转移剩余的含水提取物，使用MeOH的最小体积冲洗的圆底烧瓶中。
8. Ëvaporate含水提取物用低热（<40℃）在真空浓缩至干。闪烁小瓶现在包含10毫升组织的总干粗有机提取物。疏散用N ₂气的小瓶中，以防止氧化的顶部空间，封紧，并储存冷冻（-20℃）。

2）食品准备

1. 准备冷冻鱿鱼地幔粉末。
   注意：鱿鱼地幔提供营养源即比得上其他底栖无脊椎动物，并且将被用作在2.2以下子步骤的成分。
   1. 在温暖的去离子（DI）水鱿鱼地幔解冻冷冻环，然后原浆他们在一个高速搅拌机。
   2. 倾一薄层泥鱿鱼地幔到浅Cookie表并冷冻（-20℃），然后破冻鱿鱼原浆的片切成小片被冻干。
   3. 冻干冷冻鱿鱼地幔原浆继FR的操作程序EEZE干燥器。
   4. 粉碎所述冻干片鱿鱼地幔原浆在一个高速混合器以形成粉末。
   5. 在通风橱中，倒入粉状鱿鱼地幔到旋转面粉筛子过筛并从细粉分离组织的大块。
   6. 细粉状鱿鱼地幔转移到一个密封的容器。疏散用N ₂气在容器顶部空间，以防止氧化和储存冷冻（-20℃）。
2. 准备食物混合。
   注意：当运行多个连续的试验中，它是实际制备约100毫升食物混合物的，但是本配方可以缩放到更小的体积，如果必要的。
   1. 结合3克藻酸和5g冻干鱿鱼地幔粉用100ml的去离子水的混合物在150毫升烧杯中。用microspatula几分钟剧烈搅拌，直至粉末完全水合和该混合物是均匀的。
      注意：如果需要，食用色素可在此届添加EP：它是比较容易的染料添加到食品混合物，将产生两处理和对照混合物（掩蔽在提取处理的混合物中的提取物的天然色素），而不是试图通过将相匹配的提取物处理的混合物的颜色染到控制混合物。浅绿色或褐色食物颜色，通常希望以掩盖任何颜料的粗提取物。
   2. 装载食品的混合物正是10毫升成毕业的注射器。小心避免在此过程中包含气泡。
   3. 取出20mL闪烁小瓶从冷冻干燥的粗有机提取物。添加两滴MeOH中，然后搅拌该提取物与一microspatula均匀的混合物。
   4. 弹出装载10毫升注射器食品基质的成20mL闪烁小瓶中，并用一个microspatula搅拌使其均匀化提取物的经处理的食品混合物。
      注：它可以帮助排出以较小的增量（ 即注射器，弹出2毫升，均质，则R。EPEAT直到所有10毫升已经均匀）。
3. 准备检测颗粒。
   1. 加载一个非常小的体积的提取物的混合物（约1毫升）中进注射器，并淹没注射器尖端中的0.25M的_氯化钙溶液。喷射注射器的内容物，以形成一个长的，意大利面条样链。
   2. 几分钟后，取出硬化链，把它切成长4毫米小球在玻璃菜板用刀片，然后用清水冲洗在海水中。
   3. 重复步骤2.3.1和2.3.2不包括组织提取物，使控制颗粒。一定要善待控制颗粒与溶剂同等体积（参见步骤2.2.3除甲醇来处理混合物）来控制溶剂的加法。如果阴性对照期望确认试验鱼可以从馈送却步，添加苯甲酸地那铵以2mg ml的浓度^-1到生食混合物^27。

3）适口性生物测定

1. 进行饲养试验与野生捕捞黄相双带锦鱼，Thalassoma bifasciatum，存放在三个实验室水族馆的透明双面车厢组。
2. 递送食物颗粒从海水的使用具有橡胶管的玻璃吸移管的烧杯中。注意：这可能需要几天时间来训练鱼领取食物以这种方式。甲条件刺激（在水族箱玻璃移液器例如几个抽头），该前面食物的递送可能是有帮助训练鱼期望在加入食品颗粒。
3. 进球颗粒。考虑接受粒料如果易于通过鱼消耗。考虑颗粒拒绝，如果至少三次尝试由一个或更多的鱼把它变成自己的口腔后没有吃过，或者沉淀走近后一个这样的尝试忽略。
4. 进球样品。注意：该测定过程被描绘为流程图在图1中的鱼的群组拒食。控制颗粒在协议中的任何一步都没有进一步考虑。有两个潜在的单个测定的运行的结果：样品被接受或拒绝。
   1. 以一个控制的丸粒，以确认该组的鱼是合作。提供了一个处理球。如果鱼接受治疗的小球，比分样品为接受。如果鱼拒绝治疗的颗粒，提供了后续的控制球，以确定是否鱼已经停止喂养。如果鱼接受后续的控制球，比分样品被否决。
5. 复制。鱼的10对各提取物独立团重复检测程序。

4）评估意义

1. 评估控制VS处理的颗粒与Fisher精确检验²⁶改良版的消费差异的显着性。修改测试，使得边际总计控制和处理的粒料是固定，对待他们既作为随机样本。注：此为P = 0.057时，7丸吃;因此，任何提取物被认为是威慑，如果6个或更少的颗粒被吃掉，可口，如果7个或更多的颗粒被吃掉。
2. 比较提取物的群体之间的相对适口性，计算出颗粒每组内吃掉的平均数量。保持阈值在6粒料这样一组复制提取物被认为的威慑如果粒料的平均数目吃掉+标准误（SE）≤6。注意：在代表性的结果，组分配是物种，因此复制提取来自不同的个体和相对适口可以物种间比较。

在这里，我们报告该生物测定6种常见加勒比海绵（ 图2）的结果。这些数据最初发表于1995年由Pawlik 等 12并证明了这种方法的力量调查共发生类群之间的化学防御策略的差异。结果被报告为标准误差（SE），针对每个物种食用+食物颗粒的平均数量。几乎没有颗粒被吃掉的测定与象耳海绵，Amphimedon牛鞭 ，并Aplysina cauliformis粗制有机提取物。与此相反，从Callyspongia阴道，Geodia gibberosa和Mycale蟾提取物制成粒料随便饮用测定中12。少于六个颗粒被吃掉前三个品种，所以他们显著威慑进行了审议。与此相反，第二3种为不显著不同于对照，并分别考虑可口。

图1：在测定过程的示意图 。在各个阶段中，控制粒料的拒绝表示这组试验鱼是不合作或饱足，不能继续使用。该协议开始于提供各组鱼的控制粒料随后经处理的颗粒。接着，作为接受，如果经处理的粒料被接受样品评分。如果处理过的粒料被拒绝，但在此后的控制粒料被接受时，作为拒绝样品评分。

图2：消费食品颗粒Thalassoma bifasciatum（平均+ SE）含海绵的天然浓度的粗制有机提取物，通过Pawlik在1995年首次报道12所消耗的鱼在所有情况下，所有10个控制颗粒。每个品种名称后，被指定的复制样本的数量（每个复制从海绵组织的一个地理上不同的样品的单独的萃取）。对于任何单独的试验中，提取物被认为的威慑如果粒料吃掉的数目是小于或等于6（p值 = 0.057，改性Fisher精确检验），由图上的虚线所示。

提交人声明，他们没有竞争的经济利益。