通过siRNA实现基因沉默是一种便捷的实验策略,可用于分析BRCA2依赖的生物学功能,有助于更好地理解癌症生物学。本文介绍了一种高效沉默BRCA2基因的方法,以及在人源细胞系中通过免疫印迹检测和定量BRCA2蛋白表达变化的实验流程。
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通过siRNA实现基因沉默是一种便捷的实验策略,可用于分析BRCA2依赖的生物学功能,有助于更好地理解癌症生物学。本文介绍了一种高效沉默BRCA2基因的方法,以及在人源细胞系中通过免疫印迹检测和定量BRCA2蛋白表达变化的实验流程。
由于人源BRCA2蛋白分子量较大(约390 kDa),通过常规生化分析方法实现肿瘤抑制蛋白BRCA2的沉默及其检测一直面临重大技术挑战。本文报道了对标准siRNA转染和免疫印迹实验方案的改进,可分别用于在人源上皮细胞系中沉默BRCA2基因并检测内源性BRCA2蛋白。关键技术步骤包括采用较高的siRNA与转染试剂比例,以及在同一实验中进行两轮连续的siRNA转染。结合其他优化措施,通过抗BRCA2抗体的免疫印迹分析显示,该方法可稳定实现超过70%的人源BRCA2基因沉默效率。此外,将细胞裂解液的变性温度由常规的70–100 °C调整为55 °C,并对免疫印迹流程进行其他技术优化,使得即使在起始材料极少或BRCA2蛋白表达水平极低的情况下,仍可检测到完整的BRCA2蛋白。在BRCA2功能完整的细胞(包括肿瘤细胞)中高效沉默BRCA2,为研究由肿瘤中致病性BRCA2突变所影响的新分子通路和细胞功能提供了有价值的策略。本实验方案亦可便捷地适用于其他类似BRCA2的“大分子”蛋白的高效沉默与分析。
BRCA2(乳腺癌易感基因-2)基因编码一种肿瘤抑制蛋白,该蛋白通过调控重组酶Rad51的功能,在DNA双链断裂修复过程中发挥关键作用1。此外,BRCA2还参与转录调控和细胞周期控制2。BRCA2基因的种系突变可导致常染色体显性遗传,使女性对乳腺癌和卵巢癌、男性对前列腺癌的易感性增加,并可能增加其他多种癌症的发病风险3,4。然而,尽管携带BRCA2突变会增加患癌风险,但这些导致BRCA2功能抑制或降低的突变也可能使癌细胞对引起DNA损伤的化疗药物更为敏感5-7。散发性癌症中BRCA2基因突变的发生率较低(< 3%),但在某些癌症类型中已检测到BRCA2蛋白水平下降,提示在散发性癌症的发生过程中,BRCA2蛋白可能通过非突变依赖性机制丢失7,8。因此,全面理解BRCA2在癌症生物学及其他生物学背景下的功能具有重要意义。
在哺乳动物细胞中鉴定基因新功能的一个有力工具是使其表达沉默。例如,近期在多种正常上皮细胞中沉默BRCA2的表达,揭示了BRCA2作为一种调节失巢凋亡抵抗性的新功能,而失巢凋亡抵抗性是癌细胞获得侵袭和转移能力过程中的重要步骤9。基因沉默可通过向细胞中导入靶向特定基因的小干扰RNA(siRNA)或短发夹RNA(shRNA)分子来实现。siRNA具有高效性和操作简便的优点,使其成为旨在深入了解关键生物学过程并鉴定新治疗靶点的基因沉默实验中的首选工具。然而,并非所有基因的表达都能轻易实现有效敲低,且其效率可能因细胞类型不同而存在显著差异。由于细胞内蛋白水平的降低是研究中最相关的表型,因此通过免疫印迹分析目标基因产物来定量评估基因沉默效果至关重要。在这方面,BRCA2蛋白带来了额外挑战:作为一种大分子蛋白(约390 kDa),其在包括免疫印迹在内的常规生化分析中存在技术上的困难。
本文报道了一种优化的实验方案,可高效沉默人上皮细胞系中的BRCA2基因,并通过免疫印迹分析快速、成功地检测BRCA2蛋白的表达下调。
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1. 准备siRNA溶液
2. 人上皮细胞系的接种
3. 用 siRNA 转染细胞
4. 裂解细胞以进行免疫印迹分析
5. BRCA2 免疫印迹分析
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在进行生物学/生物化学实验以研究BRCA2沉默对细胞功能的影响之前,第一步是通过平行使用乱序siRNA(非靶向siRNA)和BRCA2 siRNA来验证沉默的特异性(图1A)。为了获得高效的BRCA2沉默效果,使用高siRNA/转染试剂比例进行第二轮siRNA转染至关重要。事实上,仅进行一轮siRNA转染,或在第二轮中使用较低的siRNA/转染试剂比例(25 pmol siRNA和6 µl转染试剂),将导致基因敲低效率降低(图1B)。第二步是确定实现最高基因沉默水平所需的最短作用时间。根据细胞类型的不同,该时间通常在第二轮siRNA转染后24至48小时之间。例如,Nthy甲状腺细胞在24小时即可达到充分沉默,而PNT1A前列腺细胞则需要长达48小时才能实现有效的BRCA2基因敲低(图2A)。BRCA2的沉默效果在第二次转染周期后的7天内保持相对稳定(图2B)。值得注意的是,若将细胞裂解液在高于55 °C的温度下变性(如100 °C加...
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由于BRCA2基因的种系突变会增加多种癌症的发病风险,包括女性和男性乳腺癌、卵巢癌、前列腺癌、胰腺癌以及黑色素瘤3,4,已有大量研究致力于阐明BRCA2蛋白的生物学功能。由于分析BRCA2这类巨大蛋白存在技术上的困难,大多数研究主要基于遗传学方法。本文所述的BRCA2蛋白表达沉默与分析方法,为在广泛的生物学实验中研究BRCA2肿瘤抑制基因的功能提供了一种高效工具。该沉默实验方案基于标准的siRNA转染流程,但包含若干关键性改进以及确保BRCA2基因稳定且高效敲低的操作要点。siRNA转染方案安全、快速且高效;与通常使用慢病毒载体的shRNA方法不同,该方法无需特殊的生物安全防护措施,可在任何具备细胞培养条件的实验室中轻松实施。同样,免疫印迹(immunoblotting)方案也经过优化,可高效检测BRCA2这类大分子量蛋白。该免疫印迹方案还已验证可用于检测在酵母细胞中异源表达的重组人BRCA2蛋白9。
本文报道了高效递送siRNA的若干重要影响因素。其中包括进行两轮转染,以及使用较高的...
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作者无任何利益冲突需要披露。
本工作由FIRB-Merit基金项目RBNE08YFN3_005和RBNE08HWLZ_012,以及意大利经济与财政部资助国家研究委员会(CNR)的“FaReBio di Qualità”项目提供支持。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| BRCA2 siRNA | Dharmacon | L-003462-00 | SMARTpool: ON-TARGETplus BRCA2 siRNA |
| 对照 siRNA | Dharmacon | D-001810-10-05 | ON-TARGETplus 非靶向对照试剂池 |
| Lipofectamine RNAiMAX 转染试剂 | Life Technologies | 13778075 | 转染试剂 |
| OPTI-MEM I 低血清培养基 | Life Technologies | 31985-070 | 转染实验用培养基 |
| NuPAGE Tris-乙酸盐 3-8% 1.5 mm 预制胶 | Life Technologies | EA0378 | 蛋白电泳用凝胶 |
| NuPAGE LDS 上样缓冲液 | Life Technologies | NP0007 | 蛋白电泳用试剂 |
| NuPAGE 样品还原剂 (10x) | Life Technologies | NP0004 | 蛋白电泳用试剂 |
| NuPAGE 抗氧化剂 | Life Technologies | NP0005 | 蛋白电泳用试剂 |
| HiMark 预染蛋白标准品 | Life Technologies | LC5699 | 凝胶电泳预染标记物 |
| XCell SureLoc Mini-Cell 电泳系统 | Life Technologies | EI0002 | 蛋白电泳/转膜设备 |
| NuPAGE Tris-乙酸盐 SDS 电泳缓冲液 | Life Technologies | LA0041 | Western 印迹试剂 |
| PVDF 膜 | Millipore | IPVH00010 | Western 印迹试剂 |
| NuPAGE 转膜缓冲液 | Life Technologies | NP0006-1 | Western 印迹试剂 |
| BRCA2 H-300 兔多克隆抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8326 | 1:300 稀释 |
| β-微管蛋白单克隆抗体 | Sigma Aldrich | T4026-100UL | 1:1,000 稀释 |
| 脱脂奶粉 | Sigma Aldrich | 70166 | Western 印迹试剂 |
| Tween-20 | Sigma Aldrich | P1379 | Western 印迹试剂 |
| SuperSignal West Pico/Femto 化学发光底物 | Pierce Thermo Scientific | 34080/34096 | 化学发光检测系统 |
| PNT1A 细胞 | SIGMA Aldrich (ECACC 提供) | 95012614 | PNT1A 人正常前列腺上皮细胞,经 SV40 永生化 |
| Nthy 细胞 | SIGMA Aldrich (ECACC 提供) | 90011609 | Nthy-ori 3-1 人甲状腺滤泡上皮细胞系 |
| 细胞增殖检测试剂盒 I (MTT) | Roche | 11465007001 | 细胞增殖检测用试剂盒 |
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