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方法文章

线粒体 Ca2+ 保留能力检测与 Ca2+ 诱导的线粒体肿胀检测

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DOI:

10.3791/56236

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2018年5月1日

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本文内容

摘要

本方案旨在逐步描述一种检测SH-SY5Y细胞分离线粒体的Ca2+保留能力及Ca2+诱导线粒体肿胀的方法。

摘要

通过氧化磷酸化生成ATP是线粒体的主要功能。在高等真核生物中,线粒体还参与细胞质Ca2+的缓冲作用,且线粒体内游离Ca2+浓度可介导线粒体的ATP生成。Ca2+保留能力可被视为线粒体在基质中保留钙的能力。细胞内Ca2+的积累会导致线粒体内膜通透性增加,称为线粒体通透性转换孔(mPTP)的开放,从而引起分子量小于1.5 kDa的分子泄漏。由Ca2+触发的线粒体肿胀可用于指示mPTP的开放。本文描述了两种用于检测分离线粒体中Ca2+保留能力和Ca2+触发的线粒体肿胀的实验方法。在加入一定量的Ca2+后,所有步骤均可在一天内完成,并由酶标仪记录结果。因此,这两种简单而有效的检测方法可用于评估与Ca2+相关的线粒体功能。

引言

线粒体是哺乳动物细胞中主要的细胞器,通过氧化磷酸化产生细胞内近95%的ATP。据报道,线粒体可螯合微摩尔浓度的Ca2+,并在ADP和无机磷酸盐存在的情况下,将ADP磷酸化以合成ATP1。当胞质Ca2+浓度超过一定阈值时,线粒体可快速摄取Ca2+,并缓慢释放。因此,功能正常的线粒体能够吸收升高的胞质Ca2+。除了参与氧化磷酸化外,线粒体内的Ca2+还参与调控胞质钙信号,并通过诱导线粒体内膜上mPTP的开放来激活线粒体介导的凋亡机制2。目前普遍认为,细胞内Ca2+浓度异常升高可通过打开mPTP导致线粒体发生显著肿胀3。因此,本实验方案旨在通过定量测定线粒体Ca2+的保留能力以及Ca2+诱导的线粒体肿胀,来评估线粒体功能。

Ca2+滞留能力用于衡量线粒体摄取胞质钙离子的能力。线粒体可通过摄取钙离子形成无活性的沉淀物,从而缓冲胞质游离钙浓度,并调控钙依赖性细胞过程。在与能量受限相关的应激现象甚至神经退行性疾病中,均会出现Ca2+滞留能力受损4,

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方案

1. 线粒体的分离

注意:所有溶液和仪器应预冷至 0 - 4 °C,并置于冰上保存。

  1. 在10 cm细胞培养皿中接种约3 × 106个SH-SY5Y细胞。使用含10%胎牛血清、青霉素(100 U/mL)-链霉素(100 µg/mL)的高糖Dulbecco改良Eagle培养基进行培养。于含5% CO2的培养箱中37 °C过夜培养。
    注意:每次分离实验至少需要1 - 2 × 107个SH-SY5Y细胞。
  2. 吸去培养基,用约1 mL预冷的PBS在10 cm细胞培养皿中洗涤细胞3次。
  3. 向10 cm细胞培养皿中加入1 mL预冷的PBS,刮下贴壁细胞并转移至新的1.5 mL离心管中。在4 °C下以800 × g离心10分钟。
  4. 在离心过程中,配制5 mL线粒体分离缓冲液(250 mM蔗糖,10 mM HEPES(4-(2-羟乙基)-1-哌嗪乙磺酸),10 mM KCl,1.5 mM MgCl2,1 mM EDTA),并加入50 μL蛋白酶抑制剂储备液(100倍 浓度;1片无EDTA蛋白酶抑制剂片剂溶于500 µL ddH2O中)。
  5. 弃去上清液,用1 mL线粒体分离缓冲液重悬沉淀。将1.5 mL离心管置于冰上孵育30分钟。
  6. 在冰上使用玻璃匀浆....

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结果

Ca的代表性结果2+ 保留能力:
结果以荧光值表示。通过额外的 Ca 脉冲2+ (200 nmols/mg 线粒体蛋白),随着mPTP开放,荧光强度较基线水平增加了一倍。 5 μM 邦克列酸(BKA),一种Ca2+-诱导的mPTP开放,或 1 μM atractyloside(ATR),一种Ca的激活剂2+诱导的mPTP开放,在分离的线粒体中加入。所加入的总钙量2+ 直到mPTP开放,表现为荧光强度较基线水平升高两倍,被解读为Ca2+ 保留能力。我们的数据显示,线粒体 Ca2+ BKA治疗组的保留能力远高于ATR组。这些数据证实了线粒体Ca测量的适宜性2+ 保留能力(图3).

Ca

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讨论

本文介绍了一种简单且有效的线粒体Ca2+蓄积能力检测以及Ca2+诱导的线粒体肿胀检测方案。

进行线粒体分离时,确保所有材料和离心管均置于冰上,尤其是在细胞匀浆过程中。可使用0.25%胰蛋白酶-EDTA在37 °C下处理5分钟,以使细胞从培养皿上脱落。经过15至25次研磨后,必须在显微镜下观察细胞膜的完整性,并避免线粒体膜破裂。然而,我们所获得的线粒体为粗制线粒体,可通过1.0 M/1.5 M不连续蔗糖梯度离心进一步纯化获得纯化的线粒体。由于周围培养基成分浓度的影响,活细胞中线粒体的生物学特性比分离后的线粒体更接近体内(in vivo)状态。线粒体Ca2+保留能力或Ca2+诱导的线粒体肿胀实验均在供能条件下测定。为评估线粒体功能,可添加5 mM琥珀酸作为呼吸底物,替代谷氨酸和苹果酸6。

Ca2+-结合型绿色荧光染料(与Ca2+的结合亲.......

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披露

X. Sun 监督了实验。Wei Li 进行了实验。Chen Zhang 和 X. Sun 撰写了论文。

致谢

本研究由山东省杰出科学家计划项目(JQ201421)和国家自然科学基金(81371226)资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
SH-SY5Y 细胞系ATCC(全球生物资源中心)ATCC 编号:CRL-2266
钙绿-5NLife Technologiesc-3737Ca2+结合型绿色荧光染料
完全蛋白酶抑制剂Roche 分子生化公司4693116001
玻璃匀浆器Kimble Chase9885303002
谷氨酸Sigma-AldrichRES5063G-A7
苹果酸Sigma-Aldrich46940-U
鱼藤酮Sigma-AldrichR8875
HEPESSigma-AldrichH3375
MgCl2Sigma-Aldrich00457
K2HPO4Sigma-AldrichV900050
KClSigma-AldrichP9541
CaCl2Sigma-AldrichV900266
Varioskan Flash 仪器Thermo ScientificIC100E
棒曲霉素Biovision1820-100
乌头苷Sigma-AldrichC4992
高糖 Dulbecco’s 改良 Eagle 培养基HycloneSH30022含 4.5 g/L 葡萄糖、L-谷氨酰胺,不含丙酮酸钠
胎牛血清HycloneSV30087
青霉素Sigma-AldrichP3032
链霉素Invitrogen11860-038
BCA 检测试剂盒Thermo ScientificNCI3225CH
PBSHycloneSH30256.01
10 cm 细胞培养皿NEST704001

参考文献

  1. Rossi, C. S., Lehninger, A. L. Stoichiometry of respiratory stimulation, accumulation of Ca++ and phosphate, and oxidative phosphorylation in rat liver mitochondria. J Biol Chem. 239 (11), 3971-3980 (1964).
  2. Gunter, T. E., Buntinas, L., Sparagna, G., Eliseev, R., Gunter, K.

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重印与许可

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