表征细胞迁移在三维体外伤口环境

Summary

本议定书的目标是评估 pro 和反 migratory 因素影响三维纤维蛋白矩阵内的细胞迁移。

Abstract

目前，大多数体外模型的伤口愈合，既定的划痕检测等，涉及研究细胞迁移及创面闭合二维的曲面上。然而，哪些体内伤口愈合发生的生理环境是三维的而不是二维。它变得越来越清楚的细胞行为大大在不同二维与三维的环境;因此，就需要更多生理有关体外模型研究细胞迁移行为在伤口闭合。此处所述的方法可以更好地反映生理条件比先前建立的二维划痕检测三维模型中的细胞迁移的研究。这个模型的目的是评价细胞产物经细胞迁移远离嵌入或反 migratory 因素纤维蛋白基质的球体身体检查。使用此方法，从一个三维矩阵椭球体内细胞产物可以观察和随时间通过明视场显微镜和分析球体的身体部位是很容易量化。Pro 洄游和/或抑制因素对细胞迁移的影响也可以在此系统中进行评估。这种方法给研究者提供一种分析在三维伤口关联矩阵体外细胞迁移的简单方法，从而提高关联性体外细胞研究之前，使用体内动物模型。

Introduction

伤口愈合是一个复杂的过程，从而导致组织完整性损伤后的修复。这个过程分为四个相互重叠的步骤，包括止血、 炎症、 扩散和重构，每个受规管的可溶性线索、 细胞与基质的相互作用和细胞间通讯的复杂组合。^1,2这些线索业务流程控制大量的伤口愈合过程，重要的，包括细胞迁移中的细胞反应。^3,4细胞迁移是一个高度动态的过程依赖于细胞表型和细胞外基质环境的生物化学和生物物理属性。⁵细胞不断探讨其细胞外基质环境通过整合素介导的途径;这一过程可使细胞感觉种类繁多的矩阵属性包括地形、 僵硬和约束。细胞迁移的二维 (2D) 分析演示迁移由板状伪足形成在前缘通过代肌动蛋白丝束。随后形成粘着斑在领先的优势，在后缘，驱动收缩和回缩肌动球蛋白结合的驱动单元格前进。⁶三维 (3D) 细胞迁移目前不很清楚，然而，最近的研究表明，三维迁移是明显不同于上述描述二维空间中的机制和可能由变质机制。例如，最近的研究由皮特et al。表明，ECM 的属性，3D 矩阵中的单元格可以伪足和 lobopodium 驱动的迁移机制之间切换。⁷细胞迁移是愈合反应的一个关键组件，因为 3D 模型的细胞迁移是伤口愈合过程中了解到各种刺激的生理反应的关键。虽然 2D 表面细胞洄游行为已被证明在 3D 矩阵迁移有较大差别，最新体外模型的细胞迁移在创面愈合过程中，包括既定的划痕检测，利用二维单层文化。^{5,6,7,8,9,10,11,12,13,14}更最近开发的检测方法有利用 3D 的矩阵，但仍然培养细胞单层上矩阵，从而限制了能够真正复述三幅员的细胞环境中体内。¹⁵

本文所述方法的目的是研究细胞迁移在生理相关的 3D 模型，而不是二维的表面，以获得更健壮的理解迁移反应与应用刺激相关联。此方法允许为内激活或抑制途径与细胞迁移有关的因素 3D 纤维蛋白凝块基质细胞迁移的评价。纤维蛋白矩阵被选为这种方法由于纤维蛋白关键作用在早期阶段的伤口愈合;以下损伤，纤维蛋白凝块形成内伤口环境，遏制失血和充当支架为初始细胞浸润在组织修复和重建。^{2,16,17,18,19,20}此外，纤维蛋白用于临床作为一个外科的密封胶，密封胶的组成已经离不开细胞迁移和最终愈合结果。先前的研究由 Cox et al。由不同纤维蛋白和凝血酶浓度为优化纤维蛋白组成的纤维蛋白凝块，研究碱性成纤维细胞迁移。在这些研究中，从塑料盘子上的纤维蛋白凝块的细胞迁移的量化。²⁰在这里我们提出一种允许在 3D 纤维蛋白环境内的细胞迁移的定量方法。虽然在本议定书中具体描述的方法使用纤维蛋白，此模型可以容易地修改使用替代基质材料，作为所需，如胶原或其他 3D 矩阵。此外，我们目前使用的成纤维细胞球体在这种测定方法因为碱性成纤维细胞迁移到创面上是非常重要的细胞外基质合成和组织修复/改建。然而，在修复过程中中性粒细胞的过程是要迁移到创面上，其次是巨噬细胞的第一单元格类型。成纤维细胞然后开始渗入伤口环境后最初的损伤，在创伤愈合过程的增殖期初约 48 小时。¹⁹这种测定方法可以容易地修改，包括中性粒细胞、 巨噬细胞或其他细胞类型以评估纤维蛋白凝块结构的变化是如何影响这些类型的细胞迁移。²¹

若要实现这种测定方法，第一，成纤维细胞球体被形成使用先前描述的干细胞培养技术改造。²²成纤维细胞球体随后转入 3D 纤维蛋白矩阵和产物然后可以轻松地监视和量化几天。本议定书考虑到 3D 的生理系统通过嵌入 3D 细胞球形内纤维蛋白矩阵，从而避免限制使用二维生长表面与细胞单层模型洄游行为所带来的相关性，而还允许高度控制在体外环境中的细胞行为的评定方法。

Protocol

1.一天 1: 细胞和试剂制备

注: 所有单元格和试剂的准备工作应在生物安全柜，防止样品污染。

1. 温暖过滤杜尔贝科 ' s 改良鹰 ' s 介质 (DMEM)，胎牛血清 (FBS)，L-谷氨酰胺，并在 37 ℃ 水浴中青霉素/链霉素。
2. 准备新生儿人真皮成纤维细胞 (HDFn) 媒体通过补充温暖 DMEM 10%胎牛血清、 1%青霉素/链霉素和 1 %l-谷氨酰胺。
3. 解冻一瓶的冷冻 HDFns 和离心机在 200 x g 8 分钟删除超低温保存介质。悬在准备 HDFn 介质密度为 1 × 10 ⁶ 细胞/毫升和种子入 T-75 培养瓶中的细胞。
4. 地方烧瓶中孵化器 （37 ° C，5%CO ₂），使细胞增殖。
5. 商店 HDFn 媒体在 4 ° C.
6. 根据需要准备 pro 和反 migratory 试剂。

2。第 3 天: 球体制备

1. 执行以下操作在文化罩，以防止污染样品。
2. 当细胞到达 80%融合，吸出媒体和添加 5 毫升的 0.25%胰蛋白酶-EDTA。在 37 ° C 5 分钟要充分分离细胞从瓶表面孵化器存储瓶。
3. 将 5 毫升的温暖的媒体添加到瓶子以抵消胰蛋白酶。
4. 在微量离心管中，混合台盼蓝 10 μ L 和 10 μ L 细胞悬液。
5. 离心机在 200 x g.8 分钟将原始细胞悬浮液
6. 虽然被离心细胞悬液，台盼蓝细胞悬浮液 10 μ L 添加一个血球计数板和执行单元格计数。
7. 后离心，吸出媒体没有见面礼细胞团。1.25 x 10 ⁵ 细胞/毫升浓度时重悬细胞颗粒。
8. 10 厘米培养皿球体生长期间保持水分的环境的底部添加 5 毫升的无菌磷酸盐缓冲液 (PBS)。
9. 反转培养皿的盖子。添加几个 20 μ L 滴的培养皿盖的内部表面的细胞悬液。
10. 快速再次反转的盖子，并将它放回在底部的这道菜，小心不要取出挂滴。 图 1 说明了成功形成的挂滴。
11. 仔细将这道菜放在 37 ° C 的孵化器，并允许球体，成长在一个挂滴文化为期 72 h.

3。第 6 天: 嵌入球体三维矩阵

1. 执行以下操作在文化罩，以防止污染样品。
2. 第一纤维蛋白层，形成创建足够的音量要加入 100 μ L 的凝块解决方案每井多井作为一个血块解决方案要求 （每井 1 球体）。血栓被由 10 %10 X HEPES 缓冲卷 （250 毫米复、 1500 毫米氯化钠、 50 毫米 CaCl ₂、 pH 7.4）、 2 毫克/毫升纤维蛋白原和 0.1 U/mL 人 alpha 凝血酶。其余的凝块卷组成的超纯水。
   1. 添加凝血酶最后和迅速将解决方案添加到所需井在 48 孔板以防止凝块聚合之前被添加到井。
3. 轻轻地摇/tap 孔板确保纤维蛋白凝块混合物很好，涂层整个，然后将板放在孵化器 1 h 允许底层凝块聚合。不动摇孔板难诱使气泡的形成;只是岩石板作为必要直至涂井的整体。如果使用较大的凝块卷，则这一步可能不必要。
4. 将球转移到纤维蛋白层。
   1. 删除井板和培养皿中悬球体从孵化器除去文化并检查在显微镜下的球体。然后将盘子放入文化罩。
   2. 仔细倒置培养皿允许访问的盖子给挂掉文化。
   3. 使用附加到 1 毫升注射器，21 G 针小心转移一滴从倒盖成的每个井，中心照顾不来穿刺纤维蛋白聚合的层涂料的井底部。若要有效地传输下降，缓慢进针拉滴。别拉柱塞，尽快回来整个下落是内在的针;拉滴回来太远可能会引入空气气泡，可以破坏有效球体转让或随后成像。
   4. 检查以确保球体有妥善转移到所有所需的油井在显微镜下孔板。
5. 第二纤维蛋白层的形成，创建另一个血块解决方案使用同一如上为筹备成立的第一次的纤维蛋白层 （步骤 3.2）。仔细移液器 100 μ L 至每个球体包含的下降与再次确保球体仍然完好无损，并已经不被推到了井的边缘在显微镜下研究。
6. 返回到孵化器孔板和允许第二个图层为 1 h.聚合

4。第 6 天: 加法的 Pro 洄游或抑制因子

1. 温暖 HDFn 媒体到 37 ° C.
2. 执行以下步骤在罩，以防止污染。
3. 媒体准备包括适当浓度的 pro 反 migratory 代理要计算每个组。
4. 从孵化器和在文化罩的地方删除孔板。
5. 标准媒体每口井的控制球体组添加 500 μ L、 抑制介质对迁移抑制球体组，每个井 500 μ L 和 500 μ L 的 pro 洄游媒体每口井的迁移增强球体组。
6. 返回到孵化器的孔板。
7. 更改媒体每 48 h.

5。6-9 天: 评价细胞迁移和增殖

1. 图像球体明视场显微镜使用另外的媒体 (0 h)，然后每隔 24 小时后立即 72 h.可选: 在每个时间点，以确定是否采取 z 堆栈图像迁移发生在飞机外的主要重点领域。在我们的经验这不会发生;然而，它是确保这是每个实验的情况非常有用。
2. 使用 ImageJ 来确定在每口井的细胞产物通过跟踪每个球体每个连续时间点的单元格边框和使用分析每个球体的面积的百分比增加 " 措施 " 函数获取地区。

Results

可以利用球体文化成功计算临和反洄游的代理对体外成纤维细胞迁移的影响
可以通过 72 h (图 1) 一段挂滴文化形成 3D 成纤维细胞球体。经过文化时期，球体嵌入凝块矩阵和成像使用明视场显微镜 (图 2)。最初的区域的球体 （图中描述了作为地区北临白色边框） 决定使用 ImageJ，用作参考点以确定随后的细胞产物从球体机构的自由度。初始的平均面积测量的球体被确定为 4.3 x 10⁴ μ m² ± 1.1 x 10⁴ μ m²为控制球体，4.4 x 10⁴ μ m² ± 1.1 x 10⁴ μ m²的 pro 洄游扁球形和 4.5 x 10⁴ ± 7.7 x 10³ μ m²为...

Discussion

此协议允许细胞迁移在伤口愈合过程中检查关联 ECMs 通过体外的 3D 模型。过程的正确执行的关键一步是适当发展的成纤维细胞球体;制备过程中的细胞浓度进行了优化，给 2,500 细胞/除去、 初始浓度在 72 h 潜伏期可靠地允许球体到窗体。如果使用细胞数目不足，球体不可能有效地聚合，并且可能解体后被转移和嵌入到纤维蛋白层。如果使用不同的细胞类型，初始细胞浓度和 （或） 球体成熟时间可能必须加以调整，以获得一致的、 稳定的球体形成。慢慢地比成纤维细胞增殖的细胞类型，可能需要确保适当的球体形成 72 小时的时间内初始细胞浓度较高。细胞不应停留在挂滴文化长于 72 h 由于无力改变媒体对文化的球体。在初始的球体大小差异预计由于固有的生物学变异;我们解决这种可变性，球体形成入手细胞尽量减少大小差异尽可能多的一致数目以及恢复时间以供数据比较的增长。

此方法的实现面临的首要挑战是球体转移挂掉进血凝块矩阵的文化。本议定书使用针头和注射器抽吸球体包含液滴从倒置的培养皿盖子，但其他方法，如使用镊子或微附加到裁剪技巧，也可用于有效地转移从挂落到矩阵的球体。球体可以通过拉动注射器柱塞...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
材料
Dulbecco 改良 Eagle 培养基，4.5 g/L 葡萄糖，含丙酮酸钠，不含 L-谷氨酰胺	VWR	VWRL0148-0500	DMEM 已含有 L-谷氨酰胺，也可用于
100 毫米组织培养皿，未经处理、灭菌、无热原	VWR	10861-594	任何大小的培养皿都可用于吊滴培养
来自美国农业部批准的国家的胎牛血清，热灭活，无菌过滤，经过细胞培养测试	Sigma-Aldrich	12306C-500ML
L-谷氨酰胺 Fisher	Scientific	ICN1680149	如果使用已经含有L-谷氨酰胺的DMEM，则不需要
青霉素-链霉素溶液稳定，无菌过滤，含 10,000 单位青霉素和 10 毫克链霉素/mL	Sigma-Aldrich	P4333-100ML
人真皮成纤维细胞，新生儿	Thermo Fisher	C0045C	可替换为其他感兴趣的细胞类型
21 G x 1 1/2' 针	BD	305167	22 G x 1 1/2 针头也可以使用
1 mL 注射器	VWR	89174-491	任何体积的注射器
细胞培养多孔板、聚苯乙烯、Greiner Bio-One（独立包装）（48 孔）	VWR	82051-004
人纤维蛋白原 - 纤溶酶原、血管性血友病因子和纤连蛋白耗竭	酶 研究实验室	FIB 3	可以用感兴趣的基质蛋白代替
人 α 凝血酶	研究实验室	HT 1002a	可能不需要，具体取决于感兴趣的基质蛋白
设备
BSL2 细胞培养罩
细胞培养箱
带 10 倍物镜
与 15 mL 试管