需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

利用智能手机实时追踪DNA片段分离

14.1K 次观看

⸱

DOI:

10.3791/55926

⸱

2017年6月1日

本文内容

摘要

传统的凝胶电泳(SGE)实验需要复杂的设备且化学试剂消耗量大。本研究介绍了一种低成本、可在短时间内分离DNA片段的方法。

摘要

平板凝胶电泳(SGE)是分离DNA片段最常用的方法,因此被广泛应用于生物学及其他领域。然而,传统的SGE实验步骤繁琐,耗时较长,且化学试剂消耗量大。本研究提出一种基于SGE芯片的DNA片段分离简易方法。该芯片由雕刻机制备,使用两张塑料片分别用于光学信号的激发和发射波长。DNA条带的荧光信号由智能手机采集。为验证该方法的有效性,对50、100和1,000 bp的DNA标准品进行了分离。结果表明,采用该方法可在12分钟内实现5,000 bp以下DNA标准品的高分辨率分离,说明该方法是传统SGE技术的理想替代方案。

引言

平板凝胶电泳(SGE)是分离DNA片段最有效的方法1,2,3,4,5 因此,它被认为是生物化学和生物学分析中的一种多功能工具6,7,8然而,许多实验表明,SGE 受限于以下四个问题:(1)分离过程耗时数小时甚至数天;(2)化学试剂消耗量很大;(3)需要复杂的装置例如, 二维电泳槽、电泳电源和凝胶成像系统);(4)凝胶成像系统仅能在实验结束后观察分离的DNA片段。此外,SGE中常用的溴化乙锭(EtBr)9,10具有致突变性和致癌性11,12因此,操作含有溴化乙锭(EtBr)的凝胶时应始终佩戴手套。

与传统凝胶电泳(SGE)相比,毛细管电泳(CE)具有多种优势13,14,15,16,17,例如可实现自动化操作、分离时间短、试剂消耗量低。然而,CE仪器价格昂贵。因此,为克服这些局限性,已开发出一种用于DNA分离的系统(图1)。该系统不仅可显著减少化学试剂的消耗,并缩短SGE实验时间(<8 分钟),还能通过智能手机实时追踪琼脂糖凝胶中DNA的分离过程。通过遵循本实验方案所述的操作步骤,学生应能够设计并制备SGE芯片,在芯片中制备琼脂糖凝胶,搭建一个包含智能手机的简易SGE系统,并记录DNA在琼脂糖凝胶中的迁移过程。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

1. SGE芯片的基本设计

  1. 使用任何透明塑料,例如聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA)或聚碳酸酯。
    注意:SGE芯片在图1B中展示。SGE芯片包含用于TBE缓冲液的圆柱形孔、用于DNA分离的通道,以及沿孔道嵌入的两条用于电极的通道。
  2. 使用激光雕刻机在PMMA块中加工SGE通道阵列。
    注意:芯片的几何参数取决于待分离DNA的大小。例如,当DNA片段小于1,000 bp时,SGE芯片的最佳通道参数为2.5 mm × 4.0 mm × 90 mm(宽 × 深 × 长)。
  3. 根据SGE设计,加工梳状结构以在芯片中形成加样孔,用于加载DNA样品。

2. 琼脂糖凝胶的制备

  1. 通过将10×TBE(1×TBE = 89 mM Tris、89 mM 硼酸和 2 mM EDTA;pH 8.4)与蒸馏水按1:19的比例混合,配制0.5×TBE溶液。
  2. 制备1.0%琼脂糖凝胶,用于分离100 bp DNA Ladder。
    注意:在0.5×TBE缓冲液中琼脂糖的浓度取决于待分离DNA片段的大小。
  3. 将0.1 g琼脂糖放入烧瓶中,并加入10 mL 0.5×TBE缓冲液。
    注意:所配制溶液的体积应小于烧瓶容量的1/3。
  4. 用保鲜膜密封烧瓶,然后将琼脂糖/缓冲液混合物放入微波炉中加热(中火,1.0分钟)。在将烧瓶放入微波炉前,需在保鲜膜上扎几个小孔,以防爆炸。
  5. 将2.7 mL熔化的琼脂糖溶液倒入SGE芯片的4个通道中。将梳子插入琼脂糖溶液中以形成加样孔。
    注意:熔化的琼脂糖溶液在室温下3分钟后将冷却凝固成凝胶状态。
  6. 从凝胶中取出梳子,并加入0.9 mL 0.5×TBE缓冲液覆盖凝胶表面。

3. 在 SGE 芯片中运行电泳

  1. 打开LED光源,并在光源上方放置一个425至505 nm的带通滤光片。
  2. 使用涡旋振荡器将14.4 µL的100 bp DNA Marker与1.6 µL SYBR Green混合。
  3. 取4 µL混合液加入SGE芯片琼脂糖凝胶的每个加样孔中(图2)。
  4. 将电极插入SGE芯片的两个电泳通道中。
  5. 在SGE芯片上方放置一个550至700 nm的带通滤光片。
  6. 开启电源,将电压设置为180 V(20 V/cm),同时打开智能手机以记录DNA片段的分离过程(图3)。
  7. 10分钟后电泳结束,关闭电源和LED光源。
  8. 清洗SGE芯片。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

图4、图5 和 图6 分别展示了50、100和1,000 bp DNA标准品经凝胶电泳后的典型结果。实验完成后,DNA片段得到了良好的分离。此外,相同的样品在SGE芯片的4个通道中被分离,表明相同大小的DNA片段在每次实验中迁移的距离一致。

通过分析DNA片段迁移距离与其大小对数之间的关系,可以评估DNA标准品的分离效果;因此,SGE可用于计算未知DNA片段的大小。图3显示,当DNA片段大小小于700 bp时,迁移距离与DNA大小的对数呈线性关系。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

琼脂糖凝胶电泳广泛用于分离 DNA、RNA 和蛋白质。本研究提出一种新方法,以替代传统的凝胶电泳流程。结果表明,50、100 和 1,000 bp 的 DNA Marker 可在该小型化组装装置中实现良好分离。该方法的显著优势在于,不仅能够以极少的化学试剂消耗分离核酸,还可记录整个分离过程。尽管在图2中 DNA 片段看起来较宽,但通过优化 SGE 芯片参数和琼脂糖凝胶浓度,结果可进一步改善。此外,若芯片中使用预制胶,整个 SGE 过程不超过 10 分钟。

如果改变芯片中的通道宽度,DNA标准品的分离效果会有显著差异。例如,在分离1,000-bp DNA标准品时,若通道宽度较小,DNA条带会显得更宽。这可能是由于琼脂糖凝胶中的焦耳热效应非常强18,从而影响了分离效果。

本文提出的SGE方法非常简单。如果对该系统进行优化,可开发出便携式微型SGE装置。这种装置可用于即时检验实验室检测。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

未声明任何利益冲突。

致谢

我们衷心感谢国家自然科学基金(编号:21205078)和中国高校博士学科点专项科研基金(编号:20123120110002)的支持。本工作还部分得到了国家重点研发计划(2016YFB1102303)、国家基础研究计划(973计划;2015CB352001)以及国家自然科学基金(61378060)的资助。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
10×TBE北京索莱宝科技有限公司 &科技有限公司T1051
50 bp DNA ladderTakara Bio 公司3421A
100 bp DNA ladderTakara Bio 公司3422A
1 kbp DNA标准品Takara Bio 公司3426A
SYBR GREENTakara Bio 公司5760A
琼脂糖Sigma-Aldrich 公司V900510

参考文献

  1. Carle, G. F., Olson, M. V. Separation of chromosomal DNA molecules from yeast by orthogonal-field-alternation gel electrophoresis. Nucleic. Acids. Res. 12 (14), 5647-5664 (1984).
  2. McDonell, M. W., Simon, M. N., Studier, F. W. Analysis of restriction fragments of T7 DNA and determination of molecular weights by electrophoresis in neutral and alkaline gels. J. Mol. Biol. 110 (1), 119-146 (1977).
  3. Fangman, W. L. Separation of very large DNA molecules by gel electrophoresis. Nucleic. Acids. Res. 5 (3), 653-665 (1978).
  4. Blum, H., Beier, H., Gross, H. J. Improved silver staining of plant proteins, RNA and DNA in polyacrylamide gels. Electrophoresis. 8 (2), 93-99 (1987).
  5. Gödde, R., et al. Electrophoresis of DNA in human genetic diagnostics-state-of-the-art, alternatives and future prospects. Electrophoresis. 27 (5-6), 939-946 (2006).
  6. Studier, F. W. Analysis of bacteriophage T7 early RNAs and proteins on slab gels. J. Mol. Biol. 79 (2), 237-248 (1973).
  7. Sugden, B., De Troy, B., Roberts, R. J., Sambrook, J. Agarose slab-gel electrophoresis equipment. Anal. Biochem. 68 (1), 36-46 (1975).
  8. Rabilloud, T., Chevallet, M., Luche, S., Lelong, C. Two-dimensional gel electrophoresis in proteomics: Past, present and future. J. Proteomics. 73 (11), 2064-2077 (2010).
  9. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose gel electrophoresis for the separation of DNA fragments. J. Vis. Exp. (62), e3923(2012).
  10. Gasser, R. B., et al. Single-strand conformation polymorphism (SSCP) for the analysis of genetic variation. Nat. Protoc. 1 (6), 3121-3128 (2006).
  11. Matselyukh, B. P., Yarmoluk, S. M., Matselyukh, A. B., Kovalska, V. B., Kocheshev, I. O., Kryvorotenko, D. V., Lukashov, S. S. Interaction of cyanine dyes with nucleic acids: XXXI. Using of polymethine cyanine dyes for the visualization of DNA in agarose gels. J. Biochem. Biophys. Methods. 57 (1), 35-43 (2003).
  12. Lunn, G., Sansone, E. B. Ethidium bromide: destruction and decontamination of solutions. Anal. Biochem. 162 (2), 453-458 (1987).
  13. Li, Z., Liu, C., Zhang, D., Luo, S., Yamaguchi, Y. Capillary electrophoresis of RNA in hydroxyethylcellulose polymer with various molecular weights. J. Chormatogr. B. 1011, 114-120 (2016).
  14. Li, Z., Liu, C., Ma, S., Zhang, D., Yamaguchi, Y. Analysis of the inhibition of nucleic acid dyes on polymerase chain reaction by capillary electrophoresis. Anal. Methods-UK. 8 (11), 2330-2334 (2016).
  15. Liu, F., et al. Developing a fluorescence-coupled capillary electrophoresis based method to probe interactions between QDs and colorectal cancer targeting peptides. Electrophoresis. 37 (15-16), 2170-2174 (2016).
  16. Wang, J., et al. A capillary electrophoresis method to explore the self-assembly of a novel polypeptide ligand with quantum dots. Electrophoresis. 37 (15-16), 2156-2162 (2016).
  17. Miao, P., et al. Nuclease assisted target recycling and spherical nucleic acids gold nanoparticles recruitment for ultrasensitive detection of microRNA. Electrochim. Acta. 190, 396-401 (2016).
  18. Heller, C. Principles of DNA separation with capillary electrophoresis. Electrophoresis. 22 (4), 629-643 (2001).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

标签

SNAP凝胶电泳智能手机追踪琼脂糖凝胶制备TBE缓冲液使用LED光源带通滤光片SYBR Green染色凝胶成像系统