本方案概述了从大型动物淋巴结组织中分离RNA以进行转录组分析的操作流程,包括家畜和野生动物淋巴结的识别与切除步骤、在多个动物间保持一致性的取样方法,以及采集后RNA分析所需的保存与处理注意事项和代表性结果。
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本方案概述了从大型动物淋巴结组织中分离RNA以进行转录组分析的操作流程,包括家畜和野生动物淋巴结的识别与切除步骤、在多个动物间保持一致性的取样方法,以及采集后RNA分析所需的保存与处理注意事项和代表性结果。
大型动物(包括家畜和野生动物)是人畜共患病原体的重要储存宿主,包括 布鲁氏菌, Mycobacterium bovis, 沙门氏菌,以及 E. coli,并且可用于研究细菌在自然宿主中的致病机制和/或传播过程。鉴于淋巴结在宿主免疫反应中的关键作用,淋巴结组织可作为下游转录组分析的潜在RNA来源,以评估感染过程中细胞基因表达的时间动态变化。本文概述了家畜淋巴结采集、组织取样及后续RNA处理的流程,以牛(*Bos taurus*)为例进行说明。关键词:淋巴结采集,组织取样,RNA提取,转录组分析,感染模型,家畜,牛Bos taurus) 作为模型,并以美洲野牛(Bison bison)。该方案包含了有关从动物体内多个关键部位进行淋巴结定位、识别和摘除的信息。此外,还介绍了一种活检取样方法,可实现跨多个动物个体的一致性取样。文中讨论了多种样本保存的注意事项,包括制备适用于下游技术(如RNA测序和RT-PCR)的RNA。由于大型动物研究中固有的长时间延迟问题 与 小鼠时间序列研究,本文展示了来自野牛和牛淋巴结组织的代表性结果,用以描述此类组织中RNA降解的时间进程,并结合以往关于其他组织中RNA降解方法学研究的综述进行阐述。总体而言,本方案对于启动大型动物样本转录组研究的兽医研究人员,以及希望学习相关技术的分子生物学家均具有实用价值。 体内 组织取样和 体外 处理。
对淋巴结转录组进行RNA测序分析,可为研究动物对多种病原体的免疫应答提供机会。尽管该方法已在小鼠中得到广泛应用,但近年来相关研究正逐步扩展至大型哺乳动物1,2。家畜或大型动物的淋巴结可用于表征宿主对感染的应答,不仅可用于疫苗研发、遗传易感性研究以及药物开发靶点的鉴定,还可作为研究人畜共患病的人类疾病模型系统。例如,对于布鲁氏菌病(一种每年影响全球约五十万人的人畜共患细菌性疾病),尽管研究成本显著增加,但在绵羊或山羊中开展的研究相较于实验室动物模型,更贴近人类感染情况和人类疫苗的研发。小鼠感染模型虽能模拟网状内皮系统的感染过程,但无法再现其特征性临床症状3。
与实验室动物研究相比,在大型动物实验中,组织采样过程必然存在安乐死后与组织采集之间更长的延迟,这给高质量RNA的保存带来了潜在挑战。完整的RNA对于生成具有生物学意义的转录组数据至关重要。在生物安全 containment 设施中开展的大型动物病原体研究中,从组织样本中获取高质量RNA尤为关键。此类研究本身实施难度较大,不仅需要经过批准的设施和高度训练的专业人员,还涉及显著的经济成本,根据具体工作的不同,费用可能从数万到数十万美元不等。这类研究通常还需要跨学科协作与跨学科知识的整合,进一步增加了其复杂性。因此,对样本采集与保存流程进行系统....
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本文所示的动物尸检程序均在中国爱荷华州艾姆斯国家动物疾病中心经批准的IACUC方案涵盖范围内进行。所有实验均依照批准的动物护理与福利指南开展。
1. 尸检前的准备工作
2. 牛和野牛淋巴结的鉴定与采样
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本文所述注意事项(方案中的步骤 1 - 4)将有助于从大型动物样本中提取适用于宿主基因表达研究下游分析的 RNA。通过多种标准方法评估 RNA 在下游应用中的质量。在分光光度法检测中,A260/A280 比值可反映蛋白质污染程度,而 A260/A230 比值则可用于评估纯度,以检测苯酚等化学污染物。通常,比值约为 2.0 表明 RNA 质量较高,比值降低则提示存在污染。重要的是,这些比值无法提供有关 RNA 降解的信息,RNA 降解情况可通过定性方法(步骤 4.15 - 4.17)和定量方法(步骤 4.18,例如通过 RNA 完整性数值或 RIN 评分)进行评估。
需要注意的是,从淋巴结组织切片中回收的RNA质量水平通常低于从牛外周血白细胞样本中回收的RNA。在Fleige和Pfaffl开展的一系列针对牛组织和细胞系的RNA提取研究中30 发现平均RIN(在Bioanalyzer上测得的RNA完整性数值)在不同样本间存在差异 < 5 用于空肠.......
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大多数转录组学研究及相关实验方案主要关注小鼠、大鼠或死后人类样本。然而,对家畜和野生动物的研究为表征免疫系统对疾病的应答提供了广泛的机会,这些研究不仅适用于兽医学,也与人畜共患疾病的公共卫生密切相关。本实验方案概述了从牛、野牛、山羊和绵羊等大型动物组织中提取高完整性RNA的关键注意事项。由于动物体型较大,且样本采集条件复杂,使得组织获取过程更为耗时,其死后处理时间也比小鼠淋巴结的获取更长。同样,这些淋巴结体积较大,因此需要采用能够从不同动物中平行获取样本、并能代表淋巴结内免疫学/病理学变化的实验方案。本方案中关于样本采集的建议,有助于获得完整的RNA,同时通过淋巴结分段取样,确保获得具有代表性的分子谱型。
为了说明此处所介绍的标准化取样策略和方案的重要性,我们从 PubMed Central 数据库中检索了 25 篇表征家畜淋巴结转录组的研究论文。其中一篇论文提到一次性处理大块淋巴结组织,一篇讨论了特定的激光捕获显微切割方法,一篇提到从淋巴结中采集了“"代表性样本"”,仅有一篇论文46 明确指出所采集的淋巴结.......
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作者无任何利益冲突需要披露。所有研究均由美国农业部农业研究局内部资金资助。提及特定产品仅出于实验可重复性的目的,不代表联邦政府对这些产品有任何 endorsement。
作者谨此感谢 James Fosse 在所有视频拍摄和视频处理方面所做的出色工作;感谢 Michael Marti 在生成数字化牛图像方面的出色贡献;感谢 Lilia Walther 在 RNA 提取和 Bioanalyzer 检测中的帮助;感谢 Mitch Palmer 和 Carly Kanipe 对淋巴结图像提供的有益审阅和反馈;同时感谢国家动物疾病中心的动物护理和兽医团队在动物饲养以及剖检准备工作中的辛勤付出与协助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| RNA保存液(本实验均使用RNALater) | ThermoFisher | AM7020 | |
| 1.5 ml或2 ml聚丙烯微量离心管 | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
| 一次性手术刀 | Daigger Scientific | EF7281 | |
| 组织镊,鼠齿型 | Fisher Scientific | 12-460-117 | 也可选用其他类型的组织镊,如弯头、锥形边缘等,视用户偏好而定 |
| 3 mm穿刺活检针 | Fisher Scientific | NC9949469 | |
| 锐器盒(小型且便于携带,用于解剖) | Stericycle | 8900SA | 图示为1夸脱规格 |
| 切片板或一次性托盘 | Fisher Scientific | 09-002-24A | 有多种尺寸可选,视用户偏好而定 |
| 个人防护装备 | 根据病原体不同而异(手套、呼吸器面罩、护目镜等) | ||
| 酚类RNA提取试剂(本实验均使用TRIzol试剂) | ThermoFisher | 15596026 | |
| 基于二氧化硅柱的RNA提取试剂盒(本实验均使用PureLink RNA Mini试剂盒) | ThermoFisher | 12183018A | 适用于最多100 mg组织 |
| 100%乙醇(分子生物学级,200 proof) | Sigma-Aldrich | E7023 | |
| 配备封闭式匀浆管的组织匀浆仪(本实验均使用gentleMACS解离仪) | Miltenyi Biotec | 130-093-235 | |
| 琼脂糖(通用型,用于凝胶电泳) | Sigma-Aldrich | A9539 | |
| 1X TBE | Fisher Scientific | BP24301 | 也可在实验室自行配制 |
| 去离子甲酰胺 | EMD Millipore | S4117 | |
| 十二烷基硫酸钠 | Sigma-Aldrich | L3771 | |
| 溴酚蓝 | Sigma-Aldrich | 114391 | |
| 二甲苯青 | Sigma-Aldrich | X4126 | |
| EDTA(乙二胺四乙酸) | Sigma-Aldrich | EDS | |
| 紫外-可见分光光度计(本实验使用NanoDrop分光光度计) | ThermoFisher | ND-2000 | |
| 用于RNA定量分析的设备(本实验使用Bioanalyzer及其配套组件和方案) | Agilent | G2939BA | |
| FFPE组织RNA提取试剂盒(本实验使用RecoverAll总核酸分离试剂盒,适用于甲醛固定、石蜡包埋组织) | ThermoFisher | AM1975 | |
| 塑料涂布棒(L形涂布棒) | Fisher Scientific | 14-665-231 | 仅用于感染动物样本的无菌检测 |
| 解剖刀 | Livestock Concepts | WI-0009209 |
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