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方法文章

Drosophila 蛹期卵巢的解剖与染色

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DOI:

10.3791/56779

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2018年3月2日

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本文内容

摘要

果蝇(Drosophila)卵巢是研究干细胞微环境发育的优良模型系统。尽管已有发表的幼虫和成体卵巢解剖方法,但蛹期卵巢的解剖需要不同的技术,且尚未有详细文献报道。本文中,我们概述了一种用于解剖、染色和封片蛹期卵巢的实验方案。

摘要

与成年个体不同 果蝇 卵巢,蛹期卵巢由于体积小、半透明且被包裹在蛹壳内,较难获取和观察。解剖蛹期卵巢的难点还在于其在蛹体内的物理位置:卵巢被蛹腹部内的脂肪体细胞包围,必须去除这些脂肪细胞才能进行有效的抗体染色。为克服这些困难,本方案采用定制的巴斯德吸管从蛹腹部去除脂肪体细胞。此外,在染色过程中使用带腔室的盖玻片替代微量离心管,以提高蛹体的可视性。然而,尽管本方案所用工具具有上述及其他优势,由于蛹期卵巢体积微小,成功掌握这些技术仍可能需要数天的练习。本方案所述技术可应用于时间进程实验,用于分析蛹期不同发育阶段的卵巢。

引言

自首次记录到干细胞微环境以来,利用Drosophila卵巢开展的干细胞研究已得到广泛拓展1,2,3,4。随着谱系示踪遗传工具的发展,Drosophila卵巢解剖已被广泛用于研究干细胞谱系以及调控干细胞维持、增殖和命运决定的信号通路。对这些信号通路的认识可能有助于揭示起源于异常干细胞活动的癌症的潜在病因5,6,7。最近的研究还表明,Drosophila卵巢中的体干细胞性干细胞(即滤泡干细胞,FSCs)在组织结构的多个方面与哺乳动物肠道干细胞高度相似8。因此,Drosophila卵巢是研究干细胞行为的一个极为有用的模型系统。

虽然幼虫期和成虫期的卵巢分别提供了关于早期干细胞发育以及干细胞在微环境中最终组织结构的线索,但蛹期卵巢是一种中间结构,在此期间生殖系细胞和体细胞发生重排并确立其细胞身份

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方案

1. 产卵

  1. 将约十只雄性和十五只雌性具有目标基因型的成年黑腹果蝇(Drosophila)放入装有添加酵母的普通富营养果蝇培养基的小瓶中。为避免小瓶内过于拥挤,应控制交配后的雌蝇产卵时间不超过2–4小时14。
  2. 通过轻敲小瓶口与另一个含果蝇培养基的小瓶对接,将成虫转移至新小瓶中。将卵在室温下培养3–4天,使其发育为幼虫。

2. 选择雌性幼虫

  1. 使用带有柔软毛刷的湿润细刷,沿小瓶壁做滚动动作,将游走期三龄幼虫从小瓶转移至装满1×磷酸盐缓冲液(PBS)的玻璃孔板中。通过将幼虫转移至另一装有1× PBS的孔板中,清洗幼虫表面的食物残渣。
  2. 使用镊子分离雌雄幼虫。雄性幼虫可通过其身体侧面约从前端起三分之二处脂肪体中嵌入的一对大而圆且半透明的睾丸进行识别15。雌性幼虫平均体型较大,透明度低于雄性,其生殖腺较小,较难观察。
  3. 剔除雄性幼虫以收集雌性幼虫。从孔板中至少收集十只雌性幼虫,并将其放入另一个装有1× PBS的独立孔板中。
  4. 使用镊子将雌性幼虫轻柔地转移至含有新鲜果蝇饲料并添加酵母的新小瓶中。
  5. 将装有雌性幼虫的小瓶置于黑暗处,以促进化蛹16。在白天持续观察幼虫的化蛹情况。每当....

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结果

成功执行本方案应获得清晰的抗体染色结果,以揭示黑腹果蝇(Drosophila)蛹期卵巢的结构及细胞组织特征。本方案所述的免疫组织化学方法可用于鉴定在幼虫和成虫卵巢中常见染色的细胞类型。图3展示了来源于游走细胞的蛹期卵巢 stalk 细胞(由白色轮廓标示的 Fasciclin III 标记)18。除了揭示蛹期卵巢的细胞组织结构外,针对细胞增殖的特异性抗体染色(如图3中显示的绿色磷组蛋白 H3 染色)还可用于研究干细胞及其他有丝分裂活跃细胞类型的细胞分裂模式。若在共聚焦显微镜下观察到荧光抗体信号较弱,可能是由于蛹腹部脂肪体去除不充分,导致卵巢未能充分接触抗体;另一种可能是在染色过程中蛹囊开口发生塌陷所致。

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讨论

本方案中最关键且最具挑战性的步骤是在固定前制备蛹期卵巢。为了确保位于蛹腹部内部、体积微小且被脂肪体细胞包裹的卵巢能够充分与抗体结合,不仅需要用镊子在腹部囊状结构上撕开一个较大的开口,还必须将遮挡卵巢的脂肪体细胞彻底清除,以避免其阻碍抗体的渗透。成功完成该步骤的关键在于,利用巴斯德吸管球冲洗腹部囊腔以去除脂肪体细胞时,需施加适度而精细的压力例如 每秒应有1–2个脂肪体细胞从腹部释放出来。若施力过轻,可能导致卵巢从腹部脱出并落入玻璃小孔中。由于卵巢本身体积小、呈半透明状,且难以用镊子夹取,因此在整个染色过程中必须始终保持在腹部组织囊内。因此,若在固定前的制备步骤中卵巢已从腹部脱出,则在后续实验流程中将极难对其进行回收、染色和封片操作。

脂肪体细胞主要由脂滴组成,是常见于昆虫(包括Drosophila melanogaster19,20)中的甘油三酯储存细胞器。由于固定时部分脂肪体细胞仍残留在蛹的腹部,本方案在前三个PBS清洗步骤中使用.......

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披露

作者声明无利益冲突。

致谢

本研究由美国国立卫生研究院(D.K. 获资助号 RO1 GM079351)资助。我们感谢 Dorothea Godt 根据其原始实验方案在蛹期卵巢解剖方面提供的有益建议。同时感谢 Amy Reilein 在稿件撰写过程中提供的帮助和意见。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
杜蒙特 #5 镊子,生物学用精细科学工具公司11252-20
Nunc Lab-Tek 带腔室盖玻片赛默飞世尔科技155383
解剖显微镜尼康SMZ-10A
共聚焦显微镜卡尔·蔡司LSM 700
分析软件卡尔·蔡司Zen
9孔凹玻片派热克斯7220-85
巴斯德移液管费舍尔科学公司13-678-6B
巴斯德移液管橡胶吸头多个供应商
本生灯多个供应商
Fisherfinest 优质磨砂载玻片赛默飞世尔科技12-544-2
22 × 22 mm 盖玻片,1号VWR48366-067
Dapi Fluoromount-GSouthernBiotech0100-20
双面胶带Scotch
旋转混匀仪(Nutator)Clay Adams
细毛刷 #0,#3-#5多个供应商
Gilson Pipetman 移液器入门套装Thomas ScientificF167300包含 p20、p200、p1000 移液器
16% 多聚甲醛电子显微技术科学公司15710用 1× PBS 稀释至 4% 多聚甲醛
吐温-20(Triton)Sigma-Aldrich9002-93-1
10× PBSAmbionAM9624稀释为 1× PBS
正常山羊血清Jackson ImmunoResearch5000121用含 0.5% Triton 的 PBST 稀释至 10% 正常山羊血清
一抗(实验方案中:7G10 抗 Fasciclin III 抗体,1:250 稀释;兔抗磷酸化组蛋白 H3 抗体,1:1000 稀释)多个供应商(实验方案中:发育研究杂交瘤库,Millipore)用含 0.5% Triton 的 PBST 稀释
二抗(实验方案中:Alexa-546 标记、FITC 标记的抗兔血清)多个供应商(实验方案中:Molecular Probes,Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc.)用含 0.5% Triton 的 PBST 稀释
果蝇培养管Denville ScientificV9406
棉球,适用于宽口培养管Genesee Scientific51-102W
酵母,干活性面包酵母MP Biomedicals101400
果蝇培养基实验室自制由水、啤酒酵母、玉米粉、糖蜜、琼脂、乙醇、青霉素、对羟基苯甲酸甲酯和丙酸混合而成
雄性和雌性 Drosophila 果蝇(实验方案中使用的基因型:yw; P[Fz3-RFP, w+]/TM2)布卢明顿果蝇品系中心

参考文献

  1. Losick, V., Morris, L., Fox, D., Spradling, A. Drosophila Stem Cell Niches: A Decade of Discovery Suggests a United View of Stem Cell Regulation. Dev Cell. 21 (1), 159-171 (2011).
  2. Kirilly, D., Xie, T. The Drosophila ovary: an active stem cell community. Cell Res. 17 (1), 15-25 (2007).
  3. Dansereau, D. A., Lasko, P.

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