本文描述了一种实验方案 离体 钙成像 果蝇 脑。在该方法中,可将天然或合成化合物加入缓冲液中,以检测其激活脑内特定神经元的能力。
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本文描述了一种实验方案 离体 钙成像 果蝇 脑。在该方法中,可将天然或合成化合物加入缓冲液中,以检测其激活脑内特定神经元的能力。
通过内分泌信号进行的器官间通讯,例如从外周到大脑的信号传递,对于维持内环境稳态至关重要。作为内分泌研究的模式动物, 黑腹果蝇,其具有复杂的遗传工具和基因组信息,正被越来越多地使用。本文描述了一种钙成像方法 果蝇 脑组织外植体。该方法可用于检测激素对脑组织的直接信号作用。众所周知,许多肽类激素通过G蛋白偶联受体(GPCRs)发挥作用,其激活可引起细胞内Ca²⁺水平升高。2+浓度。神经激活还会升高细胞内Ca2+ 水平,来自Ca2+ 钙离子内流与释放2+ 储存在内质网(ER)中。钙离子传感器GCaMP可用于监测这些Ca2+ 变化。在该方法中,目标神经元表达GCaMP,随后解剖表达GCaMP的幼虫脑并进行培养 离体 然后将测试肽施加于脑组织外植体,利用配备CCD相机的转盘共聚焦显微镜检测GCaMP的荧光变化。通过该方法,可检测任何水溶性分子,并可使用适当的荧光指示剂成像与神经元激活相关的多种细胞事件。此外,通过改造成像腔室,该方法还可用于成像其他组织 果蝇 器官或其他动物的器官。
器官之间的相互通讯是一种在进化上保守的策略,用于维持稳态以应对环境变化。在人体中,多种激素由内分泌腺释放进入血液循环。这些激素中的许多作用于大脑的下丘脑,从而调控代谢过程以及摄食等基本行为1,2。许多激素是利用哺乳动物模型发现的。然而,这些激素的作用机制,尤其是它们所参与的器官间网络,仍 largely 不清楚。
Drosophila melanogaster 已成为研究器官间通讯的有用模型。在昆虫中,许多生理过程由激素调控。早期关于生长和变态的研究使用了体型较大的昆虫。在这些研究中,通过特定器官的切除或移植,预测了器官间信号分子的存在;随后,昆虫激素中的保幼激素(Juvenile hormone, JH)、前胸腺促激素(Prothoracicotropic hormone, PTTH)和蜕皮激素(Ecdysone)被成功地通过生物化学方法纯化3,4,5。目前认为,一大类细胞间信号肽参与调控昆虫生命周期中的多种生理事件6,7。这些肽大多作用于....
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1. 幼虫脑外植体的制备
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通过本实验方案,研究了肽类激素 CCHa2 对脑内胰岛素生成细胞(IPCs)的激活作用。利用 dilp2-GAL412(由 Rulifson 博士惠赠)与 UAS-GCaMP6s13(由 Kim 博士惠赠)组合,将野生型脑组织中的 IPCs 标记为 GCaMP6s。对幼虫脑组织离体样本施加合成的 CCHa2 肽,并实时记录 GCaMP6s 的荧光信号。本实验中,图像采集自单一焦平面。每个 IPC 簇约包含 14 个细胞14,检测到其中 3 至 6 个细胞的信号。施加 CCHa2 后,GCaMP6s 信号强度显著增强(图 2A,视频 1)。野生型脑组织对胃饥饿素(Ghrelin)或痛敏肽(Nociceptin)未表现出明显反应(视频 2 和 3),这两种为哺乳动物特有的肽.......
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本文所述的Ca2+成像方法是一种用于检测激素在脑内功能的有效系统。在体条件下,脑接收来自多种内分泌器官的激素。此外,脑持续接收上行的感觉信息,从而引起神经元的自发性激活。该离体系统可消除此类干扰,相比在体成像具有更高的信噪比。在此系统中,可单独或联合测试分子。除肽类激素外,任何水溶性分子(包括天然或合成化合物)均可施加于脑组织外植体。
进行 Ca2+ 成像时,需要固定脑组织外植体。为此,以往曾使用由低熔点琼脂糖或纤维蛋白制成的凝胶基质16,17。这些凝胶基质虽可稳定固定样品,但组织需暴露于30 °C以上的温度,而该温度会引发变温动物(如昆虫)的热休克反应。为避免热应激,可采用物理方式固定脑组织。将附着于体壁的脑组织用昆虫针固定18。我们使用钨丝的方法可实现简单且稳定的样品固定。该系统制备简便、可重复使用,并且与凝胶包埋法相.......
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作者无任何利益冲突需要披露。
本研究得到了日本学术振兴会(JSPS)科学研究费补助金(15K07147、17K07419)(授予石本博、佐野弘子)、稻盛财团研究资助(授予HI)以及熊本大学分子胚胎学与遗传学研究所发育医学共同利用/共同研究中心项目的资助(授予HS)。我们感谢上口泉博士和山田大地先生在使用成像系统方面提供的帮助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 钨棒 | A-M systems, Sequim, WA, USA | 717000 | |
| 蓝丁胶 | Bostik, Paris, France | 3049100 | 类似腻子的可重复使用粘合剂 |
| 方形表面皿,1 5/8 英寸 | Carolina Biological Supply Company, Burlington, NC, USA | 742300 | |
| PBS | TAKARA Bio Inc., Kusatsu, Shiga, Japan | T900 | 磷酸盐缓冲液 |
| CCHa2 | SCRUM Inc., Tokyo, Japan | 定制合成肽 | |
| Ghrerin | Peptide Institute Inc., Osaka, Japan | 4372-s | |
| 伤害感受素 | Peptide Institute Inc., Osaka, Japan | 4313-v | |
| Axio Imager A2 | Carl Zeiss, Oberkochen, Germany | Axio Imager A2 | 荧光显微镜 |
| 物镜 W N-Achroplan 20x/0.5 M27 | Carl Zeiss, Oberkochen, Germany | 420957-9900-000 | 水浸式物镜 |
| 长行程P-725 PIFOC物镜扫描器 | Physik Instrumente GmbH & Co. KG, Karlsruhe, Germany | N/A | 压电驱动镜头移动装置 |
| 共聚焦扫描单元 CSU-W1 | Yokogawa Electric Corporation, Tokyo, Japan | CSU-W1 | 转盘式共聚焦扫描头 |
| ImagEM C9100-13 | Hamamatsu Photonics, Sizuoka, Japan | C9100-13 | EM-CCD相机 |
| OBIS 488 nm LS 60 mW | Coherent, Santa Clara, CA, USA | 1178770 | 488 nm激光器 |
| 488/568/647 nm Yokogawa二向色镜分光器 | Semrock, Rochester, NY, USA | Di01-T405/488/568/647-13x15x0.5 | 二向色分光镜 |
| 528/38 nm BrightLine单通带滤光片 | Semrock, Rochester, NY, USA | FF01-528/38-25 | 发射滤光片 |
| µManager | Open Imaging, Inc. | N/A | https://micro-manager.org |
| ImageJ | 美国国立卫生研究院 | N/A | https://imagej.nih.gov/ij/ |
| TurboReg | Philippe Thévenaz, 生物医学成像组,瑞士洛桑联邦理工学院 | N/A | http://bigwww.epfl.ch/thevenaz/turboreg/ |
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