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方法文章

从黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)幼虫中提取血细胞用于微生物感染与分析

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DOI:

10.3791/57077

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2018年5月24日

本文内容

摘要

本方法展示了如何利用三维(3D)模型可视化病原体侵入昆虫细胞的过程。从黑腹果蝇(Drosophila)幼虫中分离的血细胞被病毒或细菌病原体感染,感染方式包括离体(ex vivo)或活体(in vivo)感染。感染后的血细胞经固定和染色处理,用于共聚焦显微镜成像,并进行后续的三维细胞重建。

摘要

病原体感染过程中 黑腹果蝇, 血细胞在感染过程中对免疫应答起着重要作用。因此,本实验方案的目标是建立一种方法,用于可视化病原体在果蝇特定免疫区室(即血细胞)中的侵染过程。利用本方法,最多可获得 3 × 106 活体血细胞可从200 黑腹果蝇 3rd 30分钟内处理3龄幼虫 离体 感染。或者,可感染血细胞 体内 通过注射3rd 三龄幼虫,随后在感染后24小时内提取血细胞。这些被感染的原代细胞经固定、染色后,利用共聚焦显微镜进行成像。随后,基于图像生成三维图像,以明确展示病原体的侵入过程。此外,可从感染后的细胞中获得高质量RNA,用于qRT-PCR检测病原体mRNA;同时亦可提取足量蛋白质,用于Western blot分析。综上所述,本文提出了一种利用细菌与病毒病原体类型,明确验证病原体侵入及感染状态的方法,并提供了一种高效的血细胞提取方法,以获得足够数量的活体血细胞 果蝇 幼虫用于 离体 和 体内 感染实验

引言

Drosophila melanogaster 是研究先天免疫的成熟模式生物1。在先天免疫反应过程中,血细胞在应对病原体侵染中发挥重要作用。血细胞对于包裹寄生虫至关重要,同时在真菌、病毒和 细菌感染期间,还通过吞噬作用参与抗御病原体2,3。

为了充分理解宿主对病原微生物感染的固有免疫应答,观察病原体在感染过程中如何侵入宿主细胞至关重要。这种可视化有助于阐明病原体的入侵机制。结合病原体在细胞内的定位信息以及宿主细胞的应答细节,这些数据可为宿主对感染的反应及病原体所相互作用的细胞器提供线索。因此,显微成像后的三维模型重建有助于确定病原体在宿主细胞中的精确定位。在本研究中,我们观察了病原体的侵入过程 贝氏柯克斯体(C. burnetii), 引起Q热的病原体,Q热是一种对人类和动物健康均构成严重威胁的人畜共患病,进入原代 果蝇 血细胞。最近有研究证明 果蝇 易感于生物安全二级的Nine Mile II相克隆4株(NMII) C. burnetii 并且该菌株能够在 果蝇4,表明 黑腹果蝇 可作为研究的模式生物 C. burneti....

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方案

1. 离体 感染

  1. 培养基与设备
    1. 在无菌条件下,制备新鲜的 果蝇 含75% Schneider's的血细胞分离培养基(DHIM) 果蝇 含25%胎牛血清(FBS)的培养基并过滤除菌。
    2. 在体视显微镜下放置2至3层10 cm × 10 cm的石蜡膜。
    3. 准备玻璃毛细管。将毛细管拉制仪的加热器设置为最大功率的55%。将毛细管拉制成尖端约 10 µm.
    4. 用矿物油回填毛细管。
    5. 将装满液体的毛细管安装到纳米注射仪上(图1A),并用镊子折断毛细管末端以打开熔融的毛细管尖端(图1B)。提示的外径应为 100 µm 便于血细胞的摄取。
    6. 尽可能将毛细管尖端的油全部排出,然后用 DHIM 填充。为了便于观察吸收的血淋巴与油之间的界面,可在油与 DHIM 之间留一个气泡。图1B').
  2. 血淋巴提取
    1. 选取3个rd 龄期 果蝇 用镊子轻轻从培养瓶内壁取下幼虫,并将其放入....

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结果

收集活体血细胞以 离体 感染,高达 3×106 血细胞从200个中提取 果蝇 3rd 龄幼虫。为建立本方法,尝试了多种不同技术。单个幼虫解剖耗时可达1.5 h,采用该方法平均可获得约8000个细胞18,其中大多数在采集结束时已死亡。接下来,我们尝试使用玻璃毛细管每次从20只幼虫中提取含有血细胞的血淋巴19,但毛细管被角质层物质堵塞,导致血淋巴无法被玻璃毛细管有效吸取。最后,我们使用精细镊子对每批20-50条幼虫的角质层进行机械破坏12,并形成血淋巴池以便于吸取。这使得从大量幼虫中轻松收集大量血细胞成为可能(表1).

为了证明所提取的血细胞具有活性并适用于感染实验,采用台盼蓝排斥法检测了使用本方法提取.......

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讨论

为了更好地理解宿主细胞如何被感染,明确病原体在细胞内的定位至关重要,尤其是在研究此前未经测试的病原体与细胞类型组合时4。虽然研究感染后细胞反应级联可提示病原体是否成功侵入,但结合成像数据与细胞反应数据对于证实病原体的侵入和感染仍必不可少。尽管已有研究报告通过展示病原体侵入宿主细胞的二维图像来表明成功感染,但关于病原体最初侵入宿主细胞的时间点仍可能存在疑问。因此,通过二维图像的z轴层扫数据重建的三维模型可解答这些问题,并明确病原体在宿主细胞内的位置(图4和图5)。然而,使用原代血细胞的一个局限性在于其在细胞培养中的存活时间。先前有报道称,血细胞在培养基中的存活时间仅为8小时18,而在我们的感染实验方案中,最多只能进行至24小时,无法更久。因此,无法观察到高水平的C. burnetii复制或寄生性液泡的形成,因为后者在感染后2天才开始形成,且直到感染后4–6天才明显增大30。

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披露

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

致谢

我们感谢 Robert Heinzen 博士提供了表达 mCherry 的Coxiella burnetii菌株。感谢 Luis Teixeira 博士提供了无脊椎动物虹彩病毒 6,感谢布卢明顿菌种中心提供了果蝇品系。本项目部分由美国国立卫生研究院资助项目 R00 AI106963(资助 A.G.G.)和华盛顿州立大学资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
Schneider's Drosophila 培养基 Thermo Fisher Scientific (Gibco)217200241.1.1), 2.1.2)
胎牛血清GE Healthcare Life Sciences  (HyClone)SH30070.03HI1.1.1), 2.1.2)
滤器(0.22 µL)RESTEK261581.1.1)
细胞筛(100 µm)Greiner bio-one5420001.2.1), 2)
体视显微镜AmscopeSM-1BSZ-L6W1.2), 2)
玻璃毛细管Fisher Scientific21-171-41.1), 1.2), 2)
毛细管拉制仪Narishige International USA, Inc.PC-101.1.3)
矿物油Snow River Products1.1.4)
纳升注射仪Drummond Scientific Company3-000-2041.1), 1.2), 2.2)
镊子VWR82027-4021.1.5), 1.2), 2), 3.1.7)
CO2 递送装置Genesee Scientific59-122BC1.2), 2)
台盼蓝Thermo Fisher Scientific (Gibco)152500611.3)
血细胞计数板Hausser Scientific31001.3)
24孔板Greiner bio-one6621601.4), 2.2)
Coxiella burnetii - mCherryDr. Heinzen, R.1.4), 2.2)
Drosophila 果汁培养基平板Cold Spring Harbor Protocols2.1) http://cshprotocols.cshlp.org/content/2007/9/pdb.rec11113.full
琼脂Fisher BioreagentsBP1423-5002.1.1.1)
对羟基苯甲酸甲酯Amresco0572-500G2.1.1.2)
无水乙醇Fisher BioreagentsBP2818-5002.1.1.2)
Welch's 100% 葡萄汁冷冻浓缩液,340 mLAmazonB0025UJVGM2.1.1.3)
培养皿,10 × 35 mmFisher Scientific08-757-100A2.1.1.4)
显微镜盖玻片Fisher Scientific12-545-801.4.4), 2.2.2)
酵母,干活性面包酵母MP Biomedicals02101400012.1) 按体积比将2份水加入1份酵母中(v/v)
钨针Fine Science Tools10130-202.1)
持针镊VWRHS83132.1)
多聚甲醛Fisher ScientificFLO4042-5003.1.3)
吐温X-100Fisher ScientificBP151-5003.1.3)
牛血清白蛋白Fisher ScientificBP9706-1003.1.3)
4',6-二脒基-2-苯基吲哚Thermo Fisher Scientific622473.1.4)
抗荧光淬灭封片剂Thermo Fisher ScientificP369303.1.6)
共聚焦显微镜LeicaTCS SP8-X 白光共聚焦激光扫描显微镜3.2)
三维成像重建软件LeicaLASX 配备三维可视化模块3.3)
显微镜载玻片Fisher Scientific12-552-33.1.6)
无脊椎动物虹彩病毒6型(IIV6)Dr. Teixeria, L.4) PLoS Biol, 6 (12), 2753-2763, doi: 10.1371/journal.pbio.1000002, (2008)
Listeria monocytogenesATCC菌株:10403S4) 单核细胞增生李斯特菌菌株10403S(Bishop 和 Hinrichs,1987)在含有50 µg/ml 链霉素的Difco脑心浸液(BHI)肉汤(BD Biosciences)中,于30 °C 培养。
DNase IThermo Fisher Scientific(Invitrogen)18068015基因组DNA降解
cDNA合成试剂盒Bio-Rad1708891cDNA合成
IIV6_193R_FIDTqRT-PCR, 5'- TCT TGT TTT CAG AAC CCC ATT -3'
IIV6_193R_RIDTqRT-PCR, 5'- CAC GAA GAA TGA CCA CAA GG -3'
RpII_qRTPCR_fwdSIGMA-ALDRICHqRT-PCR, 5'- GAA GCG TTT CTC CAA ACG -AG
RpII_qRTPCR_revSIGMA-ALDRICHqRT-PCR, 5'- TTG AGC GTA AGC ATC ACC -TG
SYBR Green qRT-PCR 试剂Thermo Fisher ScientificK0251, K0252, K0253qRT-PCR
实时荧光定量PCR系统Thermo Fisher Scientific4351107, 7500 Software v2.0qRT-PCR
抗单核细胞增生李斯特菌抗体abcamab35132Western blot
兔源抗肌动蛋白抗体SIGMA-ALDRICHA2066Western blot
抗兔IgG(H+L),HRP标记PromegaW4011Western blot

参考文献

  1. Hoffmann, J. A. The immune response of Drosophila. Nature. 426 (6962), 33-38 (2003).
  2. Regan, J. C., et al. Steroid hormone signaling is essential to regulate innate immune cells and fight bacterial infection in Drosophila. PLoS Pathog. 9 (....

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