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方法文章

从人脐血来源的CD34+细胞诱导巨核细胞分化及血小板生成

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DOI:

10.3791/56420

2017年12月27日

本文内容

摘要

可从脐带血来源的CD34+细胞中获得高纯度的巨核细胞群体。本文介绍了一种CD34+细胞分离及巨核细胞分化的实验方法。

摘要

血小板的生成主要发生在骨髓中,该过程称为血小板生成(thrombopoiesis)。在血小板生成过程中,造血祖细胞分化形成血小板前体细胞,即巨核细胞(megakaryocytes),后者进一步终末分化,通过称为前血小板(proplatelets)的长胞质突起释放血小板。巨核细胞是局限于骨髓中的稀有细胞,因此难以获取足够数量用于实验室研究。高效生成人巨核细胞可通过 体外 通过培养CD34+ 在适宜条件下培养细胞。本文详细描述了CD34的分离方案。+ 通过磁性细胞分选法从脐带血样本中分离细胞。本文描述了在无血清条件下生成高纯度、成熟巨核细胞所需的步骤,并提供了巨核细胞分化表型分析、前血小板形成及血小板生成检测的详细方法。可在培养细胞中添加影响巨核细胞分化和/或前血小板形成的效应分子,如抗血小板抗体或血小板生成素模拟物,以研究其生物学功能。

引言

由于原代人巨核细胞(MK)在骨髓中所占比例极低,仅占有核细胞的约0.01%,因此常规实验室使用所需数量的原代人巨核细胞难以大量分离获取1一种便捷的替代方法是 离体 在特定生长因子存在下扩增和分化造血干细胞和祖细胞。多种细胞因子,包括干细胞因子(SCF;c-kit配体)、白细胞介素(IL)-3和IL-11,已被用于培养系统以生成巨核细胞(MKs)。血小板生成素(TPO)是巨核细胞培养中最有效的生长和分化因子,可单独使用,也可与其他细胞因子(如SCF和IL-3)联合使用。2TPO 可作用于干细胞群体,促进巨核细胞的增殖与成熟2.

巨核细胞通过称为前血小板的胞质突起产生血小板,并 体内 约 1 x 1011 血小板每日生成,以维持血小板计数在 150 - 400 x 109/L. 血小板生成 体外 比……低达1000倍 体内 估计值3,并由此产生了大量使用CD34的培养条件+ 造血祖细胞以改善巨核细胞和血小板生成 体外. CD34的最初来源+ 用于巨核细胞分化的细胞为人外周血细胞4<....

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方案

本方案已获得南悉尼人类研究伦理委员会批准,并由新南威尔士大学人类研究伦理委员会确认。来自健康供体的脐带血由悉尼脐带血库(澳大利亚新南威尔士州悉尼)提供。本实验过程使用约 100 mL 体积的样本。

注意:在II级生物安全柜中使用无菌技术操作。用70%乙醇对脐带血袋外部进行去污染处理。本操作应使用无菌器械(剪刀、镊子)。

1. 脐带血细胞制备及CD34+细胞的分离

  1. 配制无菌分离缓冲液(SB),成分为磷酸盐缓冲液(PBS),pH 7.2,含0.5%牛血清白蛋白和2 mM EDTA。
  2. 将10 mL SB加入50 mL锥形管中(每10 mL血液需使用一根管)。使用安装在10 mL注射器上的G18钝头针从血袋中抽取10 mL血液,并注入含有10 mL SB的50 mL管中。
  3. 将15 mL淋巴细胞分离介质(见材料表)缓慢加入含稀释血液的管底,形成两层。
    注意:应缓慢将介质加至管底,避免不同液层混合。
  4. 在室温(RT)下以1,200 × g离心30分钟,不启用刹车和加速功能。
  5. 用巴斯德移液管将管中靠近中心、含有单个核细胞的液层(每管约5–10 mL)转移至新的50 mL管中。每管补加SB至总体积为50 mL。
  6. 在室温下以400 × g离心10分钟....

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结果

该方案可从脐血来源的CD34+细胞制备高纯度的巨核细胞(MK)培养物+ 细胞。CD34阳性细胞的百分比+ 脐带血中的细胞比例约为1.3%15 (图1A) 且单个核细胞总数(步骤 1.8)范围为 90 - 300 x 106 每 UCB 单位。分离后 CD34+/CD45+ 细胞的纯度范围为 90% 至 99%图1B)。MK(定义为CD41+ 细胞在无血清CD34培养早期即被观察到+ 在存在rhTPO的条件下进行细胞培养。第7天,成熟巨核细胞(CD41)的百分比+ 和 CD42a+ 细胞)通常为30%–40%(图1C)。CD41 的最高水平+ 和 CD42a+

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讨论

本方案适用于从脐带血体外稳定地培养生成巨核细胞和血小板。这些细胞可用于研究多种过程,例如药物或生物活性对巨核细胞增殖、分化、前血小板形成及血小板生成的影响。

文献中已报道了多种培养基和细胞因子组合。添加干细胞因子、Flt-3配体、IL-3和IL-6等细胞因子可促进CD34+细胞的增殖,但此类扩增会导致培养物中巨核细胞(MK)纯度降低14。本文所述方法仅使用无血清培养基和重组人血小板生成素(rhTPO),虽不能显著扩增祖细胞,但可实现单系巨核细胞的增殖与分化,并稳定生成高纯度巨核细胞(90 - 99%为CD41+CD42a+双阳性细胞),且无其他细胞谱系污染。巨核细胞形成的培养周期为10至12天,无需基质细胞或饲养层细胞支持。该周期明显短于其他需要更长培养时间(超过20天)的方法17,18。本方案的血小板产量为每个巨核细胞产生19 - 42个血小板,或每输.......

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

作者感谢澳大利亚健康与医学研究理事会的支持(项目资助号 1012409,与 BHC 相关)。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
细胞培养试剂
重组人TPOMiltenyi Biotec130-094-013
StemSpan SFEM IIStem Cell Technologies9605CD34+细胞的无血清培养基
名称公司目录编号备注
CD34分离试剂
CD34 MicroBead超纯试剂盒Miltenyi Biotec130-100-453该试剂盒包含FcR人IgG封闭试剂和CD34磁珠。这些磁珠含有抗CD34抗体克隆QBEND/10。纯度检测时应使用不同的抗CD34克隆(例如克隆8G12)。
LymphoprepAlere Technologies1114545淋巴细胞分离液(密度1.077 g/mL)
无菌分离缓冲液(SB)Miltenyi Biotec130-091-221该缓冲液包含磷酸盐缓冲盐水(PBS),pH 7.2,含0.5%牛血清白蛋白和2 mM EDTA。可使用无菌、细胞培养级组分自行配制。使用前需脱气,因为气泡可能堵塞柱子。
名称公司目录编号备注
流式细胞术与细胞染色试剂
PE小鼠抗人CD34BD Biosciences340669克隆8G12。可用于CD34纯度检测。最终抗体浓度为1:10稀释。
PerCP小鼠抗人CD45BD Biosciences3474641:10稀释
PerCP同型对照BD Biosciences3490441:10稀释
FITC小鼠抗人CD41aBD Biosciences340929最终抗体浓度为1:5稀释。
APC小鼠抗人CD42bBD Biosciences551061该抗体也可用于检测成熟巨核细胞(阳性细胞百分比通常低于抗CD42a)。最终抗体浓度为1:10稀释。
Alexa Fluor 647小鼠抗人CD42aAbD SerotecMCA1227A647T目前由Bio-Rad经销。最终抗体浓度为1:10稀释。
Alexa Fluor 647小鼠阴性对照AbD SerotecMCA928A647目前由Bio-Rad经销。同型对照抗体
抗血管性血友病因子兔多克隆抗体AbcamAB69941:200稀释
V450小鼠抗人CD41aBD Biosciences584251:20稀释
V450同型对照BD Biosciences5803731:20稀释
PAC1-FITC抗体BD Biosciences3405071:10稀释
抗CD62p小鼠单克隆抗体AbcamAB66321:200稀释
Alexa Fluor 488山羊抗兔IgGInvitrogenA110081:100稀释
Alexa Fluor 594山羊抗小鼠IgGInvitrogenA110201:100稀释
Ig同型对照混合物-CBD Biosciences558659同型对照抗体
碘化丙啶Sigma AldrichP4864
CountBright绝对计数微球Molecular Probes, InvitrogenC36950计数微球
名称公司目录编号备注
材料
LS柱Miltenyi Biotec130-042-401更小或更大的柱子也可商业购买
MidiMACS分选磁铁Miltenyi Biotec130-042-302
MACS MultiStand支架Miltenyi Biotec130-042-303
Falcon 5 mL圆底聚丙烯FACS管,带 snap cap,无菌In Vitro technologies352063
载玻片Menzel-GlaserJ3800AMNZ
含DAPI的封片剂Vector LaboratoriesH-1200含DAPI的抗荧光淬灭封片剂
名称公司目录编号备注
设备
倒置显微镜LeicaDMIRB倒置显微镜
荧光显微镜ZeissVert.A1
细胞分析仪BD BiosciencesFACS Canto II
细胞离心涂片机ThermoScientificCytospin 4
名称公司目录编号备注
软件
细胞分析仪软件BD BiosciencesFACS Diva软件
单细胞分析软件Tree StarFlowJo
荧光显微镜软件ZeissZen 2 blue edition

参考文献

  1. Nakeff, A., Maat, B. Separation of megakaryocytes from mouse bone marrow by velocity sedimentation. Blood. 43 (4), 591-595 (1974).
  2. Zeigler, F. C., et al. In vitro megakaryocytopoietic and thrombopoietic activity of c-m....

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重印与许可

标签

CD34