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方法文章

高盐处理抗原提呈树突状细胞的分离与过继性转移

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DOI:

10.3791/59124

2019年3月5日

本文内容

摘要

本文介绍了一种通过磁性细胞分选法从小鼠脾脏中分离树突状细胞,并将其过继转移至未致敏小鼠的实验方案。选用高盐激活的树突状细胞模型,以详细说明过继转移及流式细胞术的各个操作步骤。

摘要

过量膳食盐摄入会引发炎症,并在高血压的发生发展中发挥关键作用。我们此前发现,抗原呈递树突状细胞(DCs)能够感知细胞外高钠环境,从而激活NADPH氧化酶并促进异左旋胶毒素(isolevuglandin, IsoLG)-蛋白质加合物的形成。这些IsoLG-蛋白质加合物可与自身蛋白质发生反应,诱导类似自身免疫的状态,进而促进高血压的发生。我们已开发并优化了前沿方法用于研究高血压中DC的功能。本文提供了一套详细的树突状细胞分离、体外培养及功能分析的实验方案。 体外高钠处理及小鼠脾脏CD11c adoptive转移+ 将细胞移植到受体小鼠体内,以研究其在高血压中的作用。

引言

过量膳食盐是高血压的主要危险因素。1,2 美国心脏协会建议,钠(Na)的每日摄入量上限为2,300毫克(mg)+每日摄入量,然而;美国仅有不到10%的人口遵循这一建议。3,4 适度降低 Na+ 摄入可降低血压,并使美国冠心病和中风的年度新增病例减少20%。5 过量摄入盐的主要问题在于,50%的高血压人群表现为盐敏感性,即在摄入钠后血压升高10 mmHg+ 在Na后出现血压升高或类似的血压下降+ 限制与利尿6 盐敏感性在25%的血压正常个体中也存在,并且是死亡和心血管事件的独立预测因子。7,8 涉及肾脏的高血压盐感知机制已被广泛研究;然而,最近的研究表明,免疫细胞能够感知Na+.9,10

最新证据表明,肾外钠处理....

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方案

范德堡大学机构动物护理和使用委员会已批准本文所述的操作程序。小鼠的饲养和护理均遵循《实验动物护理和使用指南》(国家科学院出版社,2010年修订版)。

1. 小鼠脾脏的分离

  1. 准备1640 RPMI培养基:含10% FBS、0.10 mM HEPES、1 mM丙酮酸钠、50 µM β-巯基乙醇和1%青霉素/链霉素。
  2. 通过吸入CO2处死10–12周龄的C57bl/6雄性小鼠。用70%乙醇喷洒小鼠胸部和体侧。在左侧小心切开皮肤和腹膜腔,暴露脾脏。
  3. 使用小镊子谨慎将肠道和肝脏移向小鼠左侧,并用精细剪刀轻轻切除脾脏。
    注意:此步骤必须非常小心操作,因为胃肠道损伤可能引起污染。
  4. 将每例切除的脾脏置于含有3 mL RPMI 1640培养基的已标记15 mL锥形管中。

2. 从脾脏制备单细胞悬液

注意:可通过结合机械解离和酶消化的方法将脾脏解离为单细胞悬液。

  1. 通过将胶原酶 D(1 mg/mL;冻干粉 0.29 U/mg)和 DNase I(0.1 mg/mL)加入已配制的 RPMI 1640 培养基中,制备脾脏消化液(见步骤 1.1)。
  2. 使用....

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结果

图1 为上述步骤的示意图。分离的小鼠脾脏通过磁性细胞分选法分选出 CD11c+ 树突状细胞(DCs),并将其接种于正常盐浓度培养基(NS;150 mmol NaCl)或高盐培养基(HS;190 mmol NaCl)中,培养 48 小时。随后,通过眶后注射将 CD11c+ DCs 过继转移至未经处理的受体小鼠体内。十天后,小鼠植入渗透压微型泵,以低剂量血管紧张素 II(140 ng/kg/min)持续输注 14 天。在血管紧张素 II 输注的 14 天期间,通过遥测法或尾套体积描记法记录小鼠血压。

在过继性转移树突状细胞并植入用于低剂量血管紧张素II输注的渗透压微泵后,典型的血压分析结果如图2所示(修改自Barbaro等人的研究9)。值得注意的是.......

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讨论

在本实验方案中,我们优化了从小鼠脾脏中分离CD11c+树突状细胞(DCs)并将其过继转移至未致敏动物的方法,以研究DCs在盐诱导性高血压中的作用。该方案可进行调整,用于分离和过继转移其他免疫细胞亚群,包括巨噬细胞、单核细胞以及T淋巴细胞和B淋巴细胞等适应性免疫细胞。我们优化了脾脏组织消化过程,以确保细胞存活率以及DC表面标志物表达的稳定性。此外,我们还优化了体外高钠刺激小鼠DC的实验条件,以获得最佳的DC存活状态。

本方案中的一个关键步骤是磁珠分选细胞。磁珠分选是一种强大且便捷的工具,可用于分离特定的小鼠细胞类型,以研究免疫细胞在疾病中的功能。然而,该方法依赖于一些基本的细胞表面标志物(如CD11c),而这些标志物通常在多种免疫细胞类型中均有表达,因此常常导致目标细胞的富集程度不够理想。因此,对于需要高度特异性细胞群体的应用,可能需要使用多种抗体进行染色,并通过流式细胞术进行分选,以去除污染细胞。此外,使用流式细胞术确认所分离细胞的富集程度和纯度也非常重要,如图3

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

本工作由美国心脏协会资助,授予 N.R.B. 的 POST290900 项目、授予 L.X. 的 17SDG33670829 项目,以及美国国立卫生研究院资助项目 K01HL130497(授予 A.K.)。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
APC/Cy7 抗小鼠 CD11cBiolegend117324
autoMACS 运行缓冲液 Miltenyi Biotec130-091-221
CD11c 微珠超纯试剂 Miltenyi Biotec130-108-338
胶原酶 DRoche11088866001
DNase IRoche10104159001
不含钙和镁的 DPBSCorning21-031-CV
FcR 封闭试剂Miltenyi Biotec 130-092-575
FITC 抗小鼠 CD45Biolegend103108
GentleMACS C 管Miltenyi Biotec130-096-334
GentleMACS 组织解离仪Miltenyi Biotec130-093-235使用方案:Spleen 04.01
LIVE/DEAD 可固定紫红色死细胞染色试剂盒InvitrogenL34964
LS 分离柱Miltenyi Biotec130-042-401
QuadroMACS 分离器 Miltenyi Biotec130-090-976
RPMI 1640 培养基 Gibco11835-030

参考文献

  1. Kearney, P. M., et al. Global burden of hypertension: analysis of worldwide data. Lancet. 365, 217-223 (2005).
  2. Murray, C. J., Lopez, A. D. Measuring the global burden of disease. N Engl J Med. 369, 448-457 (2013).
  3. Lev-Ran, A., Porta, M.

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重印与许可

标签

CD11c