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方法文章

大规模自上而下蛋白质组学采用毛细管区带电泳串联质谱法

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DOI:

10.3791/58644

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2018年10月24日

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* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本文详细描述了一种利用毛细管区带电泳-电喷雾电离-串联质谱法(CZE-ESI-MS/MS)对蛋白质样品中的蛋白质变体进行分离、鉴定和表征的实验方案。该方案可用于简单蛋白质样品中蛋白质变体的高分辨率表征,以及复杂蛋白质组样品中蛋白质变体的大规模鉴定。

摘要

毛细管区带电泳-电喷雾电离-串联质谱法(CZE-ESI-MS/MS)已被公认为是一种用于自上而下蛋白质组学研究的有效工具,旨在对复杂蛋白质组中的蛋白质变体进行表征。然而,由于毛细管区带电泳(CZE)的样品负载量低且分离时间窗口窄,其在大规模自上而下蛋白质组学中的应用受到限制。本文描述了一种采用微升级样品加载体积和90分钟分离时间窗口的CZE-MS/MS方法,适用于大规模自上而下蛋白质组学分析。该CZE-MS/MS平台基于一种涂覆线性聚丙烯酰胺(LPA)的分离毛细管,具有极低的电渗流;采用基于动态pH连接的在线样品富集方法,可高效实现蛋白质堆积;配备电驱动泵式鞘流CE-MS接口,灵敏度极高;并结合具有高质荷比分辨率和扫描速度的离子阱质谱仪。该平台可用于对简单的完整蛋白质样品进行高分辨率分析,以及对多种复杂蛋白质组中的蛋白质变体进行大规模表征。例如,利用该平台实现了标准蛋白质混合物的高效分离,并对多种杂质实现了高灵敏度检测。另一个示例表明,在单次CZE-MS/MS运行中,该平台可从大肠杆菌(Escherichia coli)蛋白质组中鉴定出超过500种蛋白质变体和190种蛋白质。

引言

自上而下的蛋白质组学(TDP)旨在对蛋白质组中的蛋白质变体进行大规模表征。由于蛋白质组具有高度复杂性和宽广的浓度动态范围,TDP依赖于在电喷雾电离串联质谱(ESI-MS/MS)分析之前对完整蛋白质进行高效的液相分离1,2,3,4,5。毛细管区带电泳(CZE)是一种基于生物分子荷质比实现分离的强有力技术6。CZE方法相对简单,仅需一根开放式熔融石英毛细管、背景电解质(BGE)和电源即可完成。完整蛋白质样品可通过压力或电压加载至毛细管中,通过将毛细管两端浸入BGE并施加高电压来启动分离过程。CZE在生物分子分离中可达到极高的分离效率(>一百万理论塔板数)7。与广泛使用的反相液相色谱(RPLC)-MS相比,CZE-MS在完整蛋白质分析中具有显著更高的灵敏度8。尽管CZE-MS在大规模自上而下蛋白质组学中具有巨大潜力,但其在蛋白质组学中的广泛应用仍受到若干问题的限制,包括样品负载量低和分离时间窗口窄。CZE中的典型样品加载体积约为毛细管总体积的1%,通常对应于不足10....

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方案

1. 分离毛细管内壁线性聚丙烯酰胺涂层的制备

  1. 毛细管预处理
    1. 使用注射泵依次用500 µL的1 M氢氧化钠、去离子水、1 M盐酸、去离子水和液相色谱-质谱(LC-MS)级甲醇冲洗一根熔融石英毛细管(长度120 cm,内径50 µm,外径360 µm)。
    2. 用氮气(10 psi,≥12小时)干燥毛细管,并使用注射泵将50%(v/v)甲基丙烯酸-3-(三甲氧基甲硅烷基)丙酯的甲醇溶液填充至毛细管中。用硅橡胶密封毛细管两端,并在室温下孵育至少24小时。
      注意:此步骤中,毛细管内壁被修饰上C=C基团。更长的孵育时间可使反应更完全,从而获得更好的毛细管涂层。
    3. 用切割刀从毛细管两端各切去一小段(约5 mm)。使用注射泵以甲醇(500 µL)冲洗毛细管,以清除未反应的试剂。再用氮气(10 psi,≥12小时)干燥毛细管。
  2. 线性聚丙烯酰胺(LPA)涂层的制备
    注意:本步骤基于Zhu et al.22的方法并进行了少量修改。
    1. 配制丙烯酰胺溶液(40 mg丙烯酰胺溶于1 mL水中)和过硫酸铵(APS)溶液(5% [w/v] 水溶液)。
    2. 将2–3 µL APS溶液加入500 µL丙烯酰胺溶液中,涡旋混合,并用氮气....

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结果

图1 展示了基于动态 pH 界面的毛细管区带电泳-电喷雾质谱联用系统(CZE-ESI-MS)在实验中所用的示意图。将一段较长的、溶于碱性缓冲液中的样品注入内壁涂覆有 LPA 的分离毛细管中,该毛细管预先充满酸性背景电解质(BGE)。施加高电压 I 和 II 后,样品区带中的分析物将被富集 通过 动态pH结方法。为评估CZE-MS系统的性能,通常分析一种标准蛋白质混合物(细胞色素c、溶菌酶、β-酪蛋白、肌红蛋白、CA和BSA)。标准蛋白质混合物的代表性电泳图如下所示 图2A标准蛋白混合物通常至少重复运行两次,以评估系统的分离效率和重现性。分离效率可通过某些蛋白质的理论塔板数来评估,如图所示 图2B可通过蛋白质强度和迁移时间的相对标准偏差来评估重现性。 图3

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讨论

本文提供了一种详细的方案,利用毛细管区带电泳-串联质谱法(CZE-MS/MS)对简单蛋白质样品中的蛋白质变体进行高分辨率表征,并对复杂蛋白质组样品中的蛋白质变体进行大规模鉴定。图示为CZE-ESI-MS/MS系统的示意图 图1该方案中有四个关键步骤。首先,在分离毛细管内壁上制备高质量的LPA涂层至关重要。经LPA涂层处理的分离毛细管可降低毛细管内的电渗流,拓宽毛细管区带电泳的分离窗口,并减少蛋白质在其内壁上的吸附19. 制备LPA涂层的聚合反应进行如下 通过 将毛细管填充入丙烯酰胺(单体)与过硫酸铵(聚合引发剂)的混合物,随后将毛细管置于水浴中加热以引发反应22水浴中的反应时间至关重要。反应时间过短会导致反应不完全,涂层质量差。我们通常将反应时间延长至50分钟,以确保反应充分进行,获得更佳的涂层效果。若反应时间过长,毛细管可能发生堵塞,此时可能需要使用高效液相色谱(HPLC)泵通过水冲洗将毛细管内的聚合物推出。根据文献报道及我们的经验,一根LPA涂层毛细管可连续使用.......

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

作者感谢密歇根州立大学化学系Heedeok Hong课题组慷慨提供实验所用的大肠杆菌(Escherichia coli)细胞。作者感谢美国国立卫生研究院普通医学科学研究所(National Institute of General Medical Sciences, National Institutes of Health)通过资助项目R01GM118470(授予X. Liu)和R01GM125991(授予L. Sun和X. Liu)提供的支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
熔融石英毛细管Polymicro Technologies106815001750 µm 内径,360 µm 外径
氢氧化钠颗粒Macron Fine Chemicals7708-10腐蚀性
LC-MS 级水Fisher ScientificW6-1
盐酸Fisher ScientificSA48-1腐蚀性
甲醇Fisher ScientificA456-4有毒,健康危害
3-(三甲氧基硅基)丙基甲基丙烯酸酯Sigma-AldrichM6514对湿气和热敏感
氢氟酸Acros Organics423805000剧毒
丙烯酰胺Acros Organics164855000有毒,健康危害
过硫酸铵Sigma-AldrichA3678健康危害,氧化剂
溶菌酶Sigma-AldrichL6876
细胞色素 CSigma-AldrichC7752
肌红蛋白Sigma-AldrichM1882
ß-酪蛋白Sigma-AldrichC6905
碳酸酐酶Sigma-AldrichC3934
牛血清白蛋白Sigma-AldrichA2153
尿素Alfa Aesar36428-36
二硫苏糖醇(DL-Dithiothreitol)Sigma-AldrichD0632健康危害
碘乙酰胺Fisher ScientificAC122270250健康危害
甲酸Fisher ScientificA117-50腐蚀性,健康危害
C4 捕获柱Sepax Technologies110043-4001C3 µm 颗粒,300 Å 孔径,4.0 mm 内径,10 mm 长
乙腈Fisher ScientificA998SK-4有毒,氧化剂
碳酸氢铵Sigma-Aldrich1066-33-7
Nalgene 快流速滤器Thermo Scientific126-00200.2 µm CN 膜,50 mm 直径
大肠杆菌细胞K-12 MG1655
杜尔贝科磷酸盐缓冲液Sigma-AldrichD8537
BCA 蛋白定量测定Thermo Scientific23250
丙酮Fisher ScientificA11-1
用于蛋白质脱盐的高效液相色谱系统Agilient1260 Infinity II
乙酸Fisher ScientificA38-212
毛细管电泳自动进样器CMP ScientificECE-001
电驱动鞘流接口CMP Scientific
Q Exactive HF 混合四极杆-轨道阱质谱仪Thermo Fisher Scientific
Sutter 火焰/布朗微电极拉制仪Sutter InstrumentsP-1000
用于细胞裂解的超声波细胞破碎仪Branson101063196型号 S-250A
真空浓缩仪Thermo Fisher ScientificSPD131DDA-115

参考文献

  1. Aebersold, R., et al. How many proteoforms are there. Nature Chemical Biology. 14 (3), 206-214 (2018).
  2. Tran, J. C., et al. Mapping intact protein isoforms in discovery mode using top-down proteomics. Nature. 480 (7376), 254-258 (2011).
  3. Catherman, A. ....

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