基于分子键固有振动的相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)显微技术,能够实现无需标记的化学选择性活细胞成像。本文介绍了在基于飞秒钛宝石激光器和OPO激光器的标准多光子激光扫描显微镜上,实现一种互补显微技术的方法。
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基于分子键固有振动的相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)显微技术,能够实现无需标记的化学选择性活细胞成像。本文介绍了在基于飞秒钛宝石激光器和OPO激光器的标准多光子激光扫描显微镜上,实现一种互补显微技术的方法。
结合飞秒钛宝石激光器与光学参量振荡器(OPO)以复制激光谱线的激光扫描显微镜已向生物学家开放使用。这些系统主要设计用于多通道双光子荧光显微成像。然而,在无需任何改装的情况下,该装置还可用于其他互补的非线性光学显微技术,如二次谐波产生(SHG)或三次谐波产生(THG),从而实现对有序分子结构或水相-脂质界面的无标记成像。这些技术非常适合于 体内 观察具有局限性,但在化学特异性方面存在不足。基于拉曼散射的固有振动信号可实现化学选择性成像。共聚焦拉曼显微技术可提供三维空间分辨率,但需要较高的平均功率和较长的采集时间。为克服这些困难,近年来激光技术的进步推动了非线性光学振动显微技术的发展,尤其是相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)。因此,CARS显微技术已成为生物样本和活细胞成像的有力工具,能够通过化学映射脂质(通过C-H伸缩振动)、水(通过O-H伸缩振动)、蛋白质或DNA实现可视化。本文中,我们描述了在标准OPO耦合的多光子激光扫描显微镜上实现CARS技术的方法。该方法基于调节其中一路激光光束的光程长度,实现两束激光线在时间上的同步。我们逐步展示了在现有多光子系统上实施该技术的具体步骤。具备基本的实验光学背景知识将有助于操作,且所介绍的系统无需昂贵的附加设备。我们还展示了在啮齿类动物坐骨神经髓鞘上获得的CARS成像结果,并证明该成像可与其他非线性光学成像技术(如标准双光子荧光技术和二次谐波生成)同时进行。 关键词:CARS显微技术,相干反斯托克斯拉曼散射,多光子显微镜,非线性光学成像,化学特异性成像,髓鞘,OPO,拉曼散射,振动显微技术,活细胞成像
光学显微技术已成为以亚细胞分辨率无损观测活体生物系统中动态过程的主要手段。由于具有高特异性和高灵敏度,荧光显微技术目前是活细胞成像中最常用的成像对比方法1。大量荧光探针已被开发出来(包括外源性染料、基因编码蛋白和半导体纳米颗粒)。基于不同样品照明方式的荧光成像技术也迅速发展(如共聚焦显微或双光子显微技术),以实现三维成像并减轻该技术的主要缺陷——光漂白2。其他局限性包括需要荧光标记,因为大多数分子本身不具备荧光特性,因此必须人为地将这些荧光基团引入待成像样品中。这种人为操作可能对小分子产生干扰,或引发潜在的光毒性。这些因素使得荧光显微技术不太适用于活体(in-vivo)观测。因此,在生物医学研究中,迫切需要发展无需使用荧光分子、但仍具备高灵敏度和特异性分子对比能力的光学成像技术。
多种无需标记或染色的非线性光学成像技术相继出现,包括二次谐波产生(SHG)3,4 和三次谐波产生(THG)5二次谐波显微技术已被用于成像微管或胶原蛋白等超分子水平的结构排列。6三倍频光由光学非均匀性产生,例如水相介质与脂质之间的界面7. THG 还被证明可用于成像髓鞘8,9两种技术均可在双光子荧光显微镜上实现,且仅需一束激光。然而,它们需要较高的激光功率密度(通常在860 nm波长下为50 mW,用于SHG)10,1180 nm 处 25 - 50 mW 用于三次谐波产生9),这对活体样品有害,且无法提供明确成像特定生物结构所需的化学特异性。
基于拉曼散射的固有分子振动信号可获得化学选择性成像。当一束光照射到物质上时,光子会被原子或分子吸收并发生散射。大多数散射光子具有相同的能量, 即, 频率与入射光子相同。这一过程称为瑞利散射。然而,有少量光子会被散射至与入射光子频率不同的光学频率。 即, 通过一种称为拉曼散射的非弹性散射过程实现。能量差异源于分子结构和环境依赖的振动模式的激发。因此,自发拉曼散射能够提供化学选择性成像,因为不同分子具有特定的振动频率。然而,由于其信号极其微弱,该技术受到限制。共聚焦拉曼显微技术已被开发出来,可提供三维空间分辨率,但需要较高的平均功率和较长的采集时间11为克服这些困难,激光技术的最新进展推动了非线性光学振动显微技术的发展,特别是相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)11,12,13.
相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)是一种三阶非线性光学过程。三束激光——包括频率为 ωP 的泵浦光束、频率为 ωS 的斯托克斯光束以及一束探针光束(通常与泵浦光束相同)——被聚焦到样品中,产生频率为 ωAS = (2ωP - ωS)14 的反斯托克斯光束。当泵浦光束与斯托克斯光束之间的频率差被调节至与分子的拉曼振动频率 ΩR = (ωP - ωS) 一致时,反斯托克斯信号可显著增强。CARS 信号基于多光子相互作用,因此产生的信号是相干的,其强度比自发拉曼散射高出数个数量级。
相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)显微技术最初由Duncan et al.15 首次通过实验实现。Zumbusch et al. 随后改进了该技术,采用两个聚焦的近红外飞秒激光束,并结合高数值孔径的物镜,从而满足CARS的相位匹配条件,并避免双光子非共振背景信号16。因此,CARS显微技术已成为活细胞和组织成像的有力工具,可对脂质(通过C-H伸缩振动)17,18、水(通过O-H伸缩振动)、蛋白质、DNA等分子进行化学检测19,20,还可用于检测药物21和化妆品应用中的氘标记化合物22。
非线性显微技术的主要局限源于光学光源的复杂性和高昂成本。相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)系统需要两台波长可调、脉冲持续时间短且脉冲序列在时间和空间上同步的激光器。早期的CARS显微镜基于两台同步的皮秒级Ti:sapphire激光器。20CARS成像还使用单个飞秒钛宝石激光器产生的超连续光源获得23近年来,由单个飞秒钛宝石激光器泵浦可调谐光学参量振荡器(OPO)构成的激光光源已被用于相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)显微成像。该装置可提供本征时间同步的光束,其泵浦光与斯托克斯光之间的频率差可覆盖整个分子振动光谱范围。24此外,基于即插即用型飞秒激光器和光参量振荡器(OPO)的激光扫描显微镜现已面向非物理专业人员提供,主要用于双光子荧光(TPF)成像。通过整合其他非线性光学成像模式,可在无需额外投资的情况下显著提升此类系统的潜力,因为每种非线性光学(NLO)成像模式对特定结构或分子具有敏感性。因此,多模态NLO成像能够充分挖掘非线性光学显微技术在复杂生物样品研究中的潜力25这些技术的结合使得许多生物学问题得以研究,特别是在脂质代谢、皮肤及癌症发育方面26骨骼肌发育27动脉粥样硬化病变28此外,结合受激拉曼散射(CARS)的激光束扫描技术可实现高速成像, 即, 研究动态过程的一种理想工具 在体.
本研究的目的是展示在标准多光子激光扫描显微镜上实现CARS技术的每一步操作。该显微镜基于一台飞秒钛宝石激光器和一台由钛宝石激光器泵浦的光参量振荡器(OPO),并由面向生物学家设计的软件进行控制。通过调节其中一束激光的光路长度,使两束激光在时间上实现同步,从而完成系统集成。本文详细描述了该技术的逐步实现过程,仅需具备基础的实验光学知识即可操作。我们还展示了在啮齿类动物坐骨神经髓鞘上获得的CARS成像结果,并证明该成像可与其他非线性光学成像技术(如标准双光子荧光技术和二次谐波产生)同时进行。
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图1. 实验装置的示意图。 装置包括钛宝石激光器(680 – 1,080 nm)和OPO激光器(1,050 – 1,300 nm)、由四面反射镜(M1 至 M4)构成的延迟线、高速示波器、光电二极管以及两个固定的虹膜光阑 I1 和 I2。反射镜 M2 和 M3 安装在直线平移台上,可通过微米级分辨率调节延迟线的长度。在用于CARS成像的光电倍增管(PMT)前方放置了一个660 – 685 nm的带通滤光片。请点击此处查看该图的放大版本。
1. 激光系统的启动
2. 显微镜设置
3. 时间同步
注意:两束激光来自同一台钛宝石激光器,但OPO激光束在产生时存在延迟,因此当两束光到达显微镜时在时间上不同步。此处的目标是延迟其中一束光,以在它们到达显微镜之前重新实现时间上的同步。
4. 光束的空间重叠
注意:要产生CARS信号,需要两束激光束在空间上重叠。通过交替照射用两种不同荧光染料均匀染色的同一微珠,可以指示空间位移。随后通过微调反射镜的位置来最小化该位移。
5. 最终调整及橄榄油液滴的相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)信号观测
6. 延迟线光路的封闭
7. CARS 的波长调谐
调节激光波长以匹配所需的拉曼振动。为重现本研究中展示的结果,需对C-H键的CARS信号进行成像,其伸缩振动波数为3015 cm⁻¹。-1,选择 λTi:蓝宝石 = 830 nm 和 λOPO = 1,095 nm
以确定CARS信号的发射波长。进行C-H键的CARS成像时,选择670 nm的窄带滤光片,因为λ相干反斯托克斯拉曼散射 = 670 nm,激光波长参见7.1节8. 坐骨神经切片中CARS信号与染色髓鞘的观察
注意:所有动物实验均按照机构规定进行。
9. 坐骨神经切片中CARS与SHG信号的观察
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标准钛宝石激光器的脉冲序列频率通常约为80 MHz。由于OPO由钛宝石激光器泵浦,其频率与之相同。因此,需要至少200 MHz的高速示波器。还需要一个响应波长范围为600至1,100 nm的高速光电探测器。当钛宝石激光与OPO信号之间的时移达到1/(2×80×106) = 6.2纳秒时,出现最大的时间偏移,这对应于最大1.9米的光程差。图2显示了从OPO激光束记录的脉冲序列(A),以及未加延迟线(B)和调整延迟线后(C)的钛宝石激光束脉冲序列。因此,如图2A和2C所示,通过引入延迟线,两个脉冲序列在时间上基本实现了同步。
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工作中最具挑战性的部分是激光束的时间同步。首先需要使用快速光电二极管结合快速示波器进行操作,但最初只能实现时间上的粗略重叠。随后需进行数厘米范围内的进一步调整。最后,通过线性平移台进行微米级移动,对延迟线长度进行最终精细调节,以触发CARS信号。通过调节平移台的微米驱动装置可观察到,该信号维持在约20微米的窄范围内,这对应于激光脉冲重叠时间偏移约半个脉冲周期。 即, 140飞秒。产生CARS信号所需的两束光的空间重叠,类似于此类激光扫描显微系统中的常规光束准直。
对于具备基础实验光学知识的生物学家,或在与物理学家合作的情况下,延迟线的搭建可在数周内完成。在选择反射镜时需格外谨慎,以尽量减少反射损耗。尽管搭建延迟线所需的大部分材料价格较为合理,但所需的示波器并非标准型号。因此,由于完成时间同步校准仅需数天,从物理实验室借用示波器似乎是最佳选择。空间重叠过程可能较为耗时,因其需要调节多个反射镜和透镜(具体取决于激光扫描系统,这些元件可配备电机驱动)。早期基于两台电子同步的钛宝石激光器的CARS激光系统,在长期运行(数十分钟至数小时)中存在脉冲时间重叠不稳定的问题。该问...
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作者声明不存在任何竞争性经济利益。
作者感谢法国蒙彼利埃 IES(UM)的 Philippe Combette 博士提供高速示波器,并感谢蒙彼利埃 RIO 成像中心(MRI)提供的经费支持。HR 感谢法国生物成像(France Bio Imaging,ANR-10-INSB-04-01)和法国生命成像(France Life Imaging,ANR-11-INSB-0006)基础设施网络对相干拉曼成像技术发展的支持。本研究主要由欧洲研究理事会资助项目(FP7-IDEAS-ERC 311610)以及法国国家健康与医学研究院(INSERM)—AVENIR 资助项目支持,资助对象为 NT。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 示波器 | Tektronix | TDS 520D | 500 MHz |
| 光电探测器 | Thorlabs | DET08C/M, T4290 | 5 GHz InGaAs,800 - 1,700 nm |
| Ti:Sapphire 激光器 Chameleon Ultra Family II | Coherent | ||
| 光学参量振荡器 OPO Compact Family | APE Berlin | ||
| Axio Examiner 显微镜 LSM 7 MP | Carl Zeiss | ||
| 电动潜望镜 | Newport | ||
| 物镜 W Plan-Apochromat 20X/1.0 | Carl Zeiss | ||
| 光束合束器 | Carl Zeiss | ||
| 声光调制器 | Carl Zeiss | ||
| OPO 功率衰减器 | Carl Zeiss | ||
| 光电倍增管 | Carl Zeiss | ||
| ZEN 软件 | Carl Zeiss | ||
| 带通滤光片 | Carl Zeiss | LSM BiG 1935-176 | 400 - 480 nm;500 - 550 nm;465 - 610 nm |
| 二向色镜 | Carl Zeiss | 截止波长 760 nm | |
| 银镜 | Newport | 10D20ER.2 | λ/10,480 - 20,000 nm,数量 4 |
| 带标准千分尺的单轴平移台 | Thorlabs | PT1/M | 数量 1 |
| 铝制光学平台 | Thorlabs | MB1015/M | 数量 1 |
| 镜片安装架 | Thorlabs | KMSS/M | 数量 4 |
| 用于 Ø1" 光学元件的镜片夹持器 | Thorlabs | MH25 | 数量 4 |
| 可调光阑 | Thorlabs | ID8/M | 数量 3 |
| 防护箱 | Thorlabs | TB4, XE25L900/M, T205-1.0, RM1S | 数量 1 |
| 光学支架杆 | Thorlabs | TR40/M, PH50/M, PH75/M, BA2/M | 数量 8(长度根据装置配置而定) |
| 661 - 690 nm 带通滤光片 | Semrock | 676/29 nm BrightLine® 单通带带通滤光片 | 数量 1 |
| 荧光微球 | ThermoFisher | TetraSpeck™ 荧光微球尺寸套装 | |
| 激光观察卡 | Thorlabs | 红外激光观察卡 | |
| 激光防护眼镜 | Newport | LV-F22.P5L07 | |
| FluoroMyelin™ 红色荧光髓鞘染色剂 | ThermoFisher | F34652 |
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