一种有效的体外转位方法由转录调节的睡眠美容系统封装到一个集成缺陷的慢向量

摘要

该协议描述了一种方法, 以实现稳定的基因的兴趣进入人类基因组由转录调控的睡美人系统。本文报道了有缺陷的慢载体的合成、人体细胞的体外转导和转细胞的分子检测。

摘要

睡美人(SB) 转是一种病毒的集成系统, 具有有效的基因转移和功能基因组学的功效。为优化 SB 转机械, 采用转录调节过动转 (SB100X) 和 T2-based 转。通常, 转和转通过质粒转染而瞬时提供, SB100X 表达由本构子驱动。在这里, 我们描述了一个有效的方法, 将 sb 组件传递给那些对几种物理和化学转染方法有抵抗力的人体细胞, 控制 SB100X 表达, 并通过 "剪切和粘贴", 稳定地整合一个感兴趣的基因 (印度)。机制.自1992年以来, 多动转的表达受到了系统的严格控制, 广泛用于控制基因表达。该基因的兴趣是两侧的反向重复 (IR) 的 T2 转。在 HEK293T 细胞中, 两个部件都被封装在集成缺陷的慢载体上。人类细胞, 无论是细胞系或人类组织的主要细胞, 都是在体外瞬时转与病毒载体。在添加强力霉素 (dox, 四环素模拟) 到培养基中, fine-tuning 的转表达的测量, 并导致长期的基因的兴趣在处理细胞基因组的结合。这种方法是有效的和适用于细胞线 (如, HeLa 细胞) 和原细胞 (如, 人原发角质形成), 从而代表了一个有价值的工具, 基因工程和治疗基因转移。

引言

多动 SB100X 转耦合到 T2-based 转已被用于临床前基因治疗应用^1,2,3, 基因组修改^4,5, 以及诱导多能干细胞 (iPSC) 重新编程^6,7。典型地, SB 组分由质粒转染瞬时地提供, 并且一个强的本构子推动转的表示。然而, 尽管改进了新的转染方法, 但两组分系统的交付仍然是许多应用的挑战。因此, 新的交付议定书的发展引起了越来越多的兴趣。除转染方法为质粒⁸和 mRNA⁹, 病毒传递的基础上腺病毒^10,11, 腺相关病毒 (AAV)¹², 病毒性¹³, gammaretroviral¹⁴和慢向量¹⁵已在过去提出。值得注意的是, 选择系统必须保证在不集成病毒载体的情况下暂时交付 SB 部件。然而, 由于转的不可控 rehopping 的风险, 转的本构表达引起了安全问题。

因此, SB100X 的转录调控是第一个挑战。通过将原发育的最小巨细胞病毒 (CMV) 启动子替换为单纯疱疹 Virus-1 (HSV-1)¹⁶的 Timidine 激酶 (TK) 基因的最小启动子 (-81), 在SB100X cDNA (pTetOTKSB100X)。突变的反转四环素-反 rtTA2^s-M2¹⁷是在强本构子 (甘油促进剂, PGK) 的控制下, 在不同质粒 (pCCL-PGKrtTA2^s-M2) 中克隆的。当添加到培养基中时, dox 绑定 rtTA2^s-M2 调制器和系的新的启动子复合体或, 从而导致严格调节的 SB100X 表达式的归纳¹⁸。

第二个主要的挑战是由几种物理和化学方法对人类原细胞的低效转染。为了有效地将转在人类细胞中抗转染, SB100X 和 rtTA2^s-M2 表达式磁带被打包成两个集成缺陷慢向量 (IDLVs)¹⁹: IDLVTKSB 和 IDLVrtTA2^sM2病毒载体瞬时产生作为第三代载体在 HEK293T 细胞²⁰和型的糖蛋白 g 的 Vescicular 口炎病毒 (VSV-g), 它提供了广泛的感染范围。矢量粒子由离心和滴定 HIV-1 塞 p24 免疫。对于传感器细胞系和原细胞, 载体颗粒与凝聚复合, 在 dox 存在或缺失时与靶细胞孵育。用定量 rt-pcr (qRT-pcr)¹⁸测定了转细胞中 SB100X 表达的药物依赖性活化。

一旦春节调控的 SB100X 表达被证明, 将印度 (如绿色荧光蛋白, GFP) 转到靶细胞基因组中的分子事件, 由 Bak 和泰尔杰·密盖尔森²¹清楚地化。在 T2-transposon 国税局 (IDLVT2) 之间复制的一个表达式卡带的第三 IDLV 载体必须在上面提到的构造和包装。最后, 三 IDLV 载体可用于有效地传感器人体细胞 (如, 原发角质形成细胞)在体外, 并在强力霉素¹⁸的存在中整合印度。

方案

1. 质粒受雇

注: 质粒 pCCL-PGKrtTA2^S-M2 提供了 Prof. Zappavigna (摩德纳大学和雷焦艾米利亚, 摩德纳, 意大利)。pCMVSB100X 质粒携带的多动转和 pT2/BH 转质粒的编码序列由 z 伊维西 (保罗, 兰, 德国) 和 Prof. z Izvak (最大汗分子医学中心, 柏林,德国)。

1. 对于大肠杆菌(大肠杆菌) 中的所有克隆, 请遵循选择和限制酶程序的克隆策略或克隆片段的 PCR 扩增.
   注:表 1总结了本协议中使用的所有质粒。提供了每个质粒的描述和参考。

2. 病毒载体生产

注意: 所有的病毒载体都是在生物安全防护罩的 BSL2 中产生的, 根据机构的规章制度。

1. Dulbecco 氏改良鹰培养基中的培养附着 HEK293T 细胞, 辅以 10% HyClone 血清、100 U/毫升青霉素-链霉素和2毫米谷氨酰胺。
2. 0天: 准备五15厘米的盘子/病毒制剂和种子5.5x10 在30毫升的培养基中⁶细胞。
3. 1天: 转染
   1. 在开始转染前, 准备100毫升的 2x HEPES 缓冲盐水 (HBS):
      氯化钠 (5 米) 5.6 毫升
      HEPES (1 米) 10.0 毫升
      Na₂HPO₄ (0.5 M) 0.3 mL
      无菌水84.1 毫升
      调整到 pH 值7.1 与 37% HCl。
      注: 2x HBS 可存储在4° c。准确的 pH 值对于高效转染非常重要。最佳 pH 值范围为7.10 到7.12。
   2. 在转染前取出培养基, 加入22.5 毫升/新培养基4小时。
   3. 染 HEK293T 细胞与转移质粒, pMD. Lg/pRRE D64VInt 包装质粒, pMD2. G 信封编码质粒, 和 pRSV-转速 (表 1) 根据以下数量/板块:
      转移质粒25.00 µg
      Lg/pRRE D64VInt 16.25 µg
      pMD2 8.75 µg
      pRSV-启示录6.25 µg
      注: 质粒 dna 是根据 Maniatis²²描述的中海协议编写的, 或使用无内毒素质粒纯化试剂盒。
      1. 重56.25 µg 的 DNA (混合4质粒) 在1.125 毫升的无菌水和添加125µL 2.5 M CaCl₂ (解决方案 A)。
      2. 增加1.250 毫升的 2x HBS 到一个无菌15毫升圆锥离心管 (解决方案 B)。
      3. 添加解决方案 a (1.250 毫升), 以 B (1.250 毫升) 滴, 而起泡与1或2毫升吸管 (转染解决方案, 总容量2.500 毫升)。
      4. 室温孵育20分钟 (RT)。
      5. 使用 P1000 微, 将所有的转染溶液 (2.500 毫升) 分布到细胞单层滴。
   4. 在37° c、5% CO₂的细胞培养箱中过夜。
4. 2天: 取出培养基, 加入15毫升的新鲜培养基 (见步骤 2.1)。
5. 3天: 收集并浓缩含有慢颗粒的上清液。
   1. 从所有 (n=5) 转染的细胞板中收集上清液 (70 毫升), 过滤通过0.45 µm-过滤器和填充 2 polyallomer 管 (1 英寸 x 3.5 英寸)/病毒制剂。
   2. 将矢量粒子离心在 10.6万 x g 为2.5 小时, 在15° c 与制动器。
   3. 在停止离心 (为了避免悬浮的颗粒在试管中), 轻轻地将上清液倒入含有10% 漂白剂的容器中, 并在100µL 1x PBS (+ 1% BSA) 中悬浮2勉强可见的小球。这是正常的, 因为颗粒是明确和非常小的。使用在-80 ° c 的新制备的浓缩载体, 或分和存储病毒制剂。
      警告: 上清液中含有慢的微粒, 在生物危害废物中丢弃之前必须彻底漂白。
6. 为了滴定病毒载体的准备, 根据制造商的协议, 使用 HIV-1 堵嘴 p24 免疫套件。
   注: 为规范病毒载体的生产, 可采用 liposomes-based 试剂。然而, 病毒载体的效价高度依赖于质粒 DNA 的转染效率和纯度。

3. 人类细胞系的转导 (如 HeLa 细胞)

注意: HeLa 细胞在 Dulbecco 氏改良的鹰培养基中进行培养, 并辅以10% 胎小牛血清、100 U/毫升青霉素-链霉素和2毫米谷氨酰胺。表 1总结了此协议中使用的所有向量。提供了每个向量的描述。HeLa 细胞的转导使转在两个 IDLV 载体的最佳剂量组合中对转录调控进行验证。IDLV 剂量的变化可能与载体颗粒滴定和靶细胞类型有关。

1. 0天: 种子 2x10⁵细胞在3毫升培养基中为6井板的每一个井。准备4口井。
2. 1天: HeLa 细胞的转导。
   1. 对于每个条件, 稀释慢向量到最后的体积1毫升培养基 (见上文注) 在10μ l 的凝聚 (最终浓度8微克/毫升):
      稀释为井 #1: 模拟转细胞 (阴性控制)。
      稀释为井 #2: IDLVTKSB 载体 (2600 ng p24)。
      稀释为井 #3, #4: IDLVTKSB 向量 (2600 ng p24) + IDLVrtTA2^s-M2 向量 (9600 ng p24)。
   2. 在0天将 HeLa 细胞镀在每一个井中, 并在相应的井中添加慢矢量稀释。
   3. Spinoculate 6 井板在 754 x g 为45分钟在20-25 ° c, 然后转移 6-井板到细胞培养孵化器在37° c 和 5% CO₂。
   4. 6小时后, 在所有井中用新鲜培养基取代培养基, 并在井 #4 中加入强力霉素至1μ m。将板材放入37° c 48 小时的细胞培养箱中。
3. 3天: RNA 提取用细胞颗粒的制备。
   1. 在分离细胞之前, 准备一个胰蛋白酶工作溶液 (1x):
      2.5% 胰蛋白酶 (10x) 5.0 毫升
      500毫米 EDTA (最终浓度 = 5 mm) 0.5 毫升
      1x PBS 44.5 毫升
   2. 热胰蛋白酶工作溶液在37° c 使用前。储存胰蛋白酶工作溶液在4° c。
   3. 用 1x PBS 去除培养基和洗涤细胞。添加0.5 毫升的 5ml 37 ° c 胰蛋白酶工作溶液, 并在37° c 孵育7分钟 (在细胞培养孵化器)。
   4. 在孵化后, 在每个井中加入0.5 毫升的含血清培养基, 使胰蛋白酶失效, 并在离心管中收集细胞。用3毫升 1x PBS 冲洗一次, 并将细胞悬浮液离心5分钟, 在 240 x g。
   5. 用5毫升 1x PBS 洗涤细胞, 离心5分钟, 在 240 x g 和丢弃上清液。使用新鲜收集的细胞小球或储存在-80 ° c。从小球中提取总 RNA, 进行半定量 rt-pcr (见步骤 6)。

4. 人原发性细胞的转导 (如角质形成)

注意: 人类原发性角质形成细胞被播种到致命辐照的 3T3-J2 电池 (饲养层)²³, 一种来自燕 Barrandon (洛桑, 洛桑, 瑞士) 的礼物。

1. 在 Dulbecco 的改良鹰培养基中种植瑞士老鼠 3T3 J2 细胞, 辅以10% 供体牛血清、50种 U/毫升青霉素-链霉素和4毫米谷氨酰胺 (3T3 培养基)。
2. 在 cFAD 培养基上致命辐照的 3T3 J2 细胞生长角质形成, Dulbecco 的改良鹰培养基和火腿的 F12 培养基混合物 (3:1) 含有胎儿牛血清 (10%), 青霉素-链霉素 (1%), 谷氨酰胺 (2%), 胰岛素 (5 µg/毫升), 腺嘌呤 (0.18 毫米), 氢化可的松 (0.4 µg/毫升), 霍乱毒素 (0.1 nm), 和甲状腺 (2 nm)。
3. 0天: 种子 3x10^-7⁵致命辐照的 3T3 J2 细胞, 以前稀释为3T3 培养基, 最终浓度为 1X10⁵细胞/毫升, 每井 6-井板。准备9口井。
4. 1天: 原发性角质形成细胞的转导
   注意: 角质形成细胞的转导允许定量的转录调节 SB 转的最佳剂量组合的两个 IDLV 载体 (通过 qRT PCR) 和验证的融合, 印度 (GFP) 的目标单元 (由 cytofluorimetric分析)。
   1. 分离细胞前, 准备胰蛋白酶工作溶液:
      0.5% 胰蛋白酶-EDTA (10x) 5.0 毫升
      500mM EDTA (最终浓度 = 5 mM) 0.5 毫升
      1x PBS 44.5 毫升
   2. 热胰蛋白酶工作溶液在37° c 使用前。储存胰蛋白酶工作溶液在4° c。
   3. 分离 subconfluent 角质形成细胞的培养, 去除培养基, 用 1x PBS 清洗电池, 并添加1毫升的5ml 胰蛋白酶工作液, 每一个井。孵育在37° c 为15分钟在细胞培养孵化器。
   4. 在孵化后, 重彻底的细胞, 并将细胞悬液转移到含有2毫升含血清培养基的离心管中 (如果仍有许多细胞附着, 则在37° c 下孵育一分钟)。用3毫升的 1x PBS 或新鲜培养基冲洗每一次井, 并在离心管上添加冲洗液, 使其与细胞悬浮液一起使用。
   5. 离心机5分钟, 在 580 x 克, 并丢弃上清。
   6. 用5毫升的 1x PBS 洗涤细胞, 离心5分钟, 在 580 x g 和丢弃上清液。
   7. 在15毫升聚丙烯管, 稀释 1.6x10⁵角质形成1毫升的 cFAD 培养基, 一个稀释为每个条件。
   8. 在1毫升的 cFAD 培养基中, 在20μ l 凝聚 (最终浓度为8µg/毫升, 在最后的2毫升) 中稀释慢载体:
      稀释为井 #1, #2, #3: 模拟转细胞 (阴性控制没有传染媒介)。
      稀释为井 #4, #5: IDLVTKSB 向量 (1.3万 ng p24) + IDLVrtTA2^s-M2 向量 (4.8万 ng p24)。
      稀释为井 #6, #7, #8, #9: IDLVTKSB 向量 (1.3万 ng p24) + IDLVrtTA2^s-M2 向量 (4.8万 ng p24) + IDLVT2 向量 (9160 ng p24)。
   9. 传感器细胞在悬浮通过增加每个慢向量稀释 (1 毫升) 到相应的角质形成悬浮 (1.6x10⁵角质形成1毫升)。
   10. 从致命照射的 3T3-J2 细胞中去除培养基, 在0天和平板转角质形成 (1.6x10⁵角质形成2毫升) 到他们身上。在换以后一个井继续与下一个。
   11. 孵育在25° c 为30分钟, 然后转移细胞到37° c 在细胞培养孵化器为 6 h。
       注意: 不要 spinoculate 原发性角质形成细胞, 因为存活和增殖会受到强烈的影响。
   12. 6小时后, 每井加1毫升的 cFAD 培养基。在水井 #5、#8 和 #9 中加入1μ m 强力霉素 (最终浓度)。返回细胞到37° c。
5. 2天: 用3毫升的 KC 培养基替换 cFAD 培养基, 10 ng/毫升 EGF。
6. 3天: 处理和洗涤细胞从井 #1, #4 和 #5 前面描述 (参见4.4.1 到 4.4.6)。在-80 ° c 下冷冻细胞颗粒提取总 RNA qRT-PCR 分析 (见步骤 7)。
7. 处理细胞从井 #2, #6 和 #8 的步骤 4.4.1 4.4.5 和执行 cytofluorimetric 分析 GFP 表达 (见步骤 5)。
8. 保持从水井 #3, #7 和 #9 至少 3-4 doublings 的文化, 足以稀释七零八落 IDLVT2 载体 (5 天的人原代角质形成在饲养层)。
9. 6天: 大约5天后转导, 处理细胞 (见步骤 4.4.1 4.4.5) 从水井 #3, #7, 并 #9 执行 cytofluorimetric 分析 GFP 表达 (见步骤 5)。
   注意: 实验时间和转导效率受原细胞类型和采集样本变异性的影响很大。

5. 转原代角质形成细胞的 Cytofluorimetric 分析

注: 使用蓝色激光 (488 nm)、红色激光 (633 nm) 和用于检测 GFP 和 APC 荧光的过滤器配置的流式细胞仪 (参见材料表)。

1. 要区分角质形成细胞从 3T3 J2 饲养层, 标签转角质形成细胞分离在3天和一天 6 (见步骤4.7 和 4.9) 与鼠标单克隆 APC 共轭抗馈线抗体。
   1. 为每个样品准备4毫升的染色缓冲液:
      5% FBS 200 μ l
      500毫米 EDTA (最终浓度 = 2.5 毫米) 20 μ l
      PBS 1x 3780 μ l
   2. 用1毫升的染色缓冲液冲洗分离细胞。离心机5分钟, 在 580 x 克, 并丢弃上清。
   3. 在流式细胞仪采集管中, 重 5x10⁴细胞在100μ l 的染色缓冲液中, 并添加2μ l 抗馈线抗体 (1:50)。在黑暗中混合好, 在冰上孵育30分钟。
   4. 30分钟后, 用2毫升的染色缓冲液冲洗。离心机5分钟, 在 580 x 克, 并丢弃上清。重在200μ l 的染色缓冲液中。
   5. 通过 cytofluorimetric 分析¹⁸获取 APC 和 GFP 信号。APC 单元格中的 GFP⁺单元格分数表示转角质形成细胞.
      注: 如果需要, 在流式细胞仪前固定染色样品, 2% 甲醛在 PBS 1x 和存储在4° c 在黑暗中, 直到运行。
2. 分析流式细胞仪数据通过绘制端点 (5 天) 的 gfp⁺单元格百分比和 gfp⁺单元格的百分比 (2 天后转导), 归入 IDLVT2-transduced 的剩余水平。细胞.

6. 半定量 rt-pcr

注: 使用 PCR 热循环。

1. 根据制造商的协议, 使用 rna 纯化试剂盒从转或控制细胞提取总 rna。
   注: 总 RNA 可以被存放在-80 ° c。
2. 根据制造商的协议, 用 100 ng 总 RNA 和逆转录酶试剂盒合成20µL 反应中的 cDNA。
   注: cDNA 可贮存于-20 ° c。
3. 设计底漆专门为 SB100X, rtTA2^s-M2 和 GAPDH (一个管家基因)。
   建议的设计:
   SB 前锋底漆: 5-GCCACTCAGCAAGGAAGAAG-3 "
   SB 反转底漆: 5-GTGTTGGAAGACCCATTTGC-3 "
   rtTAM2 前引物: 5"-GACGACAAGGAAACTCGCTC-3"
   rtTAM2 反向底漆: 5-TTACCCGGGAGCATGTCAA-3 "
   GAPDH 前引物: 5 "-GACCACAGTCCATGCCATCAC-3"
   GAPDH 反向引物: 5 "-CCACCACCCTGTTGCTGTAG-3"
4. 在50µL 的最终反应量中进行 PCR。特别是, 在每个 PCR 管集合以下反应:
   cDNA (1:5 稀释) (从步骤 6.2) 1.00 µL
   前引底漆 (10 µM 库存) 1.00 µL
   反向底漆 (10 µM 库存) 1.00 µL
   dNTPs (10 µM 库存) 1.00 µL
   缓冲区 (+ 氯化镁₂) (10x 库存) 5.00 µL
   Taq 聚合酶 (5 U/µL 库存) 0.25 µL
   无菌水40.75 µL
5. 使用热循环的以下节目: 1 周期在95° c 为5分钟然后继续与95° c 为三十年代, 58 ° c 为三十年代和72° c 为三十年代为34个周期为 SB100X, 32 周期为 rtTA2^s-M2, 25 周期为 GAPDH。
6. 准备1% 琼脂糖凝胶。将1克琼脂糖溶于100毫升的 1x (10x 库存稀释在无菌水中), 在烧杯或烧瓶中。融化在微波炉, 每分钟旋转, 直到琼脂糖完全溶解。冷却融化的琼脂糖, 直到它达到约50° c, 然后添加5µL 溴化溴 (10 毫克/毫升的股票)。倒入融化的琼脂糖在一个组装的凝胶托盘与梳子, 为凝胶铸造。
7. 在琼脂糖凝胶上装载样品 (10 µL), 并进行电泳。
8. 如果需要, 获取凝胶图片和执行密度分析的 PCR 带。

7. 定量 rt-pcr (qRT pcr)

注意: 采用了商业序列检测系统。PCR 引物和 6-羧基 (家族) 探针为甘油 3-磷酸脱氢酶 (GAPDH) 是购买商业。

1. 对于复古转录, 见步骤6.2。
2. 使用软件为 SB100X 设计底漆和探头。
   建议设计:
   SB 2 前引物: 5 "-GAAGAAGCCACTGCTCCAAAA-3",
   SB 2 反向底漆: 5 "-CCCCATGTGCAGTTGCAA-3"
   探索 SB: 5-CATAAGAAAGCCAGACTACGG-3 "
3. 在25µL 的最终反应量中, 用 pcr 主混合和引物 + 探针混合, 在96井板上进行实时 pcr。特别是, 考虑以下反应为每井:
   cDNA (1:10 稀释在无菌水中) 1.00 µL
   2x 主混合12.50 µL
   底漆 + 20x 探头混合1.25 µL
   无菌水10.25 µL
   注: 执行所有反应三份。为了防止移的错误, 准备一个混合至少 n+3 反应 (没有 cDNA)。分使用多通道吸管。
4. 使用以下程序运行 real-time PCR: 1 周期在95° c 为 10 min, 然后40个周期95° c 为十五年代和60° c 为 1 min 和举行在4° c。
5. 采用典型的数据分析软件, 通过 2^-ΔΔCT量化, 将 SB100X 的相对表达式 (RQ 值) 正常化到同一 cDNA 样品的 GAPDH 水平, 对 qRT PCR 数据进行分析。

结果

使用这里介绍的程序, 三 IDLV 载体运载被调控的 sb 组分 (SB100X, rtTA2^S-M2 和 T2-GFP 转) 被包装并且用于高效率地运载和严密地调控 sb 系统在人的细胞。图 1A显示了一个用于 HeLa 细胞的体外转导的方案, 它是用两个 IDLV 向量的最佳剂量组合 (在表 2中报告) 来评估 SB 转的转录调节。用 qRT PCR (图 1B) 测量了 SB100X 的转录调节, 并以相对数量 (RQ) 值作为态 (IDLVTKSB 单独 RQ=1) 的数值进行绘制。在转 HeLa 细胞, 获得8倍的活化 (+ dox) 的 SB100X 表达的背景 (IDLVTKSB)。值得注意的是, cotransduced HeLa 细胞在缺乏 dox 显示转表达可媲美的状态, 表明严格控制 TetTK 启动子 rtTA2^sM2 调制器。

...

讨论

在这里, 我们描述一个广泛的方法, 以稳定地整合到目标细胞的基因组通过睡美人介导的转位。尽管 SB 系统的开发是为了提供一种病毒的基因组编辑方法, 但有效地交付集成机械 (转和 T2 转) 是强制性的。因此, 使用 sb 系统在几乎不 transfectable 的主要细胞, 病毒交付 sb 组分在最近几年被追求^10,12,15。然而, 目前使用的病毒载体都没有涉及转的本构表达问题, 这可能导致转的不可控 rehopping 的风险。

为了转录调节转表达式, 我们利用了一个修改过的春节系统¹⁶。最小 TK 启动器融合到 TetO 元素, 在绑定到 rtTA2^sM2 调制器的存在 dox, 授予 fine-tuning 的转激活的背景 (态, 在没有 dox)。调控性能取决于适当的 IDLVs (IDLVTKSB...

材料

本文使用的材料清单

姓名	公司	目录编号	评论
杜尔贝科s 修改后的鹰's 培养基，含 4.5g/L 葡萄糖，不含 L-谷氨酰胺	Lonza	BE12-614F	细胞培养基。
HyClone 胎牛血清（美国），特征	GE Healthcare Life Sciences	SH30071.03	血清，用于HEK293T细胞培养物中生产慢病毒颗粒。
青霉素 10.000 UI/ml 链霉素 10.000 UI/ml	Lonza	DE17-602E	细胞培养基试剂。
用于细胞培养基	L-谷氨酰胺 200mM	Lonza	BE17-605E
用于 HBS 2X 制备	钠 （NaCl）	Sigma-Aldrich	S7653
HEPES 缓冲液，1M 生理盐水	Lonza	BE17-737E	用于 HBS 2X 制备。
磷酸氢二钠二水合物 （Na2HPO4·用于 HBS 2X 制备的 2H2O），99.5%	Merck	106580	试剂。
盐酸 - ACS 试剂 37% （HCl）	HBS 2X 制备	Sigma-Aldrich	320331
用于 HBS 2X 制备	无菌注射用水	Fresenius Kabi-Reagent
0.45 和微量;m PESS 过滤器	Whatman	10462100	用于去除病毒上清液中细胞碎片的过滤器。
Polyallomer Beckman 管	Beckman Coulter	326823	管，用于通过超速离心浓缩 IDLV 载体。
PBS-1X w/o Ca， Mg	Lonza	BE17-516F	用于细胞洗涤和慢病毒颗粒重悬的缓冲液。
牛血清白蛋白 （BSA）	Sigma-Aldrich	A2153	（可选）用于慢病毒颗粒重悬的缓冲液。
HIV-1 Gag p24 免疫捕获试剂盒	Perkin Elmer	NEK50001KT	试剂盒，用于 IDLV 颗粒滴定。
Polybrene	Sigma-Aldrich	107689	试剂，用于提高转导效率。
胰蛋白酶 （10X） 2.5% 的 HBSS 溶液，不含 Ca，Mg	GIBCO	BE17-160E	试剂，用于分离 HeLa 细胞（储备液，待稀释）。
乙二胺四乙酸二钠盐 （EDTA）	100938B	AnalaR BDH	试剂，用于胰蛋白酶工作液制备。
0.5% 胰蛋白酶-EDTA，无酚红 （10X）	GIBCO	15400-054	分离角质形成细胞的试剂（储备液，待稀释）。
供体牛血清，新西兰来源	GIBCO	16030-074	血清，用于瑞士小鼠 3T3-J2 细胞培养（饲养层）。
火腿's F12 培养基	GIBCO	21765	角质形成细胞培养基。
胎牛血清	Lonza	DE14-801F	用于 HeLa 细胞培养基的血清。
胎牛血清，合格，澳大利亚原产地	GIBCO	10099-141	血清，用于人原代角质形成细胞培养基。
来自牛胰腺的胰岛素	Sigma-Aldrich	I5500	试剂，用于角质形成细胞生长。
腺嘌呤	VWR	1152-25	质形成细胞生长试剂。
氢化可的松	VWR	3867-1	角质形成细胞生长试剂。
来自霍乱弧菌的霍乱毒素	Sigma-Aldrich	C8052	角质形成细胞生长的试剂。
三碘甲状腺原氨酸	Sigma-Aldrich	T5516	角质形成细胞生长的试剂。
人 EGF	Austral 生物	GF-010-9	角质形成细胞生长的试剂。
小鼠单克隆 APC 偶联的抗饲养层	Miltenyi Biotech	130-096-099	标记饲养层。
RNeasy Plus Mini Kit	Qiagen	74134	RNA 纯化试剂盒。
SuperScript III 逆转录酶	Life Technologies	18080051	逆转录酶试剂盒。
脱氧核苷酸混合物，用于半定量 PCR 的 10 mM （dNTP）	Sigma-Aldrich	D7295	试剂。
UltraPure 不含 DNase/RNase 的蒸馏水	（任何）		试剂，用于半定量 PCR 和 qRT-PCR。
GoTaq G2 热启动聚合酶	Promega	M740B	Taq 聚合酶。
琼脂糖，用于分子生物学	Sigma-Aldrich	A9539	琼脂糖凝胶电泳试剂。
UltraPure TBE 缓冲液，用于	Invitrogen	15581028	试剂，在 ddH2O 中稀释 （1X）。
溴化乙锭	Sigma-Aldrich	E1510	试剂，用于琼脂糖凝胶电泳。
多西环素	Sigma-Aldrich	D-9891	药物，用于诱导 HeLa 细胞和角质形成细胞中的转座酶表达
TaqMan 通用 PCR 预混液	Applied Biosystem	4304437	TaqMan 通用 PCR 预混液，包括引物和探针。
15 mL 高透明度聚丙烯离心管，锥形底，带圆顶密封螺帽，无菌	Falcon Corning	352096	管，用于细胞采集和载体稀释制备。
150 mm TC 处理的细胞培养皿，带 20 mm 网格，无菌	Falcon Corning	353025	用于病毒生产的细胞培养皿。
6 孔透明平底 TC 处理的多孔细胞培养板，带盖，独立包装，无菌	Falcon Corning	353046	用于 HeLa 和人原代角质形成细胞转导的细胞培养板。
Safe-Lock 微量离心管，体积 1.5	mLEppendorf	0030 120.086	用于稀释制备的离心管。
Safe-Lock 微量离心管，体积 2 mL	Eppendorf	0030 120.094	用于稀释制备的试管。
0.2ml PCR 管，带平盖、无 RNase、DNase、DNA 和 PCR 抑制剂	（任何）		管，用于半定量 PCR。
MicroAmp 快速光学 96 孔反应板（带条形码），0.1 mL	Applied Biosystem	4346906	96 孔，用于 qRT-PCR。
5 mL 圆底聚苯乙烯管，无盖	BD Falcon	352052	管，用于流式细胞分析采集。
一次性血清移液管，聚苯乙烯，独立包装，无菌（不同体积）（	任何）		移液器，用于无菌组织培养应用。
过滤吸头，无菌，不含 RNase、DNase、DNA 和热原（不同体积）（	任何）	-	用于无菌组织整理和分子生物学应用的过滤吸头。
pH 计	（任何）	-	用于测量 HBS 2X pH 的设备。
PCR 热循环仪	（任何）	-	半定量 PCR 设备。
琼脂糖凝胶电泳设备	（any）	-	半定量 PCR 琼脂糖凝胶电泳设备。
BD FACS Canto II 2LSR 4/2	BD	流	式细胞仪。
7900HT Fast 实时荧光定量 PCR 系统	Applied Biosystem	7900HT	qRT-PCR 设备。
台式离心机，用于细胞培养应用中的高效样品处理，制冷型，带微孔板吊篮。	（任何）	-	用于细胞培养处理和离心接种的离心机。
配备 SW32TI 转子的 Optima L-90K 超速离心	克曼库尔特	超	速离心机，用于慢病毒颗粒生产。
细胞培养和分子生物学实验室设备（例如，设计用于 BSL2 材料工作的 II 类层流罩）、细胞培养箱、冰箱和冰柜 （+4 °C， -20 °C， -80 °C）、微量移液器和移液器辅助）。
根据研究所规章制度的实验室防护服、手套、面部防护用品，特别是用于慢病毒颗粒的生产和转导。