使用高含量显微镜的细胞氧化还原分析

摘要

本文提出了一种高含量显微镜工作流程，用于同时定量细胞内ROS水平，以及线粒体膜电位和形态 - 共同称为线粒体形态功能 - 使用细胞透过性荧光报告分子5-（和 - 6） - 氯甲基-2'，7'-二氯二氢荧光素二乙酸酯，乙酰酯（CM-H ₂ DCFDA）和四甲基罗丹明甲酯（TMRM）。

摘要

活性氧（ROS）调节基本细胞过程，包括基因表达，迁移，分化和增殖。然而，过量的ROS水平诱导氧化应激状态，伴随着对DNA，脂质和蛋白质的不可逆的氧化损伤。因此，ROS的定量为细胞健康状况提供了直接依据。由于线粒体是ROS的主要细胞来源和靶标，所以在同一细胞中线粒体功能和ROS产生的联合分析对于更好地了解病理生理条件的互连至关重要。因此，开发了基于高含量显微镜的策略，用于同时定量细胞内ROS水平，线粒体膜电位（ΔΨm）和线粒体形态。它是基于自动化的宽场荧光显微镜和生物贴壁细胞的图像分析，生长在多孔板和staine中d与细胞可渗透的荧光报告分子CM-H ₂ DCFDA（ROS）和TMRM（ΔΨm和线粒体形态）。与荧光测定法或流式细胞术相反，该策略允许在实验刺激前后具有高时空分辨率的个体细胞水平的亚细胞参数的定量。重要的是，该方法的基于图像的性质允许除了信号强度之外还提取形态学参数。组合特征集用于探索和统计多变量数据分析，以检测亚群，细胞类型和/或治疗之间的差异。在此，提供了测定的详细描述，以及证明其在化学扰动之后在细胞状态之间明确区分的潜力的示例性实验。

引言

通过ROS产生和ROS消除系统之间的动态相互作用，精细调节细胞内ROS的浓度。两者之间的不平衡引起氧化应激状态。线粒体的主要来源之一是线粒体¹ 。鉴于它们在细胞呼吸中的作用，它们负责大量的细胞内超氧化物（O ₂ ^{· -} ）分子² 。这主要是由于电子传输链的复合物1在强的负内线粒体膜电位（Δψm）， 即线粒体超极化的条件下，电子泄漏到O ₂ 。另一方面，线粒体去极化也与增加的ROS生产相关，指向多种作用模式^{3,4,5 ，}> ^6，7，8 。此外，通过裂解融合机理的蛋白质的氧化还原修饰，ROS共调节线粒体形态^9。例如，碎片与增加的ROS产生和凋亡相关^{， 10,11} ，而丝状线粒体已经与营养物质饥饿和保护相关mitophagy ¹² 。鉴于细胞ROS和线粒体形态功能之间的复杂关系，两者应理想地在活细胞中同时量化。为了做到这一点，基于自动化宽视野显微镜和用荧光探针CM-H ₂ DCFDA（ROS）和TMRM（线粒体Δψm和形态）染色的贴壁细胞培养物的图像分析开发了高含量成像测定。高含量成像是指提取sp关于使用多个互补标记和自动图像分析的细胞表型的信息丰富（ 即大量描述性特征）。当与自动显微镜组合时，可以并行筛选许多样品（ 即高通量），从而增加测定的统计学功能。实际上，协议的主要资产是它允许在同一个信元中同时量化多个参数，而这对于大量的信元和条件来说是可以的。

协议分为8个部分（以下协议详细描述）:1）96孔板中的播种细胞; 2）储备溶液，工作溶液和成像缓冲液的制备; 3）设置显微镜; 4）用CM-H ₂ DCFDA和TMRM装载细胞; 5）首次实时成像测量基础ROS水平和线粒体形态功能; 6）加入叔丁基后进行第二次活体成像过氧化物（TBHP）测量诱导的ROS水平; 7）自动图像分析; 8）数据分析，质量控制和可视化。

该测定法最初是针对正常人皮肤成纤维细胞（NHDF）开发的。由于这些细胞是大而平坦的，它们非常适合于评估2D宽幅图像^{13,14 中的}线粒体形态。然而，通过轻微修改，该方法适用于其他贴壁细胞类型。此外，在CM-H ₂ DCFDA和TMRM的组合之后，工作流程符合各种具有不同分子特异性的荧光染料对1,15。

方案

对于NHDF细胞和使用材料文件中指定的多孔板，描述了下面的方案。有关工作流程的总体概述，请参见图1 。

1.试剂的制备

1. 通过用10％v / v胎牛血清（FBS）和100IU / mL青霉素和100IU / mL链霉素（PS）补充Dulbecco's Modified Eagle Medium（DMEM）来制备完整培养基。对于500 mL完全培养基，加入50mL FBS和5 mL PS至445 mL DMEM。
2. 通过用20mM HEPES补充汉克平衡盐溶液（含镁和钙，但不含酚红）制备HBSS-HEPES（HH）成像缓冲液。对于500 mL HH，加入10 mL 1M HEPES储备溶液至490 mL HBSS。验证pH值，如果需要，调整pH值为7.2。
3. 通过将50μgCM-H ₂ DCFDA冻干粉末溶解在86.5℃下制备1mM CM-H ₂ DCFDA储备溶液，＃181; L无水DMSO。通过涡旋或上下移液混合，并在棕色微量离心管中制备20μL等分试样。储存于-20°C的黑暗中，并在1周内使用。如果储存在N ₂大气保质期内可以增加至少1个月。
   1. 通过将25mg TMRM粉末溶于50mL无水DMSO中制备1mM TMRM储备溶液。通过涡旋或上下移液混合，并在棕色微量离心管中制备10μL等分试样。储存于-20°C的黑暗中。该解决方案至少稳定一年。
4. 通过直接从70％储备溶液（10μL/ 96孔板）中移取体积，为每个实验准备新鲜的叔丁基过氧化物（TBHP）储备（〜7M）的等分试样。将此等分试样保持在4°C直到进一步使用。
5. 通过在1x HH-bu中稀释两次二抗（Alexa Fluor 488驴抗兔和CY3驴抗兔）来制备抗体工作溶液（AB）1000次FFER。

2.设置显微镜和采集协议（±15分钟）

注意:使用配有自动化舞台和百叶窗的宽视野显微镜以及使用20X空气计划校正物镜（NA = 0.75）和EM-CCD摄像机的基于硬件的自动对焦系统执行图像采集。当首次设置测定时，使用含有根据方案说明书染色的对照细胞的测试板来校准XY阶段并优化采集设置。如果采集设置已经确定，可以使用空板进行校准。

1. 将目标降低到绝对基准水平，并校准XY阶段以下软件指令。
2. 确保安装了正确的过滤器立方体。为了可视化CM-H ₂ DCFDA，请使用带有472/30 nm激发带通滤光片的标准GFP滤光片，495 nm截止二向色ic镜和520/35 nm带通发射滤光片。对于TMRM，使用带有540/25 nm带通激励滤光片，565 nm截止分色镜和605/55 nm带通发射滤光片的TRITC滤光镜立方体。
3. 使用采集软件创建成像协议。
   1. 从软件中提供的可用板列表中选择正确类型的多孔板（制造商和代码）。或者使用板和孔尺寸定义您自己的多孔板格式。
   2. 按照软件说明对准井板， 例如定义四个外角井的两个角。此步骤适用于摄像机方向的变化。
   3. 选择需要采集的井。如果软件中没有此选项，请使用与所选孔对应的一组手动定义的XY位置。
   4. 优化采集设置（曝光时间，灯强度，EM增益）e两个通道分别使用测试板。荧光激发光本身引起ROS时，可最大限度地减少曝光和强度。但是，在TBHP治疗前，确定基底CM-H ₂ DCFDA和TMRM信号与背景比至少为2，TBHP治疗后没有饱和。采集设置极大地取决于所使用的显微镜​​设置和细胞类型，但作为参考，当使用130W的金属卤化物灯泡作为光源和根据方案说明书染色的NHDF细胞时的指示性设置如下:对于CM- H ₂ DCFDA和TMRM使用200 ms的曝光时间和ND滤镜8，分别结合15（13 MHz; 14位）和4（27 MHz; 14位）的EM增益。一旦针对特定的设置和单元格类型进行了优化，可以跳过此步骤。
      注意:在整个成像过程中采集设置必须保持一致。对于大规模，多天的实验，灯具必须通过定期的质量控制来保证健康。
   5. 定义采集协议，由连续的λ（波长）采集组成。选择首先要采集的CM-H ₂ DCFDA通道，以最小化测量前的光照。
   6. 定义一个井盘循环，使用2.3.4中定义的采集协议获取位于井选择的每个井的中心周围的4个有规律间隔的非重叠图像。选择蜿蜒图像采集， 即从左到右，从B02到B11，然后从右到左从井C11到C02等等（ 图2A ）。与左至右图像采集相比，这节省了时间。如果软件中没有此选项，请调整在2.3.3中创建的XY位置的自定义集，以进行此成像模式。
   7. 保存成像位置的XY坐标（ 例如 ，在单独的xml文件中），以便轻松重新设计在显微镜重新校准的情况下。如果该测定的读数必须与相同细胞的事后免疫荧光（IF）染色相关，这一点尤为重要。

3 。 96孔板中的接种细胞（45-90分钟，取决于不同细胞系的数目）

1. 在无菌环境中工作，如2级生物安全柜和戴手套。
2. 使用70％v / v乙醇在蒸馏水中净化所有表面和材料。
3. 从培养箱中取出90％汇合细胞培养物的细胞培养瓶，并将其置于生物安全柜中。
4. 用PBS 1x洗涤细胞两次。
5. 在细胞上加入适量的0.05％胰蛋白酶-EDTA溶液，确保覆盖完整的细胞表面（ 例如 T25烧瓶1 mL），37℃和5％CO ₂孵育2 min。
6. 如果所有细胞都分离（用显微镜检查） ），加入培养基（DMEM + 10％FBS + 1％青霉素 - 链霉素; T25烧瓶中±4mL）灭活胰蛋白酶-EDTA溶液。
7. 在室温下以300xg离心5分钟。
8. 弃去上清液，将细胞沉淀重悬于培养基中。确定每种细胞类型的培养基的量以获得与细胞计数相容的细胞浓度。通常，90％的汇合的T25烧瓶的NHDF含有约1-1.5百万个细胞，将其重新悬浮在3-4mL的培养基中。
9. 使用细胞计数室或库尔特计数器计数细胞。
10. 在具有薄的连续聚苯乙烯或玻璃底部（黑色以避免成像期间相邻孔之间的散射和串扰）的黑色96孔板的每个内部60孔中种子8,000-10,000个细胞。当使用不同的条件/处理/细胞系时，将它们的播种位置均匀地分布在板上以便最小化板效应（图2A），除了B01和A01井外，外部井不使用，因为它们更容易发生边缘效应。
11. B01种子8,000-10,000个细胞。这个井将用于焦点调整，就在图像采集之前。
12. 用空气填充空的外部井，以使井和环境之间的梯度（温度，湿度等 ）最小化。
13. 轻轻敲打板三次，然后放回孵化器，以避免细胞生长在斑块中。
14. 培养细胞24小时，或达到汇合程度约。 70％。
15. 将实验的治疗信息保存到名为"Setup.xlsx"的电子表格中。该文件应包含四列，并将用于在数据分析期间将处理与井和图像信息进行链接。四列是:"好"，"待遇数"，"待遇"和"控制"（每排一行）。每个治疗都加以联系具有独特的治疗次数，在数据可视化期间用于确定地块X轴处理的顺序。 control-column指定用作当前行处理控件的处理。典型实验布局和相应设置文件的插图如图2所示 。

4.用CM-H ₂ DCFDA和TMRM装载细胞（±45分钟）

注意:实验当天可以在无菌环境（生物安全柜）中进行细胞处理，但这并不是强制性的，因为细胞将在测定后直接丢弃或固定。

1. 将HH缓冲液加热至37°C。
2. 通过在HH缓冲液中稀释1mM储备溶液50次（加入490μLHH缓冲液至10μLTMRM储备溶液的1份），制备20μMTMRM工作溶液。
3. 准备一个负载具有2μMCM-H ₂ DCFDA和100​​nM TMRM的溶液。为此，在HH缓冲液中稀释1mM CM-H ₂ DCFDA储备溶液500x和20μMTMRM工作溶液200x。
   1. 通常，对于60孔，通过加入15μL的CM-H ₂ DCFDA和37.5μL的TMRM溶液至7447.5μL的HH中，制备7.5mL的加载溶液。
4. 通过在单个流体运动中将板翻转而将细胞从细胞中丢弃。
5. 使用多通道移液管（100μL/孔），用HH缓冲液轻轻洗涤细胞两次。在洗涤步骤之间，通过在单个流体运动中倒转板来舍弃HH缓冲液。
6. 通过向每个孔中加入100μL的加载溶液，再次使用多通道移液管，将细胞装入CM-H ₂ DCFDA和TMRM。在黑暗中，室温孵育25分钟。不要忘了B01。
7. 在这25分钟内，准备氧化剂TBHP的工作溶液，并确保显微镜和附件硬件已打开。
   1. 准备工作溶液I:将7M储备溶液稀释至70mM至100mM（在690μLHH缓冲液中10μL储备液）。
   2. 准备工作溶液II:稀释WS I 100x至1mM（10μLWS I，在990μLHH缓冲液中）。
   3. 准备工作解决方案III:稀释WS III 25x至40μM（对于60孔，在7200μLHH缓冲液中加入300μLWS II）。
8. 25分钟后，如前所述，用100μLHH缓冲液再洗两次细胞。
9. 向所有60个内孔中加入100μLHH缓冲液。

5.首次实时成像测量基础ROS水平和线粒体形态功能（±15分钟）

1. 确保采集软件正常运行，并加载成像协议。
2. 在显微镜上安装板，打开硬件sed自动对焦系统，并使用B01来使用TMRM通道调整自动对焦偏移。由于该过程引起CM-H ₂ DCFDA信号强度的增加，所以从下游图像分析中排除了该井。
3. 运行成像协议。

6.添加TBHP后测量诱导的ROS水平（±20分钟）后的第二次实时成像

1. 小心地从显微镜上取出96孔板。
2. 使用多通道移液管向每个孔中加入100μLTBHP WS III（40μM）（这导致孔中的20μMTBHP浓度）。该化合物用作CM-H ₂ DCFDA染色的内部阳性对照（信号应该升高）以及测量诱导的ROS水平的手段。
   注意:也可以使用H ₂ O ₂代替TBHP，但该化合物的稳定性较差，因此不太可靠。
3. 等待至少3分钟，以使TBHP完全反应CM-H ₂ DCFDA。
4. 在此期间，向井A01加入100μL抗体工作溶液（1 / 1,000）。
5. 将显微镜放回显微镜上并再次使用B01进行对焦。
6. 使用相同的成像协议获取与第一次成像轮次相同的位置。
7. 使用标准化命名法将单个文件夹中的获取数据集导出为单个文件夹，其中包括引用板，TBHP之前或之后处理，以及以下划线分隔的字段和通道。板1，预TBHP处理，井B02，场1和通道1的"P01_Pre_B02_0001_C1"。在图像分析期间将使用该信息（ 例如 ，选择适当的分割设置）以及数据分析期间（用于连接分析数据用正确的治疗方法）。
8. 使用采集协议，在井A01中心周围的所有四个位置获取两个通道的平坦场图像。节省em作为与其他图像相同文件夹中的单独tiff文件使用以下标准化命名:板1，场1和通道1的"P01_FF_A01_0001_C1"。确保信号处于动态范围内;在饱和的情况下，使用较低浓度的抗体工作溶液。
9. 丢弃板或保存进一步处理。
   注意:不用从显微镜上移除板，并使用多通道移液管添加TBHP溶液，而是可以在显微镜平台上安装自动移液器，并与采集软件连接，以便在接收到触发时起作用。这样可以在首次采集后直接向每个井添加TBHP，然后再移动到下一个井。这样，当第一次成像轮次完成时，第二个成像轮可以立即开始，所有的井将与TBHP具有相同的孵化时间。

图像处理与分析（±30分钟/96孔板）

注意:所有图像处理都在FIJI（http://fiji.sc）中执行，该版本是ImageJ免费软件的封装版本。编写了专门的脚本，用于自动分析细胞内ROS和线粒体信号，以及形态参数（RedoxMetrics.ijm，可根据要求提供）。基础算法在Sieprath 等人 ¹ 。

1. 确保FIJI已安装并运行。
2. 启动FIJI并安装宏集（插件 - >宏 - >安装...）。这将调用一些新的宏命令以及一组操作工具来优化分析设置， 如图3A所示 。
3. 打开设置界面，通过单击"S"按钮设置分析设置（ 图3B ）。
   1. 选择图像类型，通道数和使用的孔用于获取平面图像。
   2. 指示哪个通道包含细胞（CM-H ₂ DCFDA通道）或线粒体（TMRM通道），并根据图像质量调整每个通道的预处理和分割参数（ 图3B ）。勾选"背景"和"对比度"复选框，分别执行背景减除或对比度限制的自适应直方图均衡¹⁶ 。定义高斯模糊细胞的西格玛和拉普拉斯线粒体增强。选择自动阈值算法并填写大小排除限制（以像素为单位）。如果选择了固定的阈值而不是自动阈值算法，请填写上限阈值。
   3. 分别通过打开它们并单击菜单中的"C"或"M"按钮分别测试获取的数据集的几个选定图像上的分割设置，分别进行细胞或线粒体细分，并根据需要调整设置。示例结果如图3C所示 。
4. 通过点击"＃"按钮并选择带有图像的文件夹，对所关心的文件夹运行批处理分析。每个文件夹，这将产生一个新的"输出"目录，每个图像包含各个ROI集（zip文件）和结果文件（.txt）。对于两个通道，结果文件包含强度和形态描述符。 CM-H ₂ DCFDA通道（单元格）结果文件包含每个描述符一个图像内的组合ROI的平均值。对于TMRM通道，结果文件每个描述符包含每个单独分割的线粒体ROI的值。
5. 批量分析后，通过点击"V"按钮，目视验证"验证堆栈"上的分割效果，所有图像的超级堆叠具有各自的ROI覆盖。这样，/低分辨率，图像中的焦点失真图像或灰尘/光纤可以快速发现。在数据质量控制期间可以进行进一步的策划（cfr。§8）。

8.数据分析，质量控制（QC）和可视化

原始数据的处理和分析使用R统计免费软件（http://www.rproject.org - 版本3.3.2）和RStudio（http://www.rstudio.com/ - 版本1.0.44）完成。为了快速获取和可视化结果，已经设想出了一个直观的Shiny应用程序¹⁷ （可根据要求提供），它集成和可视化加热图和箱体图中的数据，并进行统计分析。一般而言，工作流程包括两个连续的步骤。首先，每96孔板处理和检查数据以检测异常数据点。其次，将给定实验的所有板的策划数据组合并使用非参数多分析变量测试¹⁸和主成分分析。

1. 确保R和RStudio已安装并可操作。
2. 启动RStudio。
3. 打开RedoxMetrics闪亮的应用程序并运行应用程序（选择在外部浏览器中运行）。
4. 在"输入"页面上，选择RedoxMetrics.ijm中的结果文件所在的目录。
5. 确保"Setup.xlsx"（在步骤3.15中创建）也存在于此目录中。
6. 结果文件和设置信息自动导入，重新排列和可视化。
   1. "实验设置"页面显示实验的布局。使用此页面进行验证。
   2. 下一页"每板结果"分别以彩色编码的多孔板布局以及带有标有名称和图像编号的异常值的框图显示每个板的数据。后者允许轻松检查和识别异常数据点的异常（与特定治疗测量的平均值相比极高或较低的值）， 见图4 ）。
      使用此信息，验证与异常点相对应的图像。如果检测到异常，则必须从分析中移除。当图像的（部分）失焦或高度荧光粉尘粒子干扰适当的分割时，大多数异常是由不正确的分割引起的。可以使用验证堆栈工具快速发现极端情况（步骤7.5），但在此步骤中会发现更多的微妙事件。当没有明显的或技术上的原因找到异常值时，图像不应该从分析中去除。
   3. 可选:创建一个名为"Drop.xlsx"的新电子表格，只有一列名为"Drop"。在此列中列出所有图像的文件名（包括".tif"扩展名）必须从分析中删除（在步骤7.5或步骤8.6.2中确定）。使用"输入"页面上传此文件。
   4. "结果整体实验"页面显示了所有板块的结果。如果下载文件被上传，则该文件用于从分析中删除指定的数据点。
      对于每个参数，每个参数根据各自的控制进行标准化。然后将来自所有板的数据组合，随后来自nparcomp包¹⁸的非参数多变量测试。如果仅比较两种处理，则进行非参数的Behrens-Fisher问题的两个样本测试。对于超过2种治疗，使用非参数对比度多重比较检验。结果使用boxplots可视化。
   5. "集群分析"页面显示了主成分分析（PCA - R core'stats'包）的结果。 5个参数的数据（basal和诱导的ROS和线粒体膜电位，大小和圆形度）组合以基于敏感的氧化还原曲线区分不同的治疗。为此，执行主成分分析（PCA）（R core'stats'package）。结果使用biplot（ggbiplot软件包 - http://github.com/vqv/ggbiplot）可视化。
   6. 使用"下载数据"页面下载包含已处理和重新排列的数据的后端数据帧，以便可以将其重新用于更高级的数据可视化或统计分析。
      注意:典型的陷阱和潜在的解决方案列在表1中 。

结果

该测定已经使用几个对照实验进行了基准测试，其结果在Sieprath et al。 ¹ 。简而言之，CM-H ₂ DCFDA和TMRM的荧光响应分别定量分析了细胞内ROS和Δψm的变化，以确定其动态范围。对于CM-H ₂ DCFDA，当用10μM至160μM范围内的增加的TBHP浓度处理时，NHDF显示出荧光信号的线性增加。同样，对于TMRM，当用1〜10μg/μL范围内增加浓度的寡霉素（其诱导Δψm超极化）处理时，NHDF细胞显示线粒体荧光线性增加。相反，实时添加诱导Δψm去极化的抗生素缬氨霉素导致逐渐的，定量的TMRM荧光的最终降低。

该测定法也用于各种实验，以揭示细胞类型或治疗之间的氧化还原状态差异1,15。为了说明这一点，结果显示了用HIV蛋白酶抑制剂沙奎那韦（SQV）处理NHDF的实验（

讨论

本文介绍了用于同时定量NHDF中细胞内ROS水平和线粒体形态功能的高含量显微镜方法。通过对SQV处理的NHDF的案例研究证明其性能。结果支持早期的文献证据，其中在用1型HIV蛋白酶抑制剂治疗后已经观察到ROS水平升高或线粒体功能障碍，尽管在单独的实验19,20,21,22,23,24,25中。重要的区别是所描述的测定能够在相同的活细胞中同时测量这些参数，以及形态学数据。这种方法的主要优点在于它们在空间和t上的两个因素的明确确定ime，它允许精确定位因果关系。执行主成分分析，其允许产生特定扰动的敏感氧化还原谱。然而，更高级的数据挖掘技术和（监督）聚类算法也可以用于提取的数据，以实现预测氧化还原分析。这可能是数字病理学中诊断或预后分类工具的重要特征，也可用于筛选治疗靶点， 例如，一旦产生了强大的分类模型，可以筛选小分子文库以发现治疗候选物以抵消氧化应激，类似于最近的一个屏幕，有希望导致人类线粒体疾病的治疗发展。

该测定是针对NHDF而设计的，但可适用于其他贴壁细胞类型。这需要优化染色方案和报道染料浓度。数量r必须最小化载体染料，因为过载会导致由于淬火引起的...

材料

本文使用的材料清单

姓名	公司	目录编号	评论
<强>试剂
四甲基罗丹明、甲酯、高氯酸盐 （TMRM）	ThermoFisher Scientific	T668
CM-H2DCFDA（一般氧化应激指示剂）	ThermoFisher Scientific	C6827
二甲基亚砜	Sigma）Aldrich	D8418
MatriPlate 96 孔玻璃底微孔板 630 µL-黑色 0.17 mm 低玻璃盖	Brooks 生命科学系统	MGB096-1-2-LG-L
HBSS 不含酚红 500 mL	Lonza	BE10-527F
含 L-谷氨酰胺的 DMEM 高葡萄糖	Lonza	BE12-604F
不含钙和镁的磷酸盐水 （PBS）	Lonza	BE17-516F
HEPES 1 M 500 mL	Lonza	17-737F
胰蛋白酶-Versene （EDTA） 溶液	Lonza	BE17-161E
Cy3 AffiniPure F（ab'）2 片段 驴抗兔 IgG （H+L）	Jackson	711-166-152	抗体，用于采集平场图像
Alexa Fluor 488 AffiniPure F（ab'）2 片段 驴抗兔 IgG （H+L）	Jackson	711-546-152	抗体，用于采集平场图像
名称	公司	目录号	注释
设备
尼康Ti日食宽视场显微镜	尼康
完美对焦系统（PFS）	尼康		硬件自动对焦系统
CFI Plan Apo Lambda 20X 物镜	尼康
名称	公司	目录号	评论
>软件
NIS Elelements Advanced Research 4.5 with JOBS module	尼康		该软件用于控制显微镜并编程/执行自动图像采集 prototocol
ImageJ （FIJI） 版本 2.0.0-rc-43/1.50g
RStudio 版本 1.0.44	Rstudio
R 版本 3.3.2