本文介绍了一种利用宽场高内涵分析系统(WHCAS)对载玻片上荧光标记组织进行自动分割的实验方案。该方案在涉及生物组织中荧光标记物定量的各个领域均具有广泛应用,包括生命科学、医学工程和健康科学。
方法文章
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本文介绍了一种利用宽场高内涵分析系统(WHCAS)对载玻片上荧光标记组织进行自动分割的实验方案。该方案在涉及生物组织中荧光标记物定量的各个领域均具有广泛应用,包括生命科学、医学工程和健康科学。
自动化的载玻片扫描及荧光标记组织的分割是分析整张载玻片或大组织切片最高效的方法。然而,许多研究人员花费大量时间和资源开发并优化仅适用于自身实验的工作流程。本文介绍了一种适用于拥有宽场高内涵分析系统(WHCAS)的研究人员的实验方案,可用于成像任何置于载玻片上的组织,并可通过配套软件中预设模块进行个性化定制。尽管该系统最初并非为载玻片扫描设计,但本文详述的步骤使得在 WHCAS 中获取可用于导入配套软件的载玻片扫描图像成为可能。本文以脑肿瘤载玻片的自动分割为例进行演示,但任何荧光标记的细胞核或细胞质标志物均可实现自动分割。此外,还可运行多种其他定量分析软件模块,包括蛋白质定位/转位、细胞增殖/活力/凋亡以及血管生成等检测。该技术将节省研究人员的时间与精力,并建立一套用于载玻片分析的自动化流程。
在载玻片上对荧光标记的组织进行准确且精确的定量分析,是许多科学领域中备受关注的技术。然而,研究人员通常需要手动计数样本,或花费大量时间开发复杂的自动化方法来实现这一目标。本文提供了一种利用WHCAS及其配套软件对载玻片上的细胞进行自动扫描和定量分析的实验方案,以冷冻人脑肿瘤切片中的固有免疫细胞为例进行说明。该配套软件提供了多种内置且可自定义的模块,涵盖从神经突生长计数到细胞类型区分等多种功能1,2,3,4,5,6。本方法的目标是为研究人员提供一套从头到尾完整、易于重复的实验流程,用于获取任意载玻片组织中荧光标记目标的图像并进行定量分析。
在本实验方案中,尽管已有载玻片适配器及扫描载玻片的基本配置7,WHCAS 主要仍用于成像培养板,以便后续在配套软件中进行分析。对载玻片进行成像存在诸多限制,因其需要精确校准采集区域的空间位置、选择合适的期刊参数、创建定制化的扫描设置,并与产品代表进行协调。在更广泛的文献中,为避免购置专用的载玻片成像与分析设备8,先前一项技术报告中使用该软件的研究完全绕过了在 WHCAS 上进行载玻片图像采集的步骤9。在不同平台上进行图像采集或图像分析时,需额外工作以确保各平台之间的兼容性。
利用 WHCAS 及其软件进行图像采集的能力,可避免寻找或开发与这些工具不兼容的工作流程所带来的不必要复杂性。本文介绍了将载玻片视为培养板,创建低倍率概览扫描图像及相应高倍率图像所需的操作步骤,并结合使用多波长细胞评分分割模块进行后续分析,从而实现 WHCAS 的再利用。该方案在图像经 WHCAS 获取后,无需开发算法或多步计数流程10,11,相较于其他技术更具优势。本方案减少了定量技术优化所需的时间,比人工计数更精确12且更高效,同时最大限度地提高了 WHCAS 的使用率。由于该方案能够对载玻片上任何荧光标记的组织进行成像与分析,因此具有广泛的适用性和易用性。
肿瘤标本的获取遵循当地机构审查委员会和伦理委员会批准的方案,并符合国家相关规定。本文所使用的WHCAS及其相关软件列于材料表中。
1. 导入期刊
2. 创建预览扫描采集的设置
3. 创建高倍镜下切片采集的设置
4. 将载玻片放入宽场高内涵分析系统
5. 获取预览扫描图像
6. 高倍扫描
7. 图像分析
图像可在 WHCAS 软件内查看。图8展示了在定义的兴趣区域内所有位点的高倍缩略图。请逐一检查每个位点,以确定应从分析中排除的位点(低倍和高倍下的示例分别见于图8和图9)。例如,位点149失焦(图9A),位点219存在气泡(图9B),位点54含有折叠(图9C),这些均应被排除。通常情况下,需排除所成像位点总数的10–15%。在本示例中,共排除了15.3%的位点(300个位点中有25个存在气泡,17个失焦,3个折叠,1个位于边缘)。图10A为选定用于分析的代表性图像(其对应的低倍缩略图见于图8)。此处,由多波长细胞评分模块生成的相应叠加图像展示了针对位点59进行的自动分割结果,该分割根据作者的设定进行了定制(细胞核最小宽度 = 2.5 µm,最大宽度 = 7.5 µm,高于局部背景的强度 = 35灰度级;CD11b阳性细胞最小宽度 = 4 µm,最大宽度 = 18 µm,最小染色面积 = 15 µm2,高于局部背景的强度 = 310灰度级;CD45阳性细胞最小宽度 = 4 µm,最大宽度 = 18 µm,最小染色面积 = 15 µm2,高于局部背景的强度 = 50灰度级)。完成分割后,可获得以下定量数据:各标记物阳性细胞比例(CD11b+和CD45+细胞分别为6.2 ± 5.1%和3.8 ± 2.1%)、双标记阳性细胞比例(3.5 ± 2.1% CD11b+CD45+细胞)、无标记细胞比例(86.6 ± 9.0% CD11b-CD45-细胞;图10B)、平均染色面积(CD11b+和CD45+细胞分别为40.0 ± 9.2 µm和36.7 ± 7.6 µm;图10C),以及平均荧光强度(CD11b+和CD45+细胞分别为408.9 ± 40.3相对荧光单位和373.9 ± 38.1相对荧光单位;图10D)。

图1:低倍镜下扫描载玻片的设置。A. 此图像显示孔板设置。 B. 此处显示孔板底部设置。 请点击此处查看此图的放大版本。

图 2:高倍镜下载玻片采集的设置。 本图展示了适当期刊的选择。 请点击此处查看此图的放大版本。

图3:使用载玻片适配器加载载玻片的演示。 A. 将盖玻片朝下放置载玻片,标签位于载玻片适配器缺口的一侧。 B. 将载玻片适配器装入宽场高内涵分析系统中。 请点击此处查看此图的放大版本。

图4:预览幻灯片设置。 A. 本图显示了图像采集的参数设置。 B. 此处显示了Hoescht/DAPI波长设置的数值。 C. 本图展示了日志设置。 请点击此处查看此图的放大版本。

图5:绘制载玻片区域。A. 使用矩形区域工具(其他绘图工具不可用)在DAPI扫描图像上选择预览扫描区域并创建感兴趣区域。B. 本图中的青色轮廓显示了应如何选择载玻片的整个区域(包括标签)。请点击此处查看该图的放大版本。

图6:在预览扫描图像上创建感兴趣区域。 预览图像或DAPI扫描图像显示了载玻片的整个区域。在此示例中,包含三个连续的脑组织切片(实线白色矩形轮廓)。这些切片上方的区域代表载玻片上的圆形标签。不同的切片排列方式不会限制后续感兴趣区域的选择。本示例中的感兴趣区域以虚线白色矩形轮廓标出。比例尺 = 1 mm。 请点击此处查看该图的放大版本。

图7:高倍镜图像采集的关键窗口设置。 A. “采集位点设置”窗口将显示感兴趣区域中包含的列数和行数。 B. 确保在“板采集设置”框中输入与图7A所示一致的正确列数和行数,并使位点以拼接方式排列。 C. 即使该窗口为空白,也必须在整个图像采集过程中保持“WellPositions”窗口处于打开状态。 D. 必须选中适当数量的感兴趣区域。 请点击此处查看此图的放大版本。

图8:感兴趣区域的代表性图像。 每个位点均可在感兴趣区域的组合缩略图中显示。图中以较高放大倍数展示了被排除的代表性位点(用红色框标记)以及一个被纳入分析的位点示例(用绿色框标记)。建议逐一审查每个位点,以确保其图像质量满足分析要求。比例尺 = 1 mm。 请点击此处查看该图的放大版本。

图9:应排除在分析之外的图像示例。 A. 人脑肿瘤切片经CD11b(绿色)和CD45(红色)染色,二者分别为小胶质细胞和巨噬细胞的标记物。该图像失焦,已被排除在分析之外。 B. 该图像中存在气泡,因此被排除在最终分析之外。 C. 由于组织折叠,该位点被排除在分析之外。比例尺为20 µm。 请点击此处查看该图的放大版本。

图10:代表性图像及分析结果。A. 每幅图像旁边显示的是代表自动分割结果的叠加图。在叠加图中,细胞核以白色显示,CD11b阳性染色细胞以绿色显示,CD45阳性染色细胞以红色显示。在排除质量不达标的位点后,整合所有剩余位点的结果,B. 以图形形式展示各标记物单独阳性及双标记阳性细胞占每个位点总细胞数的平均比例,C. 平均染色面积,以及D. 平均细胞荧光强度。RFU = 相对荧光单位。数据以均值 ± 标准差表示。比例尺为20 µm。请点击此处查看该图的放大版本。
目前仍阻碍生物科学研究效率的一个常见问题是,缺乏针对荧光标记组织及其内部结构进行无偏、准确且精确量化的方法。研究人员需要投入大量时间和精力,以寻找对已成像的组织切片进行分析的有效途径。许多现有方法为用户提供了可在程序中重新实现的算法12,13,14。这些方法虽可接受,但本报告的意义在于,若用户能够使用 WHCAS,则可轻松快速地建立一套完整的图像采集与分析流程。例如,相关软件中已提供可区分细胞类型并量化多种结构与过程的检测方法,包括细胞周期分析和核转位分析等。
该设置包含几个关键步骤。首先,将载玻片的空间参数定义为类似于培养板的形式。其次,通过低倍率全景扫描图像选择感兴趣区域,用于高倍成像。最后,排除会影响后续分析准确性和精确性的位点。该技术最大的局限性在于其适用性取决于用户是否能够使用全玻片扫描成像系统(WHCAS)。然而,随着对高内涵分析系统的需求不断增加,许多机构正在为研究人员提供此类设备,以保持竞争力15。最常见的问题排查情况是组织切片厚度不一致。如果选择了多个感兴趣区域,其中一些区域可能处于焦内,而另一些则可能失焦。理想情况下,在切片过程中,操作者应确保制备出均一的样本。然而,若样本存在不一致性,可针对每个失焦的感兴趣区域甚至每个视野,重新调整基于细胞核染色波长(或用户所用最亮荧光染料)的焦距。由于其他波长的位置仅相对于细胞核染色波长进行偏移,因此只需重新调整该波长的焦距即可。
本报告详细介绍了如何使用WHCAS及其配套软件对切片进行扫描和分析。多波长细胞评分模块可让用户自动计数任何经荧光标记的细胞核或细胞质标志物。在调整焦距设置并定义细胞特征(如宽度和面积),以使模块适配所成像的组织后,无需进一步的人工干预即可获得成像切片和定量数据。每次最多可同时对三张切片进行成像,并可定义多个感兴趣区域。该方案使需要分析切片的WHCAS用户能够利用可定制、多功能、自动化的分析流程,这些流程几乎无需优化,未来可广泛应用于涉及组织学分析的各类研究项目中。
作者对本文所述产品无任何经济利益,亦无其他事项需要披露。
本项目由加拿大卫生研究院以及阿尔伯塔创新-健康解决方案/阿尔伯塔癌症基金会提供的资助支持。作者谨此感谢神经生物学再生单元核心设施提供设备使用支持,感谢Paula Gedraitis为实现WHCAS系统上的载玻片扫描所奠定的基础工作,同时感谢本文中提及产品的开发者——Molecular Devices公司。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| ImageXpress MicroXLS | Molecular Devices | NA | 图像采集装置 |
| MetaXpress 5.1 | Molecular Devices | NA | 与ImageXpress MicroXL配套的软件(运行于搭载Windows操作系统的PC上) |
| 载物片适配器 | Molecular Devices | NA | 可插入ImageXpress MicroXL的金属载物片支架 |
| Slide_Region_Acquisition_revA.jzp | Molecular Devices | NA | 该日志文件可从metamorph.moleculardevices.com/forum/showthread.php?tid=218&highlight=slide获取,或通过联系Molecular Devices公司代表获得 |
| Slide_Region_Acquisition _Setup.JNL | Molecular Devices | NA | 在步骤6.6中选择此日志文件 |
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