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Research Article
Andrzej Chruscinski1, Flora Y. Y. Huang1, Antigona Ulndreaj2, Conan Chua1, Michael Fehlings3, Vivek Rao4, Heather J. Ross1, Gary A. Levy1
1Multi-Organ Transplant Program,University Health Network, 2Institute of Medical Science,University of Toronto, 3Divison of Neurosurgery,University Health Network, 4Division of Cardiac Surgery,University Health Network
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
我们在这里描述了一种生成可定制抗原微阵列的方法,该方法可用于同时检测人类和小鼠的血清 IgG 和 IgM 自身抗体。这些芯片可对针对任何抗原或目标表位的抗体进行高通量和定量检测。
自身抗体是针对自身抗原的抗体,存在于许多疾病状态中,可以作为疾病活动的标志物。针对特异性抗原的自身抗体水平通常使用酶联免疫吸附测定 (ELISA) 技术进行检测。然而,使用 ELISA 筛选多种自身抗体可能非常耗时,并且需要大量患者样本。抗原微阵列技术是一种可用于以多重方式筛选自身抗体的替代方法。在这种技术中,抗原被用机器人微阵列仪排列到特殊涂层的显微镜载玻片上。用患者血清样品探测载玻片,随后加入荧光标记的二抗以检测血清自身抗体与抗原的结合。通过使用可检测荧光信号的扫描仪扫描载玻片来揭示和定量自身抗体反应性。在这里,我们描述了生成定制抗原微阵列的方法。我们目前的阵列印有 9 个实心针,可以包含多达 162 个抗原,一式两份。通过改变微阵列仪使用的源板中的抗原,可以轻松定制阵列。我们开发了一种双色二抗检测方案,可以区分同一玻片表面的 IgG 和 IgM 反应性。该检测系统已经过优化,可用于研究人抗体和小鼠自身抗体的结合。
自身抗体存在于许多疾病状态中,并且通常具有直接的致病活性1。自身抗体的鉴定对于某些疾病的诊断、疾病结局的预后以及可能从特定治疗中受益的患者的分类很重要2。通常使用 ELISA 技术在患者血清中鉴定自身抗体;然而,使用这种技术筛选多种抗原很费力,并且会消耗大量患者样本。因此,需要新技术来更大规模地分析自身抗体。
抗原微阵列技术是一种蛋白质组学技术,允许以多重方式分析自身抗体3。在此过程的第一步中,使用机器人微阵列仪将抗原文库排列到载玻片表面。用稀释的血清探测载玻片,然后加入荧光标记的二抗。通过使用微阵列扫描仪扫描载玻片来观察抗体反应性,并通过荧光强度进行定量。与 ELISA 技术相比,抗原微阵列在筛选自身抗体方面具有多种优势:1) 它们只需要微升血清即可同时分析针对多种抗原的自身抗体,2) 它们很少使用抗原,因为只有纳升抗原被发现到阵列上,3) 与 ELISA 相比,它们具有更高的灵敏度3 和 4) 它们允许同时, 单独检测多种抗体同种型。抗原微阵列已用于分析自身免疫性疾病(如类风湿性关节炎、多发性硬化症和系统性红斑狼疮)中的自身抗体4-6。在所有这三种疾病中,通过使用芯片大规模分析自身抗体,获得了对疾病发病机制的新见解。
这里我们描述了一种使用硝酸纤维素包被载玻片生成抗原微阵列的方案。使用这种技术可以将各种抗原(包括蛋白质、肽和细胞裂解物)排列到载玻片上。通过将目标抗原包含在保存抗原文库的源板中,可以轻松定制阵列。此外,我们还展示了如何使用一对二抗来分离同一玻片表面上的 IgG 和 IgM 反应性。我们现在已经优化了这项技术来测量人类和小鼠的自身抗体。
1.稀释抗原和生成抗原微阵列
2.探测抗原基因芯片与血清稀释
3.扫描抗原微阵列和导出数据
4.使用微阵列显着性分析分析阵列数据(SAM)
抗原是由机器人微阵列布置在384孔板和印刷到载玻片如图1, 图2示出了放置在培养室和处理后的扫描滑动一帧滑动。 图3示出了阳性和阴性对照载玻片。负滑动仅与二级抗体探测,与阳性对照载玻片从系统性红斑狼疮的患者探测血清。通过使用两个单独标记的二次抗体,IgG和IgM的反应性可以在同一滑动表面上分离。 图4示出了针对单链DNA(ssDNA)和IgG在宽针对核糖体的P(日波P)的抗体的IgM抗体的荧光强度范围血清稀释的。在从与反对瑞博P已知的反应性系统性红斑狼疮患者的这个实验阳性对照血清使用。林耳响应的IgM抗体通道在所有血清稀释观察。线性响应于IgG的信道到约30,000的MFI-B的观察到的。这点之后,反应开始饱和并增加抗体日波P不会导致在MFI-B的相应增加。 图5示出的阵列是如何可用于检测人血清中的类风湿因子。在这项研究中,使用从患者用冷球蛋白血症血管炎与记录类风湿因子的血清的167国际单位/毫升(通常<11国际单位/毫升)(IgM抗体抗IgG抗体)。使用的第二抗体单独,没有IgM的反应性被认为是针对被点样到阵列的抗体。与此相反,显著的IgM反应性(约5000的MFI B)的抗IgG的检测当滑动与从类风湿因子的患者血清探测。 图6示出了双色抗原微阵列用于与小鼠血清利用的发展。在该图中,小鼠IgM第在点样到阵列仅由到阵列仅由抗小鼠IgG第二抗体检测到有斑点的抗小鼠IgM次级抗体和小鼠IgG检测的图上的扫描的模板网格7示出对准使用微阵列分析软件阵列图像。一旦该阵列的功能已被与网格对齐,阵列特征进行分析,以获得用于每个特征值荧光强度减去背景。

图1.抗原微阵列。抗原的产生首先被放置在源板。在图中所示的源板,抗原被布置在9组,匹配打印头销的3×3布局。然后在源板被放置在机器人微阵列,然后将抗原点到的幻灯片。在这个例子中,2-垫FAST载玻片ARE中使用,允许同一阵列要看准到2硝化纤维表面。 请点击此处查看该图的放大版本。

图2. 抗原微阵列。幻灯片的处理中使用的培养室放置在快速帧和通过添加样品,然后二级抗体进行处理。抗原反应性,揭示与能够检测荧光信号的扫描器。 2垫FAST幻灯片的扫描图像显示, 请点击这里查看该图的放大版本。
<BR /> 图3. 双色抗原微阵列优化与人类血清的使用。 (A)的IgG,IgM抗体,和IgG的Fc仅与第二抗体探测阵列上进行检测。这三种抗原是阳性对照,以显示第二抗体的特异性。红色荧光(IgM的信道)表示抗 - 人IgM第二抗体的结合。绿色荧光抗体(IgG通道)表示的抗人IgG第二抗体的结合。 IgG的Fc的抗原是由于过饱和白色。从已知的反应性瑞博P抗原系统性红斑狼疮患者的阳性对照血清探测阵列上检测到(B)有更多的反应性。的框表示,其中的DNA和日波P的抗原已被被排列的位置。(C)的阳性对照血清中的荧光强度的定量表明,大多数对DNA抗原的抗体反应性的是免疫球蛋白的中号同种型。(D)的阳性对照血清中的荧光强度的定量表明,大部分针对日波P抗原抗体反应性的是IgG同种型。阵列特征点样两份和直径约为500微米。图表显示平均值±标准差为阵列功能。双链DNA,双链DNA;单链DNA,单链DNA; MFI-B,中值荧光强度减去背景;核糖P,核糖体P。 请点击此处查看该图的放大版本。

图4. 荧光强度与血清稀释因子(A)的MFI-B在宽范围的血清稀释度的示出了用于IgM的抗单链DNA和IgG抗日波P.对于这些实验中,使用用抗日波P和ssDNA的已知抗体反应性的阳性对照血清。 MFI-B被以大约65,000值饱和的。所述MFI B数据(B)的LOG2变换揭示在IgG和IgM通道都在宽范围的抗原反应性的线性响应。超过30,000 MFI-B,IgG的信号开始饱和,从而失去线性。阵列的功能包括在6个重复被发现。图表显示平均值±标准差为阵列功能。单链DNA,单链DNA; MFI-B,中值荧光强度减去背景;核糖P,核糖体P。 请点击此处查看该图的放大版本。

图5. 类风湿因子的检测与双色抗原微阵列。 。(B)从具有高类风湿因子冷球蛋白血症血管炎患者血清探测阵列。 IgG的特征为绿色,黄色,由于患者的血清中的IgM结合固定的IgG。有趣的是,该患者也有IgM型抗IgG抗体为IgM抗体功能出现橙色。病人也有先天性心脏疾病的历史和指出具有高反应性的IgG和IgM只与二次抗体探测阵列上设有表明二级抗体没有心肌蛋白肌钙蛋白C.(C)的定量任何交叉反应性。(D)的定量的与病人血清探测阵列上的IgG和IgM特征证实类风湿因子的存在。特征点样两份和直径约为500微米。图表显示平均值±标准差为阵列功能。 MFI-B,中位数荧光强度减去背景。 请点击此处查看该图的放大版本。

图6 的双色阵列发展到简介小鼠血清抗体:(A)阵列仅与第二抗体进行探测。红色荧光指示抗小鼠IgM二级抗体的结合。绿色荧光表示抗小鼠IgG二抗的结合。被点样到阵列的小鼠IgG仅由防谋检测本身IgG二抗,以及被发现仅由抗小鼠IgM二级抗体检测到的小鼠IgM。关于由该二级抗体检测出的阵列的其他功能是针对小鼠IgG或小鼠IgM捕获抗体。用抗组氨酸标记的小鼠IgG单克隆抗体探测(B)的阵列。在此阵列中,日波P抗原(重组his标记蛋白)是绿色,这表明它仅由抗小鼠IgG第二抗体进行检测。这是考虑到的单克隆抗体是IgG同种型的预期。当阵列单独第二抗体(橙色框)探测未检测中的核糖P抗原。IgG抗体,IgM抗体(三)定量和Ribo P与抗组氨酸标记的鼠IgG单克隆抗体探测阵列上的功能。阵列特征点样在六个重复和直径约为500微米。图表显示平均值±标准差为阵列功能。 MFI-B,中位数氟escence强度减去背景;核糖P,核糖体P。 请点击此处查看该图的放大版本。

图7. 模板电网对准到一个数组图片,在这张截图,模板网格,这是从加仑文件生成的,与以前扫描的抗原分子微阵列排列。该阵列由系统性红斑狼疮和血液凝固障碍谁有许多自身抗体的反应性的患者的血清探测。绿色荧光代表的IgG抗体的结合和红色荧光代表IgM抗体结合。由实心销打印的特点是接近圆形,容易被微阵列软件(Genepix)中概述。一旦网格对齐完成后,softwarE能计算每个阵列功能的中位数荧光强度减去背景(在Cy3和Cy5通道两者)。 请点击此处查看该图的放大版本。
作者没有什么可透露的。
我们在这里描述了一种生成可定制抗原微阵列的方法,该方法可用于同时检测人类和小鼠的血清 IgG 和 IgM 自身抗体。这些芯片可对针对任何抗原或目标表位的抗体进行高通量和定量检测。
A.C. 得到了加拿大心脏和中风基金会和再生医学培训计划(加拿大卫生研究院)的博士后奖学金的支持。F.Y.Y.H. 得到了再生医学培训计划的支持。这项工作由 Astellas Pharma Canada 的资助资助。我们还要感谢 Mark Menenghini 博士(多伦多大学)使用他的 Axon 微阵列芯片扫描仪。
| 核糖体 P0 | Diarect | 14100 | 在 PBS 人 IgG 中稀释至 0.2 mg/ml,Jackson |
| Immuno | 009-000-003 | 在 PBS 人 IgM Jackson Immuno 009-000-012中稀释至 0.2 mg | |
| /ml,在 PBS 小鼠 IgG 中稀释至 0.2 mg/ml,Sigma-Aldrich | |||
| I5381 | 在 PBS 小鼠 IgM Biolegend 401601中稀释至 0.2 mg/ml | ||
| 在 PBS 双链 DNA 中稀释至 0.2 mg/ | |||
| D1626 | 在 PBS 单链 DNA 中稀释至 0.2 mg/ | ml,Sigma-Aldrich||
| D8899 | 在 PBS 微阵列仪中稀释至 0.2 mg/ml,Virtek | ||
| VersArray Chipwriter Pro | 多种类型的阵列仪是合适的 | ||
| 固体印刷引脚 | Arrayit Corporation | SSP015 | |
| 机器人微阵列仪 | Virtek | Chipwriter Pro 软件 | |
| FAST 载玻片(2 个垫) | GVS 北美 | 10485317 | |
| FAST 框架 | GVS 北美 | 10486001 | |
| FAST 孵育室(2 个垫) | GVS 北美 | 10486242 | |
| 384 孔板 | Whatman | 7701-5101 | |
| 板密封剂 | VWR | 60941-062 | |
| 铝箔板盖 | VWR | 60941-124 | |
| 吐温-20 | Fisher Scientific | BP337-500 | |
| 胎牛血清 | Invitrogen | 12483020 | |
| Cy3 山羊抗人 IgG | Jackson Immuno | 109-165-096 | 使用 50% glyercol |
| Cy5 山羊抗人 IgM | 的工作原料 Jackson Immuno | 109-175-129 | 使用 50% glyercol |
| Cy3 山羊的工作原料抗小鼠 IgG | Jackson Immuno | 115-165-071 | 使用 50% glyercol |
| Cy5 山羊抗小鼠 IgM | Jackson Immuno | 115-175-075 | 使用 50% glyercol |
| 微阵列扫描仪 | 的工作原液Molecular Devices | Axon 4200A | |
| 微阵列软件 | Molecular Devices | Genepix 6.1 | |
| 聚类软件 | eisenlab.org | Cluster 3.0 | |
| 热图软件 | eisenlab.org | Treeview 1.60 | |
| 微阵列统计软件 | 斯坦福大学 | SAM 4.0(微阵列的显着性分析) |