勘误：用于动态研究红细胞聚集的可控微流控环境

摘要

已针对红细胞聚集动态研究的可控微流控环境发布更正。引言部分已更新。

摘要

已针对红细胞聚集动态研究的可控微流控环境发布更正。引言部分已更新。

方案

已发布一篇更正，针对红细胞聚集动态研究的可控微流控环境。引言部分已更新。

引言部分已从以下内容更新：

很少有研究尝试在可控流动条件下研究红细胞聚集并确定其聚集程度^15-17。然而，这些研究通过测定剪切系统中占据空间的比例来间接评估红细胞聚集体的大小，该比例基于显微镜下的血液图像进行测量，可提供有关聚集程度以及局部黏度的信息。

因此，我们提出一种新方法，可在受控且恒定的剪切速率下，动态地直接量化微循环中的红细胞聚集。红细胞悬液通过一个双Y型微通道（如图1所示），与磷酸盐缓冲盐水（PBS）溶液共同驱动，从而在血液层中形成剪切流。在此血液层内可获得恒定的剪切速率。红细胞悬液在不同红细胞压积（H）水平（5%、10% 和 15%）以及不同剪切速率（2–11 sec^-1）下进行测试。利用微粒子图像测速系统（µPIV）测定血液流速和剪切速率，同时采用高速相机对流动过程进行可视化观察。所得结果通过基于图像强度的MATLAB程序进行处理，以识别红细胞并确定聚集体的大小。

至：

很少有研究尝试在可控流动条件下研究红细胞聚集并确定其聚集程度^15-17。然而，这些研究通过显微镜下血液图像测量剪切系统中占据空间的比例，间接评估红细胞聚集体的大小，从而提供有关聚集程度以及局部黏度的信息。Chen et al.¹⁸ 提出了一种直接测量红细胞聚集体大小的技术，并通过在监测流动室压力降的同时调节悬浮液流速，获得了不同剪切应力下的红细胞聚集体尺寸分布。剪切应力是基于监测到的压力，利用斯托克斯方程计算得出的¹⁸。

因此，我们提出一种新方法，可在受控的微流控环境中，针对特定、恒定且可测量的剪切速率，动态地直接量化红细胞（RBC）聚集体。剪切系统中的血液流动被直接观察（垂直于流动方向），与以往研究^15,18相比，提供了不同的流动分析视角，并实现了对整个目标区域的可视化。红细胞悬浮液在双Y型微通道（如图1所示）中与磷酸盐缓冲盐水（PBS）溶液共同引入，从而在血液层中形成剪切流动。在此血液层内可获得恒定的剪切速率。红细胞悬浮液在不同红细胞压积（H）水平（5%、10% 和 15%）以及不同剪切速率（2–11 sec^-1）下进行测试。利用微粒子图像测速系统（µPIV）测定血液流速和剪切速率，同时采用高速相机对流动过程进行可视化。所得结果通过基于图像强度的MATLAB程序进行处理，以识别红细胞并确定聚集体的大小。

参考文献18已更新为：

18. Chen, S., Barshtein, G., Gavish, B., Mahler, Y., Yedgar, S. 通过计算机图像分析在流动腔中监测红细胞聚集性。Clin. Hemorhol. Microcirc。14，(4)，497-508 (1994)。

所有后续引用也均已更新。