方法文章

黏膜衬里流体为体内上呼吸道免疫介质水平量化的无创性取样

DOI：

10.3791/55800

⸱

2017年8月7日

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Copenhagen Prospective Studies on Asthma in Childhood (COPSAC), Herlev and Gentofte Hospital, University of Copenhagen, 2Department of Biotechnology and Biomedicine, Technical University of Denmark

本文内容

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

此协议说明采样的原状黏膜衬里流体从上呼吸道非侵入性方法。它可以用于执行量化的体内水平的蛋白质介质，如细胞因子和趋化因子，在各个年龄段的主题。

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

此协议说明原状的上呼吸道黏膜衬里流体的取样。它还详细介绍了之前在流体溶提免疫调解分析用于研究气道局部免疫签名，而不需要刺激程序 （经常使用的其他技术） 的提取工艺。黏膜衬里流体采样滤纸条上放置在前部的下鼻甲及左 2 分钟的吸收。分析物从滤纸，洗脱和提取基于蛋白质的洗脱液基于电致化学发光免疫分析法，允许高级别中的分析物同一样品的高灵敏度量化分析。我们测量 20 预选免疫调解有关的信号转导通路在上呼吸道粘膜的特异性免疫的体内含量，但技术并不局限于该特定的面板或采样点。第一次在 7 岁儿童从哥本哈根前瞻性研究哮喘在变应性鼻炎的童年2000年(COPSAC2000年) 队列中实现了技术。此后，它被用在纵向 COPSAC2010的出生世代，采样在 1 个月、 2 年和 6 年的年龄和急性呼吸道症状的实例。我们成功地获得和分析样品从 620 （89%) 的 700 名 1 个月岁儿童; 几个样品均低于检测检出限 （据中位数 (四分位数范围 (IQR))。低于检测限 （即从 0 到设定点下限为） 为每个调解员样本数目是检测的 29 (7.25-119.5)。这种技术使体内气道粘膜免疫配置文件从出生的量化，可以纵向，应用和可应用于研究遗传学和早期生活环境暴露、 病理生理学、 endotyping，和监测呼吸系统疾病，以及发展和评价的新型疗法的疗效。

引言

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

鼻黏膜衬里流体弥补了上呼吸道系统的液体部分。它是由复杂的矩阵的调解员来自上皮和弥补防御入侵的微生物的第一行的免疫细胞之间的相互作用。鼻黏膜是方便，还有鼻子和支气管1强大功能和免疫学关系。这种间隔是特别感兴趣就是在童年，如哮喘和变应性鼻炎，但也对一系列的以后的生活中更为普遍其他呼吸道疾病中常见的呼吸道疾病。

在这里，我们描述与样品不受干扰的黏膜衬里流体从鼻腔用基于过滤纸、 无创的技术，以及以后的提取过程，用来洗脱基于蛋白质的分析物从过滤纸之前，其量化方法的实现。这种技术为例，可以用于获取体内免疫签名的健康个体和个人的多种呼吸道疾病。此外，有可能审查暴露为一个特定的免疫签名的重要性，并评价如果它是一个预测或以后的疾病发展的调停者。

黏膜衬里液得到以前了鼻腔灌洗2，这之前通常会出现鼻内激发试验，在高水平，以刺激炎症反应3，4，过敏原介绍了。。然而，鼻腔灌洗技术在年幼的孩子是不可行和介绍了未知的稀释因子，迷惑的成果，作为水平可以低于检测限的测定5稀释调解员。此外，由于未知的稀释因子，从鼻内激发试验的实测分析物反应不可同日而语之间个人，从而限制了鼻腔灌洗技术在设置队列的有用性。最后，过敏原挑战只是适用在敏化的主题，和其他挑战，如组胺的挑战，不是生理上有关，有可能导致对介质释放的天花板效应。在提出的基于过滤纸的技术为黏膜衬里流体集合，在那里个别分泌液和分析物水平是影响个体间方差的唯一因素规避了这些问题。

在提取过程中，分析物是从洗脱过滤纸相同的卷的缓冲区在加入后的所有样品。这有利于类似体外稀释的所有样品。基于白蛋白的等渗盐溶液提取缓冲区用于提取步骤;它支持基于蛋白质的调解员的提取和稳定限制之前，量化洗脱蛋白质在随后冻结变性的蛋白质。为了避免在提取阶段的蛋白质降解，蛋白酶抑制剂的鸡尾酒被加入提取缓冲液。

允许不受干扰，体内的量化的技术执行-粘膜部位生成免疫调解员是至关重要。首先，粘膜网站构成了最大的免疫器官，在正文中。第二，鼻位置是机载暴露在主站点和紧密连接到肺1呼吸系统免疫室。第三，测量与无创技术这重要器官的可能性打开的可能性与健康和疾病的气道重要微生物免疫相互作用轴上提供大量的信息。第四，有很多其他可能的应用，这种技术，例如研究当地的免疫学改变的随机对照试验的药物和微量营养素。

我们最初在童年2000年(COPSAC2000年) 队列，在那里我们确定免疫流体分布的黏膜衬里在变应性鼻炎与健康对照组137 岁患儿在哥本哈根前瞻性研究哮喘实施技术。随后，我们成功地将此技术应用到 COPSAC2010的纵向队列和分摊气道免疫配置文件在 1 个月、 2 年和 6 年的年龄和急性呼吸道症状的实例。从 1 个月岁新生儿表明免疫签名和早期生活环境暴露7，8，9，10，，1112之间的重要关联。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

根据赫尔辛基宣言 》 的指导原则进行了研究。得到了从哥本哈根 (KF 01-289/96 COPSAC2000年) 和 H-B-2008年-093 COPSAC2010年和丹麦数据保护机构伦理委员会的批准，并从父母双方各学科入学前获得了书面的知情同意。

1.实验装置

  1. 使用的筛选器纸张 （纤维羟基化聚酯床单，见表的材料）6，7。
    1. 带 3 x 15 毫米大小为 1 个月的孩子和一个 L 形适合大龄儿童和成人 (5 × 20 × 10mm （短臂上的 L）)。
  2. 使用镊子婴儿每个鼻孔中插入一张过滤纸。将滤纸放在下鼻甲 （大约 1 厘米内新生儿鼻孔和 1.5 厘米，所有其他年龄段） 的前部。
    1. 将新生儿放在一张床上，给他们糖水舒适。
      注: 为所有其他年龄段的儿童，进行取样最轻松地坐在椅子上的主题。
    2. 大一点的孩子，将插入到每个鼻孔的 L 形过滤纸长的胳膊。
  3. 应用鼻夹鼻孔，尽量减少不适，避免意外损失的过滤纸周围。
  4. 2 分钟的吸收后删除筛选器文件。
  5. 将滤纸放在标记管和冻结他们立即在-80 ° c。
  6. 记下呼吸道感染采样日被孩子显示任何症状。
  7. 记录任何打喷嚏、 持久性哭泣，或在 2 分钟的采样过程中发生的鼻出血。

2.量化的气道免疫调解员

  1. 从冰柜里拿达 10 个随机样本。记录的标识号。在整个工作过程中保持样品在冰上。
  2. 解冻后在冰上，浸泡过滤纸 （每个主题） 从两个鼻孔在 300 微升的新鲜缓冲 （见材料表） 包含一个完整的蛋白酶抑制剂平板电脑 （见表的材料） 每 25 毫升的缓冲区。
    1. 调整音量的过滤纸大小的缓冲区。
      1. 用于过滤纸 3 x 15 毫米大小 300 微升的缓冲区。
      2. 如果只有一个过滤纸可用，使用一半的缓冲区卷 （150 μ）。
  3. 样品将转移到板振动筛 (400 rpm) 5 分钟使用计时器。
  4. 湿润的滤纸和缓冲液转入杯醋酸纤维素管滤清器 （0.22 微米孔隙大小），放置在离心管 （见表的材料）。
  5. 在 16,000 x g 5 分钟 （在 4 ° C) 的冷却离心机离心获得筛选鼻提取物管中。
  6. 删除杯和保持同时 aliquoting 冰上的管鼻提取物 （见表的材料） 的低蛋白结合存储板入井。
  7. 保存在-80 ° C，直到分析。
  8. 确定浓度的细胞因子和趋化因子在鼻提取使用高灵敏度，基于 electrochemiluminesce 的多路复用的芯片系统 （见表的材料）。
    注: 人类 10 丛 TH1/TH2 细胞因子测定，9 丛趋化因子测定，与单丛 IL-17A、 TGF-β 1 和 TSLP 在这里执行。
    1. 为测定，孵育鼻提取一夜之间在 4 ° c。进行测量，每硬件制造商的标准协议 （见表的材料）。
      注: 免疫分析 （见表的材料） 通常具有高动态范围测量介于 1 & 10,000 pg/mL，但对于一些检测方法，这可以是 100,000 pg/mL。这意味着，所有的样品可以运行在相同的稀释，从而限制在健康和疾病的学科，不同稀释的影响，正如在其他类似的免疫情况。所有细胞因子检测的下限是 1ml pg 或更少，和趋化因子，它介于 1 & 50 pg/mL。TSLP 不是年龄的 98%的样本中检测到 1 个月。

3.统计数据

  1. 日志-变换之前获得的细胞因子和趋化因子水平通常分布式残差的分析数据。
  2. 如果样品分析在多个批次，纠正批围绕对数转换数据的细胞因子和趋化因子的数据。
    1. 纳入总体均值和反对数变换，以获得原始的度量单位的数据。
      注: 对于每个组所作的分析，考虑调整变量会影响细胞因子和趋化因子水平。这可能是孕产妇的影响 （例如，酒精消费和怀孕期间吸烟）、 母乳喂养、 不良事件在采样、 兄弟姐妹、 带宠物在家里，等

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

气道免疫谱的基线特征：
在 COPSAC2010 队列中登记的 700 名儿童中，有 620 名 （89%） 获得了 1 个月大时上气道粘膜免疫介质水平的完整数据。在该技术建立之前入组了 10 例新生儿，19 例未参加 1 个月的访视。此外，47 个样品被排除在外，因为它们是在试点研究中使用的另一个实验室提取和测量的，4 个样品在运输过程中丢失（参见研究流程图，图 1）。该队列的基线特征如表 1 所示。

大多数介质的检出水平较低<10 pg/mL（IL-1β、IL-2、IL-4、IL-5、IL-10、IL-12p70、IL-13、IL-17A、TGF-β1、IFN-γ、TNF-α、CXCL8、CCL13、CCL4 和 CCL17），而 5 种介质的检出水平为 >10 pg/mL（CXCL10、CCL2、CCL11、CCL26 和 CCL22）（表 2）。每个介质低于检测...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

这里介绍的技术，我们得以确定体内上呼吸道黏膜免疫中的配置文件从早在 1 个月的年龄，以前也没有过以前的儿童。我们观察到这种存在的特定气道细菌和核糖核酸7，11，以及其他前和围产期风险敞口，映出的气道新生儿免疫配置文件中。此外，我们用这些气道免疫配置文件数据来研究高剂量维生素 D.随机微量营养素审判的作用机制这些结果强调的正当性和黏膜衬里流体技术作为一种无创的采样技术随后体内定量的气道免疫调解的效用。

以下几点是值得考虑在方法执行之前: 为了测量细胞因子在黏膜衬里流体矩阵中的，很重要的是使用基于高灵敏度的免疫分析方法，如所提供的电致化学发光的协议。酶联免疫检测法的使用可以导致中吸光度读数的推理。此外，虽然鼻子及支气管的紧密关系，上呼吸道免疫剖面测量仍然是限制。抽样进行上部的粘膜层;因此，我们期望流体主要代表的凝胶层，不溶胶层组成。我们不度量粘膜层标记，证实了这一点，这是一种限制。在理论上鼻液分泌的个体差异可能会影响细胞因子和趋化因子...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

所有作者申报没有潜在、 感知，或实际的利益冲突关于这份手稿的内容。供资机构并没有任何作用，设计并进行研究;收集、 管理和解释数据;或制备、 审阅和审批的手稿。没有一个制药公司是参与这项研究。

致谢

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

我们感谢我们向儿童和家庭的 COPSAC2010队列研究他们的支持和承诺。我们承认并感谢 COPSAC 的研究团队和技术帮助从技术员利斯贝思 Buus 罗斯霍尔姆，丹麦技术大学的细胞因子和趋化因子测量的独特努力。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
纤维羟基化聚酯片材Accuwik Ultra SPR0730滤纸
Milliplex 检测缓冲液 MilliporeL-AB缓冲液
低蛋白结合储存板 Thermo ScientificCLS8161板
蛋白酶抑制剂Roche11873580001完全不含 EDTA 的蛋白酶抑制剂混合物
多点板的酶标仪中尺度NA扇形成像仪 6000
分析 中尺度人 10 重 TH1/TH2 细胞因子测定和 9 重趋化因子测定，以及单重 IL-17A、TGF-β;1和 TSLP。可以在 www.mesoscale.com 上找到在线描述

参考文献

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bousquet, J., van Cauwenberge, P., Khaltaev, N. Allergic Rhinitis and Its Impact on Asthma. J Allergy Clin Immunol. 108 (5), Supplement 147-334 (2001).
  2. Howarth, P. H., Persson, C. G. A., Meltzer, E. O., Jacobson, M. R., Durham, S. R., Silkoff, P. E. Objective monitoring of nasal airway inflammation in rhinitis. J Allergy Clin Immunol. 115 (3), Supplement 414-441 (2005).
  3. Bensch, G. W., Nelson, H. S., Borish, L. C. Evaluation of cytokines in nasal secretions after nasal antigen challenge: lack of influence of antihistamines. Ann Allergy Asthma Immunol. 88 (5), 457-462 (2002).
  4. Sussman, G. L., Mason, J., Compton, D., Stewart, J., Ricard, N. The efficacy and safety of fexofenadine HCl and pseudoephedrine, alone and in combination, in seasonal allergic rhinitis. J Allergy Clin Immunol. 104 (1), 100-106 (1999).
  5. Bisgaard, H., Robinson, C., Rømeling, F., Mygind, N., Church, M., Holgate, S. T. Leukotriene C4 and histamine in early allergic reaction in the nose. Allergy. 43 (3), 219-227 (1988).
  6. Chawes, B. L. K., et al. A novel method for assessing unchallenged levels of mediators in nasal epithelial lining fluid. J Allergy Clin Immunol. 125 (6), 1387-1389 (2010).
  7. Følsgaard, N. V., et al. Pathogenic bacteria colonizing the airways in asymptomatic neonates stimulates topical inflammatory mediator release. Am J Respir Crit Care Med. 187 (6), 589-595 (2013).
  8. Følsgaard, N. V., et al. Neonatal Cytokine Profile in the Airway Mucosal Lining Fluid Is Skewed by Maternal Atopy. Am J Respir Crit Care Med. 185 (3), 275-280 (2012).
  9. Chawes, B. L., et al. Effect of Vitamin D3 Supplementation During Pregnancy on Risk of Persistent Wheeze in the Offspring: A Randomized Clinical Trial. JAMA. 315 (4), 353-361 (2016).
  10. Bischoff, A. L., et al. Altered Response to A(H1N1)pnd09 Vaccination in Pregnant Women: A Single Blinded Randomized Controlled Trial. PloS One. 8 (4), 56700(2013).
  11. Wolsk, H. M., et al. Picornavirus-Induced Airway Mucosa Immune Profile in Asymptomatic Neonates. J Infect Dis. 213 (8), 1262-1270 (2016).
  12. Wolsk, H. M., Chawes, B. L., Følsgaard, N. V., Rasmussen, M. A., Brix, S., Bisgaard, H. Siblings Promote a Type 1/Type 17-oriented immune response in the airways of asymptomatic neonates. Allergy. 71 (6), 820-828 (2016).
  13. Alam, R., Sim, T. C., Hilsmeier, K., Grant, J. A. Development of a new technique for recovery of cytokines from inflammatory sites in situ. J Immunol Methods. 155 (1), 25-29 (1992).
  14. Ishizaka, A., et al. New bronchoscopic microsample probe to measure the biochemical constituents in epithelial lining fluid of patients with acute respiratory distress syndrome. Crit Care Med. 29 (4), 896-898 (2001).
  15. Ishizaka, A., et al. Elevation of KL-6, a lung epithelial cell marker, in plasma and epithelial lining fluid in acute respiratory distress syndrome. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 286 (6), 1088-1094 (2004).
  16. Nakano, Y., et al. Endothelin-1 level in epithelial lining fluid of patients with acute respiratory distress syndrome. Respirology. 12 (5), 740-743 (2007).
  17. Komaki, Y., et al. Cytokine-mediated xanthine oxidase upregulation in chronic obstructive pulmonary disease's airways. Pulm Pharmacol Ther. 18 (4), 297-302 (2005).
  18. Moeller, A., Franklin, P., Hall, G. L., Horak, F., Wildhaber, J. H., Stick, S. M. Measuring exhaled breath condensates in infants. Pediatr Pulmonol. 41 (2), 184-187 (2006).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

Mucosal Lining FluidUpper AirwayImmune Mediator QuantificationNoninvasive SamplingFilter Paper AbsorptionElectrochemiluminescence ImmunoassayNasal Extract AnalysisProtease Inhibitor SupplementLow Protein Binding StoragePediatric Respiratory Diseases

相关文章