需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

一种用于评估海洋生物组织中次级代谢产物抗捕食活性的鱼类摄食实验室生物测定法

8.7K 次观看

⸱

DOI：

10.3791/52429

⸱

2015年1月11日

 , 
1Department of Biology and Marine Biology and Center for Marine Science, University of North Carolina Wilmington

本文内容

摘要

本生物测定法采用一种模式捕食性鱼类，通过营养成分相似的食物基质，检测海洋生物组织有机提取物中天然浓度下的摄食抑制代谢物的存在。

摘要

海洋化学生态学是一门新兴学科，起源于20世纪80年代天然产物化学家与海洋生态学家的合作，旨在研究海洋生物组织中次级代谢产物的生态功能。这一合作推动了一系列实验方法的不断改进，使其生态相关性日益增强。本文介绍了目前最新版本的鱼类摄食实验室生物测定法，该方法可使研究人员评估海洋生物组织中次级代谢产物的抗捕食活性。将目标生物组织中各种极性的有机代谢物进行完全提取，并在营养适宜的食物基质中重新配制成自然浓度。在实验室摄食实验中，将制备的实验性食物颗粒提供给广食性捕食者，以评估提取物的抗捕食活性。本文所述方法采用蓝头鱼（Thalassoma bifasciatum）来测试加勒比海海洋无脊椎动物的适口性；然而，该实验设计可轻松适用于其他系统。利用该实验室生物测定获得的结果，对于依赖全部潜在捕食者摄食反应的野外实验具有重要的前期指导意义。此外，该生物测定还可用于通过生物测定导向的分级分离方法，定向分离出摄食抑制性代谢物。该摄食生物测定法深化了我们对控制加勒比海珊瑚礁上海洋无脊椎动物分布与丰度因素的理解，并可能为药理学、生物技术及进化生态学等多个研究领域提供重要启示。

引言

化学生态学是化学家与生态学家合作发展的成果。尽管陆地化学生态学作为一门分支学科已存在较长时间，而海洋化学生态学仅有数十年历史，但它已为海洋生物的进化生态学和群落结构研究提供了重要见解1-8。得益于水肺潜水（SCUBA）和核磁共振（NMR）光谱技术的兴起，有机化学家在20世纪70年代和80年代迅速发表了大量文献，报道了来自底栖海洋无脊椎动物和藻类的众多新颖代谢物9。这些研究普遍假设次级代谢产物必然具有某种生物学功能，因此许多文献在缺乏实验证据的情况下，便将生态学上的重要功能归因于新发现的化合物。与此同时，生态学家也借助水肺潜水技术的发展，开始描述以往仅通过效率较低的采样方法（如拖网）所获知的底栖动植物的分布与丰度。这些研究者的假设是，任何固着生活且身体柔软的生物必然依赖化学防御机制以避免被捕食者取食10。为了将实证性引入原本以描述物种丰度为主的生态学研究中，一些生态学家开始从毒性测试结果推断化学防御能力11。大多数毒性测试涉及将整条鱼类或其他生物暴露于无脊椎动物组织的粗提有机提取物的水相悬浮液中，随后测定导致一半测试生物死亡的干重浓度。然而，此类毒性测试并不能模拟潜在捕食者在自然条件下感知猎物的方式，后续研究也发现毒性与适口性之间并无关联12-13。令人惊讶的是，一些发表在知名期刊上的研究采用了生态相关性极低甚至毫无相关性的技术手段14-15，而这些研究至今仍被广泛引用。更令人担忧的是，基于毒性数据的研究至今仍在持续发表16-18。本文所述的生物测定方法于20世纪80年代末期开发，旨在为海洋化学生态学家提供一种具有生态相关性的评估抗捕食化学防御能力的方法。该方法要求使用一种模式捕食者，在营养成分相似的食物基质中，以自然浓度摄取目标生物的粗提有机提取物，从而获得比毒性数据更具生态学意义的适口性数据。

评估海洋生物组织抗捕食活性的总体方法包括四个重要标准：（1）在摄食实验中必须使用合适的广食性捕食者，（2）必须将目标生物组织中所有极性的有机代谢物进行彻底提取，（3）必须将这些代谢物以与其来源生物体内相同的体积浓度混入营养适宜的实验食物中，（4）实验设计和统计分析方法必须提供有意义的指标，以反映相对的难食性。

以下所述实验方案专用于评估加勒比海海洋无脊椎动物的抗捕食化学防御机制。我们采用蓝头濑鱼（Thalassoma bifasciatum）作为模式捕食性鱼类，因为该物种在加勒比海珊瑚礁中广泛分布，且已知会摄食多种底栖无脊椎动物19。首先提取目标生物的组织，然后将其与食物混合物结合，最后提供给多组 T. bifasciatum，以观察其是否拒绝摄食经提取物处理的食物。利用该方法获得的检测数据，已为深入了解海洋生物的防御化学机制12,20-21、生活史权衡关系22-24以及群落生态学25-26提供了重要依据。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

注意：本方案的第3步涉及脊椎动物实验对象。该操作程序的设计旨在尽可能对动物实施最人道的处理，并已获得北卡罗来纳大学威尔明顿分校机构动物护理和使用委员会（IACUC）的批准。

1）组织提取

  1. 使用处于自然含水状态的组织，避免挤压、干燥或过度湿润，因为这些情况会改变次生代谢产物的体积浓度。将组织切成小块或薄片，以便插入50 ml离心管中。注意：某些情况下可使用新鲜组织，但通常更建议切割或切碎冷冻组织，因其在切割时不易被挤压。
  2. 在带刻度的离心管中加入组织块，并加入30 ml二氯甲烷（DCM）与甲醇（MeOH）按1:1比例配制的混合溶剂，直至总体积达到40 ml。所有涉及溶剂转移的操作均须在通风良好的通风橱中进行。
  3. 盖紧管盖，反复倒置数次，并在4小时提取期间反复振荡。注意：在此过程中，水与MeOH混合，形成的MeOH:水相与DCM相分离。随着离心管振荡，组织交替暴露于DCM相和作为乳液存在的MeOH:水相中。
  4. 将DCM提取液转移至圆底烧瓶中，在旋转蒸发仪上用低温（<40 °C）蒸干。使用最少溶剂将干燥提取物转移至20 ml闪烁小瓶中。为小瓶安装旋转蒸发仪适配器，再次在旋转蒸发仪上用低温（<40 °C）蒸干。
    注意：下一步需要使用一种自制压缩装置，可通过将以下部件依次拧到螺纹杆末端组装而成：(1) 螺母，(2) 垫圈，(3) 圆顶螺母。垫圈必须带孔或尺寸小于50 ml离心管的内径。
  5. 回到含有组织和MeOH:水提取液的带刻度离心管，通过压缩将提取液从组织中挤出。将MeOH:水提取液转移至同一圆底烧瓶中，并冷藏保存（<10 °C）。
  6. 向带刻度离心管中加入MeOH，使已脱水的组织完全浸没，进行第二次提取，持续2至6小时，然后将新的MeOH提取液转移至含有MeOH:水提取液的冷藏圆底烧瓶中。若怀疑组织未被充分提取，可重复2至6小时的MeOH提取步骤。
  7. 在旋转蒸发仪上用低温（<40 °C）除去MeOH。用最小体积的MeOH冲洗圆底烧瓶，将剩余的水相提取物转移至含有干燥非极性提取物的闪烁小瓶中。
  8. 在真空浓缩仪上用低温（<40 °C）将水相提取物蒸干。此时闪烁小瓶中含有10 ml组织的总干燥粗有机提取物。用N2气体置换小瓶顶部空间以防止氧化，密封后冷冻保存（-20 °C）。

2）食物制备

  1. 制备冻干鱿鱼胴体粉。
    注意：鱿鱼外套膜提供的营养成分与其他底栖无脊椎动物相当，将在2.2步骤的子步骤中用作成分。
    1. 在温热的去离子（DI）水中解冻冷冻的鱿鱼外套膜环，然后用高速搅拌机打成匀浆。
    2. 将切碎的鱿鱼外套膜倒入浅烤盘中，铺成薄层，于-20 °C冷冻，随后将冻结的鱿鱼匀浆薄片打碎成小块，用于冻干。
    3. 按照冻干机的操作规程，对冷冻的鱿鱼外套膜糜进行冻干。
    4. 将鱿鱼外套膜冻干粉在高速搅拌机中研磨成粉末。
    5. 在通风橱中，将鱿鱼外套膜粉末倒入旋转面粉筛中过筛，以分离组织大块与细粉。
    6. 将研磨成细粉的鱿鱼外套膜转移至可密封的容器中。用 N₂ 抽除容器顶部空间的空气2 气体以防止氧化，并在 -20 °C 冷冻保存。
  2. 制备食物混合物。
    注意：进行多个连续实验时，制备约 100 ml 食物混合物较为方便，但如有需要，此配方也可按比例缩小体积。
    1. 将3 g海藻酸和5 g冷冻干燥的鱿鱼外套膜粉末混合，加入100 ml去离子水至150 ml烧杯中。用微型刮勺剧烈搅拌数分钟，直至粉末充分水合且混合物均匀。
      注意：如有需要，可在该步骤加入食用色素：将染料添加到将用于制备处理组和对照组的饲料混合物中更为方便（可掩盖提取物处理组中提取物的天然色素），而不是通过向对照组添加染料来匹配提取物处理组的颜色。通常建议使用绿色或棕色的食用色素，以掩盖粗提物中的任何色素。
    2. 将恰好10 ml的食物混合物装入刻度注射器中。操作过程中注意避免混入气泡。
    3. 从冰箱中取出装有干燥粗有机提取物的20 ml 闪烁瓶。加入一至两滴甲醇，然后用微型刮勺将提取物搅拌成均匀的混合物。
    4. 将装有10 ml食品基质的注射器推出至20 ml闪烁瓶中，并用微型刮勺搅拌，使提取处理后的食品混合物均匀。
      注意：可分次少量推出注射器内的液体（即，推出2 ml并进行匀浆，然后重复操作，直至全部10 ml完成匀浆。
  3. 制备检测用颗粒。
    1. 将极小体积的提取混合物（约1 ml）吸入注射器中，将注射器针头浸入0.25 M CaCl₂溶液中2推出注射器中的内容物，形成一条细长的、类似意大利面的丝状物。
    2. 数分钟后，取出已硬化的条状物，在玻璃切板上用剃刀将其切成长度为 4 mm 的小段，然后用海水冲洗。
    3. 重复步骤 2.3.1 和 2.3.2，但不加入组织提取物，以制备对照组沉淀。务必向对照组沉淀中加入与溶剂等体积的溶液，以控制溶剂添加的影响（参见步骤 2.2.3 中向处理混合物中添加甲醇的操作）。若需设置阴性对照以确认实验鱼类可被抑制摄食，可加入苯甲地那铵，浓度为 2 mg/ml-1 到生食混合物中27.

3) 适口性生物测定

  1. 使用实验室水族箱中不透明侧壁的隔间内群体饲养（每组三条）的野生黄色型蓝头濑鱼（Thalassoma bifasciatum）进行摄食实验。
  2. 使用带橡胶吸头的玻璃移液管，从盛有海水的烧杯中递送饲料颗粒。注意：可能需要数天时间训练鱼类以这种方式摄取食物。在投喂前施加条件化刺激（例如，用移液管轻敲水族箱玻璃数次），可能有助于训练鱼类预期饲料颗粒的投放。
  3. 饲料颗粒评分标准：若鱼类迅速摄食，则视为接受该颗粒；若一条或多条鱼至少三次尝试将其送入口腔但未成功摄食，或仅接近但忽略该颗粒一次以上，则视为拒绝该颗粒。
  4. 样品评分标准。注意：实验流程以流程图形式展示于图1中。在实验任一阶段拒绝摄食对照颗粒的鱼群组将不再纳入后续分析。单次实验运行有两种可能结果：样品被接受或被拒绝。
    1. 首先提供对照颗粒，以确认鱼群处于合作状态。随后提供处理过的颗粒。若鱼群接受处理颗粒，则记该样品为“接受”；若鱼群拒绝处理颗粒，则再提供一个后续对照颗粒，以判断鱼群是否已停止摄食行为。若鱼群接受了后续对照颗粒，则记该样品为“拒绝”。
  5. 重复实验。每种提取物需使用十组独立的鱼群重复实验流程。

4) 评估显著性

  1. 使用 Fisher 精确检验的改进版本26评估对照组与处理组颗粒摄食量差异的显著性。修改该检验方法，使对照组和处理组颗粒的边缘总数固定，并将两者均视为随机样本。注意：当摄食颗粒数为 7 时，该检验给出 p = 0.057；因此，若摄食颗粒数为 6 或更少，则认为该提取物具有拒食效应；若摄食颗粒数为 7 或更多，则认为其可食。
  2. 为比较不同提取物组之间的相对适口性，计算每组内摄食颗粒数的平均值。将阈值保持在 6 颗颗粒，因此若某组重复提取物的平均摄食颗粒数加标准误（SE）≤6，则认为该组具有拒食效应。注意：在代表性结果中，分组依据为物种，因此重复提取物来自不同个体，可在物种间比较其相对适口性。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

本文报告了该生物测定法对六种常见加勒比海海绵物种的测定结果（图2）。这些数据最初由Pawlik et al.12于1995年发表，展示了该方法在调查共存分类群之间化学防御策略差异方面的有效性。结果以每种海绵物种被取食的食物颗粒平均数加标准误（SE）表示。在含有Agelas clathrodes、Amphimedon compressa和Aplysina cauliformis粗有机提取物的实验中，几乎未发生取食。相比之下，含有Callyspongia vaginalis、Geodia gibberosa和Mycale laevis提取物的颗粒在实验中被迅速取食12。前三种海绵对应的颗粒被取食数少于6个，因此被认为具有显著的拒食效应；而后三种海绵的取食量与对照组无显著差异，被视为可被取食。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

本文所述方法提供了一种相对简单且具有生态相关性的实验室方案，用于评估海洋生物的抗捕食化学防御机制。以下是该方法体系所满足的重要标准：

（1）合适捕食者。 本摄食实验采用蓝头濑鱼（Thalassoma bifasciatum），这是广泛分布于加勒比海珊瑚礁中最常见的鱼类之一。蓝头濑鱼是一种广食性肉食性鱼类，已知会摄食多种底栖无脊椎动物19。在初步实验中，广食性捕食者是最佳选择，因为珊瑚礁上大多数捕食性鱼类均为广食性种类，因此可预期抗捕食防御机制主要针对这类捕食者，而非可能已进化出克服防御机制的专食性捕食者。在实验室中利用单一潜在捕食者进行化学防御筛选后，通常还需开展更为耗时且复杂得多的野外实验，后者依赖于在自然条件下全部潜在捕食者群落的反应情况28-33。

（2）提取步骤。 第一步组织提取使用等体积的二氯甲烷（DCM）和甲醇（MeOH）混合溶剂，可快速渗透组织，溶解膜结构并使细胞物质脱水。经过此步骤后，组织已被脱水，因此后续步骤使用...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

致谢

感谢 James Maeda 和 Aaron Cooke 在本视频拍摄与剪辑过程中提供的帮助。本研究由美国国家科学基金会（OCE-0550468，1029515）提供资助。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
二氯甲烷Fisher ScientificD37-20
甲醇Fisher ScientificA41220
无水氯化钙Fisher ScientificC614-500
低温冷却传热液Fisher Scientific20-548-146用于真空浓缩仪
高黏度海藻酸钠MP Biomedicals154723
鱿鱼胴体环N/AN/A可在杂货店购买
苯甲地那铵AldrichD5765
50 ml 带刻度离心管Fisher Scientific14-432-22
20 ml 闪烁瓶Fisher Scientific03-337-7
一次性巴斯德吸管Fisher Scientific13-678-20D
巴斯德吸管用橡胶吸头Fisher Scientific03-448-24
用于沉淀递送的红色吸头Fisher Scientific03-448-27
250 ml 圆底烧瓶Fisher Scientific10-067E
旋转蒸发仪用闪烁瓶适配器Fisher ScientificK747130-1324
称量舟Fisher Scientific02-202B
微型药匙Fisher Scientific21-401-10
5 ml 带刻度注射器Fisher Scientific14-817-53
10 ml 带刻度注射器Fisher Scientific14-817-54
剃须刀片Fisher ScientificS17302

参考文献

  1. Paul, V. J., ed, Ecological roles of marine natural products. , Comstock Publishing. Associates: Ithaca, N.Y. (1992).
  2. Pawlik, J. R. Marine invertebrate chemical defenses. Chemical Reviews. 93 (5), 1911(1993).
  3. Hay, M. E. Marine chemical ecology: what's known and what's next. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 44 (5), 476-476 (1996).
  4. McClintock, J. B., Baker, B. J. Marine Chemical Ecology. , CRC Press. Boca Raton, Fla. (2001).
  5. Amsler, C. D. Algal Chemical Ecology. , Springer. New York. (2008).
  6. Hay, M. E. Marine chemical ecology: Chemical signals and cues structure marine populations, communities, and ecosystems. Annual Review of Marine Science. 1, 193-212 (2009).
  7. Pawlik, J. R. The chemical ecology of sponges on Caribbean reefs: Natural products shape natural systems. BioScience. 61 (11), 888(2011).
  8. Pawlik, J. R. Antipredatory Defensive Roles of Natural Products from Marine Invertebrates. Handbook of Marine Natural Products. , 677-710 (2012).
  9. Pawlik, J. R., Amsler, C. D., Ritson-Williams, R., McClintock, J. B., Baker, B. J., Paul, V. J. Marine Chemical Ecology: A Science Born of Scuba. Research and Discoveries: The Revolution of Science through Scuba. 39, 53-69 (2013).
  10. Randall, J. E., Hartman, W. D. Sponge-feeding fishes of the West Indies. Marine Biology. 1, 216-225 (1968).
  11. Bakus, G. J., Green, G. Toxicity in sponges and holothurians — geographic pattern. Science. 185, 951-953 (1974).
  12. Pawlik, J. R., Chanas, B., Toonen, R. J., Fenical, W. Defenses of Caribbean sponges against predatory reef fish. 1. Chemical deterrency. Marine Ecology Progress Series. 127, 183-194 (1995).
  13. Schulte, B. A., Bakus, G. J. Predation deterrence in marine sponges — laboratory versus field studies. Bulletin of Marine Science. 50, 205-211 (1992).
  14. Jackson, J. B. C., Buss, L. Allelopathy and spatial competition among coral reef invertebrates. Proceedings of the National Academy of Sciences. 72, 5160-5163 (1975).
  15. Bakus, G. J. Chemical defense mechanisms on the great barrier reef. Australia. Science. 211, 497-499 (1981).
  16. Gemballa, S., Schermutzki, F. Cytotoxic haplosclerid sponges preferred: a field study on the diet of the dotted sea slug Peltodoris atromaculata (doridoidea: nudibranchia). Marine Biology. 144, 1213-1222 (2004).
  17. Voogd, N. J., Cleary, D. F. R. Relating species traits to environmental variables in Indonesian coral reef sponge assemblages. Marine and Freshwater Research. 58, 240-249 (2007).
  18. Mollo, E., et al. Factors promoting marine invasions: a chemolecological approach. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105, 4582-4586 (2008).
  19. Randall, J. E. Food habits of reef fishes of the West Indies. Studies in Tropical Oceanography. 5, 665-847 (1967).
  20. O'Neal, W., Pawlik, J. R. A reappraisal of the chemical and physical defenses of Caribbean gorgonian corals against predatory fishes. Marine Ecology Progress Series. 240, 117-126 (2002).
  21. Hines, D. E., Pawlik, J. R. Assessing the antipredatory defensive strategies of Caribbean non-scleractinian zoantharians (Cnidaria): is the sting the only thing. Marine Biology. 159 (2), 389-398 (2012).
  22. Walters, K. D., Pawlik, J. R. Is there a trade-off between wound-healing and chemical defenses among Caribbean reef sponges. Integrative and Comparative Biology. 45 (2), 352-358 (2005).
  23. Leong, W., Pawlik, J. R. Evidence of a resource trade-off between growth and chemical defenses among Caribbean coral reef sponges. Marine Ecology Progress Series. 406, 71-78 (2010).
  24. Leong, W., Pawlik, J. R. Comparison of reproductive patterns among 7 Caribbean sponge species does not reveal a resource trade-off with chemical defenses. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 401 (1-2), 80-84 (2011).
  25. Pawlik, J. R., Loh, T. -L., McMurray, S. E., Finelli, C. M. Sponge Communities on Caribbean Coral Reefs Are Structured by Factors That Are Top-Down, Not Bottom-Up. PLoS ONE. 8 (5), e62573(2013).
  26. Loh, T. -L., Pawlik, J. R. Chemical defenses and resource trade-offs structure sponge communities on Caribbean coral reefs. Proceedings of the National Academy of Science. 111, 4151-4156 (2014).
  27. Miller, A. M., Pawlik, J. R. Do coral reef fish learn to avoid unpalatable prey using visual cues. Animal Behaviour. 85, 339-347 (2013).
  28. Pawlik, J. R., Fenical, W. A re-evaluation of the ichthyodeterrent role of prostaglandins in the Caribbean gorgonian coral, Plexaura homomalla. Marine Ecology Progress Series. 52, 95-98 (1989).
  29. Fenical, W., Pawlik, J. R. Defensive properties of secondary metabolites from the Caribbean gorgonian coral Erythropodium caribaeorum. Marine Ecology Progress Series. 75, 1-8 (1991).
  30. Pawlik, J. R., Fenical, W. Chemical defense of Pterogorgia anceps, a Caribbean gorgonian coral. Marine Ecology Progress Series. 87, 183-188 (1992).
  31. Chanas, B., Pawlik, J. R. Does the skeleton of a sponge provide a defense against predatory reef fish. Oecologia. 107 (2), 225-231 (1996).
  32. Chanas, B., Pawlik, J. R., Lindel, T., Fenical, W. Chemical defense of the Caribbean sponge Agelas clathrodes (Schmidt). Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 208 (1-2), 185-196 (1997).
  33. Wilson, D. M., Puyana, M., Fenical, W., Pawlik, J. R. Chemical defense of the Caribbean reef sponge Axinella corrugata against predatory fishes. Journal of Chemical Ecology. 25 (12), 2811-2823 (1999).
  34. Chanas, B., Pawlik, J. R. Defenses of Caribbean sponges against predatory reef fish II. Spicules, tissue toughness, and nutritional quality. Marine Ecology Progress Series. 127 (1), 195-211 (1995).
  35. Albrizio, S., Ciminiello, P., Fattorusso, E., Magno, S., Pawlik, J. R. Amphitoxin, a new high molecular weight antifeedant pyridinium salt from the Caribbean sponge Amphimedon compressa. Journal of Natural Products. 58 (5), 647-652 (1995).
  36. Assmann, M., Lichte, E., Pawlik, J. R., Köck, M. Chemical defenses of the Caribbean sponges Agelas wiedenmayeri and Agelas conifera. Marine Ecology Progress Series. 207, 255-262 (2000).
  37. Kubanek, J., Fenical, W., Pawlik, J. R. New antifeedant triterpene glycosides from the Caribbean sponge Erylus Formosus. Natural Product Letters. 15 (4), 275-285 (2001).
  38. Pawlik, J. R., McFall, G., Zea, S. Does the odor from sponges of the genus Ircinia protect them from fish predators. Journal of Chemical Ecology. 28 (6), 1103-1115 (2002).
  39. Waddell, B., Pawlik, J. R. Defenses of Caribbean sponges against invertebrate predators. I. Assays with hermit crabs. Marine Ecology Progress Series. 195, 125-132 (2000).
  40. Waddell, B., Pawlik, J. R. Defense of Caribbean sponges against invertebrate predators. II. Assays with sea stars. Marine Ecology Progress Series. 195, 133-144 (2000).
  41. Burns, E., Ifrach, I., Carmeli, S., Pawlik, J. R., Ilan, M. Comparison of anti-predatory defenses of Red Sea and Caribbean sponges. I. Chemical defense. Marine Ecology Progress Series. 252, 105-114 (2003).
  42. Jones, A. C., Blum, J. E., Pawlik, J. R. Testing for defensive synergy in Caribbean sponges: Bad taste or glass spicules. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 322 (1), 67(2005).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

标签

海洋化学生态学鱼类摄食生物测定组织提取食物基质制备蓝头濑鱼 Thalassoma颗粒成型化学防御评估生物测定导向的分级分离
一种用于评估海洋生物组织中次级代谢产物抗捕食活性的鱼类摄食实验室生物测定法
联系我们
向图书馆推荐

隐私政策

使用条款

政策

版权所有 © 2026 MyJoVE Corporation。保留所有权利。