本方案提供了一种高效且低成本的方法,通过反转录环介导等温扩增技术(RT-LAMP)检测人尿液和血清样本或蚊虫中的寨卡病毒或对照目标。该方法无需RNA提取,可在30分钟内完成。
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本方案提供了一种高效且低成本的方法,通过反转录环介导等温扩增技术(RT-LAMP)检测人尿液和血清样本或蚊虫中的寨卡病毒或对照目标。该方法无需RNA提取,可在30分钟内完成。
成人在感染寨卡病毒(ZIKV)后可能无明显症状,但在妊娠期间感染则可能导致流产及严重的神经系统出生缺陷。本实验方案的目标是快速检测人源和蚊源样本中的ZIKV。目前ZIKV检测的金标准是定量逆转录PCR(qRT-PCR);而逆转录环介导等温扩增(RT-LAMP)技术则可能实现更高效、低成本的检测,且无需昂贵的仪器设备。本研究在30分钟内直接对多种生物样本进行RT-LAMP检测ZIKV,无需预先从样本中提取RNA。该技术已应用于ZIKV感染患者的尿液、血清以及感染蚊虫样本的检测。在人源样本中以18S核糖体核糖核酸作为对照,在蚊源样本中则以肌动蛋白(actin)作为对照。
2015年,寨卡病毒(ZIKV)因与妊娠期感染相关的严重后果而受到全球广泛关注,包括流产、死产、严重的神经系统出生缺陷(如小头畸形)以及其他先天性出生缺陷1。在极少数情况下,ZIKV感染还与吉兰-巴雷综合征相关。ZIKV主要通过伊蚊属(Aedes)蚊子传播,但也可通过性接触传播1。由于大多数ZIKV感染者无症状,或仅表现为轻微的流感样症状,且这些症状与其他虫媒病毒感染的症状重叠1,因此亟需改进快速、经济高效的ZIKV检测方法,以对人群和当地蚊虫种群进行筛查。
定量逆转录PCR(qRT-PCR)是检测寨卡病毒(ZIKV)的可靠方法;然而,该技术需要昂贵的专业设备、经过培训的技术人员,以及从待测样本中提取RNA。逆转录环介导等温扩增(RT-LAMP)是一种基于PCR技术的单步核酸扩增方法,由于使用了具有链置换特性的嗜热DNA聚合酶,仅需一个恒定的孵育温度即可完成反应。这避免了对热循环仪的需求,并缩短了检测所需的时间。RT-LAMP的其他优势还包括高特异性和高灵敏度、在不同pH值和温度条件下均具有良好的稳定性,以及对多种PCR抑制物具有较强的耐受性2。该方法成本相对较低,且试剂在室温下稳定。鉴于这些特点,RT-LAMP既可在实验室中应用,也可用于现场检测。因此,目前已开发出多种LAMP反应,用于检测多种病原体及其他类型的感染3,4,5。本文所述RT-LAMP方案的目标是在30分钟内,无需RNA提取步骤,直接在人血清、尿液样本以及单只感染蚊虫中检测ZIKV。该方法可作为qRT-PCR的替代方案,是一种灵敏、快速的诊断工具,适用于实验室以外的多种环境,且检测速度快。
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本文所述所有方法均经博蒙特健康机构审查委员会(IRB)批准。所有实验均遵循相关指南和法规进行。
注意:所有潜在传染性材料均应按照生物安全二级标准进行操作,包括使用个人防护装备。任何可能产生气溶胶的操作均应在生物安全柜内进行。此外,活体蚊虫的操作应在适当的节肢动物防护等级1-3级设施中进行。鉴于寨卡病毒(ZIKV)感染与先天性异常相关,孕妇、正在备孕的女性或其伴侣应尽量减少在实验室接触ZIKV。在美国,ZIKV样本的运输被归类为B类生物物质,须符合美国交通部危险品法规(49 CFR 第171-180部分)的要求,因此样本运输应遵守相关指南。将ZIKV生物样本进口至美国需获得美国疾病控制与预防中心(CDC)的进口许可证。任何可能作为ZIKV传播媒介的节肢动物(即使未被感染)的进口,均需获得美国农业部(USDA)的许可。本信息截至发布时有效。最新建议可参见 https://www.cdc.gov/zika/laboratories/lab-safety.html。
注意:RT-LAMP 反应容易出现较高比例的假阳性结果,因此在实验设计时应采取预防措施。所有 RT-LAMP 反应的设置和操作均应使用专用的移液器和滤芯吸头。理想情况下,应建立单向工作流程。若条件允许,分析与成像(第5节)应在独立的封闭房间内进行,以防止污染。应尽量减少打开含有 RT-LAMP 产物的试管。
1. RT-LAMP 引物制备
2. 样品制备
3. 准备 RT-LAMP 反应主混合液
4. RT-LAMP 检测
5. RT-LAMP 分析
注意:在独立的封闭空间内进行RT-LAMP分析。
6. 废弃处理
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RT-LAMP 反应可通过三种不同方法进行分析。首先,加入荧光核酸染料后,阳性反应肉眼可见呈黄绿色,而阴性反应则呈橙色。其次,在紫外光激发下,含有荧光核酸染料的 RT-LAMP 反应会产生荧光信号;阴性反应则不会产生可检测到的荧光信号,即使阴性对照中可能存在微量背景荧光。最后,可将 RT-LAMP 反应产物在琼脂糖凝胶上电泳分析。阳性 RT-LAMP 反应会呈现条带模式,而阴性反应则无 DNA 条带。这三种分析方法的示例如图 2和3所示。这些样本在进行 RT-LAMP 前均未提取 RNA。图 1展示了将整只蚊子在 PBS 中研磨,该处理足以用于 RT-LAMP 反应。在图 2中,展示了 ZIKV RT-LAMP 反应的特异性:仅 ZIKV 分子对照呈阳性反应,而 DENV 分子对照和阴性对照均无阳性反应。此外,在已知感染 ZIKV 患者的尿液和血清中均检测到 Z...
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本文所述的ZIKV RT-LAMP检测方法适用于人源和蚊源样本6。其检测下限约为1个基因组当量6,这已足够灵敏,因为有症状的ZIKV感染患者的典型病毒载量为103 至 106 PFU/mL7。此外,该方法可在无需预先提取RNA且无需通过细胞培养扩增病毒的情况下检测样本中的ZIKV。与qRT-PCR相比,该方法显著缩短了检测时间,降低了成本和生物安全风险。
按照本方案中指定的体积比例使用的尿液样本,应可在无需进行RNA提取的情况下进行RT-LAMP反应。尽管理论上可以增加RT-LAMP反应中样本的用量,但在使用尿液时应格外谨慎。尿液含有多种可能抑制PCR反应的化学物质;其中尿素已被证实可降解聚合酶8,若尿液与RT-LAMP反应体系的比例过高,将导致RT-LAMP反应无法进行。如果预期病毒含量较低,则建议使用专用于尿液的试...
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LEL 和 MBC 在寨卡病毒诊断方法方面拥有知识产权。其余作者无竞争利益。
本工作由 Maureen 和 Ronald Hirsch 家族的慈善捐助以及密歇根圣玛丽医院的 Field 神经科学研究所资助。资助方在研究设计、数据收集与分析、发表决定或稿件撰写过程中均未发挥任何作用。我们还要感谢 Bernadette Zwaans 博士和 Elijah Ward 对稿件提出的宝贵审稿意见。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| Bst 2.0 WarmStart DNA 聚合酶 | New England Biolabs | M0537S | |
| 等温扩增缓冲液 | New England Biolabs | B0537S | |
| WarmStart RTx 逆转录酶 | New England Biolabs | M0380S | |
| Antarctic 热不稳定 UDG | New England Biolabs | M0372S | |
| MgSO4 | New England Biolabs | B1003S | |
| 100 mM dATP 溶液 | New England Biolabs | N0440S | 脱氧核苷酸混合物 N0446S |
| 100 mM dCTP 溶液 | New England Biolabs | N0441S | 脱氧核苷酸混合物 N0446S |
| 100 mM dTTP 溶液 | New England Biolabs | N0443S | 脱氧核苷酸混合物 N0446S |
| 100 mM dGTP 溶液 | New England Biolabs | N0442S | 脱氧核苷酸混合物 N0446S |
| 100 mM dUTP 溶液 | Thermo Fisher Scientific | R0133 | |
| SYBR Green I 核酸凝胶染料 | Invitrogen | S7563 | |
| Nancy-520 | Sigma Aldrich | 01494 | |
| 低分子量 DNA 标准 Marker | Invitrogen | 10-068-013 | |
| 寨卡病毒阳性对照 | 德国罗伯特·科赫研究所 | N/A | |
| 琼脂糖 | Thermo Fisher Scientific | BP1600 | |
| BlueJuice 凝胶上样缓冲液 | Invitrogen | 10816015 | |
| 引物 | Integrated DNA Technologies | 定制寡核苷酸 | |
| 无核酸酶水 | Ambion | AM9938 | |
| 尿液保存剂 | Norgen Biotek | 18126 | |
| ZIKV PCR 标准品 | 罗伯特·科赫研究所 | N/A | Vero E6 细胞上清液 |
| DENV2 New Guinea C 对照 | 康涅狄格州农业实验站 | N/A |
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