本文介绍了一种在头部固定的活动小鼠中可视化蛋白激酶A活性的方法。通过颅窗将改良的A激酶活性报告基因tAKARα在皮层神经元中表达并实现成像。利用双光子荧光寿命成像显微技术,在强制运动过程中体内可视化PKA活性。
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本文介绍了一种在头部固定的活动小鼠中可视化蛋白激酶A活性的方法。通过颅窗将改良的A激酶活性报告基因tAKARα在皮层神经元中表达并实现成像。利用双光子荧光寿命成像显微技术,在强制运动过程中体内可视化PKA活性。
神经调节对大脑功能具有强大的调控作用。神经调节系统的功能障碍会导致神经性和精神性疾病。尽管神经调节系统至关重要,但能够以细胞分辨率追踪神经调节事件的技术才刚刚兴起。多巴胺、去甲肾上腺素、乙酰胆碱和5-羟色胺等神经调质通过各自的G蛋白偶联受体触发细胞内信号传导事件,从而调节神经元的兴奋性、突触通讯及其他神经功能,进而调控神经网络中的信息处理过程。上述神经调质均汇聚于环磷酸腺苷/蛋白激酶A(PKA)信号通路。因此,开发了以单细胞分辨率为基准的活体PKA成像技术,作为检测神经调节事件的读出手段,其作用方式类似于利用钙成像来监测神经元的电活动。本文介绍了一种在固定头部的行为小鼠大脑皮层中,对单个神经元水平的PKA活性进行可视化的方法。该方法采用一种改进的蛋白激酶A活性报告分子(AKAR),称为tAKARα,其基于荧光共振能量转移(FRET)原理。这种基因编码的PKA传感器通过DNA质粒的子宫内电穿孔(IUE)或腺相关病毒(AAV)的立体定位注射导入运动皮层。利用双光子荧光寿命成像显微技术(2pFLIM)检测FRET的变化,该技术在量化光散射脑组织中的FRET信号方面优于比值型FRET测量方法。为研究强制运动过程中PKA的活性变化,通过小鼠清醒状态下皮层上方植入的慢性颅窗,对tAKARα进行成像,小鼠在速度可控的电动跑台上进行奔跑或静息。该成像方法可广泛适用于其他多种脑区,用于研究相应行为诱导的PKA活性变化,也可推广至其他基于荧光寿命成像(FLIM)的传感器,用于活体成像研究。
神经调节(也称为慢突触传递)在不同行为状态(如应激、觉醒、注意力和运动)下对大脑功能施加强有力的调控1,2,3,4。尽管其重要性已被广泛认识,但关于神经调节事件发生的时间和位置的研究仍处于初级阶段。神经调节物质包括乙酰胆碱、多巴胺、去甲肾上腺素、5-羟色胺以及多种神经肽,它们通过激活G蛋白偶联受体(GPCRs),进而触发细胞内第二信使通路,其作用时间尺度广泛,从数秒到数小时不等。虽然每种神经调节物质会引发特定的信号传导事件,但cAMP/蛋白激酶A(PKA)通路是多种神经调节物质共有的下游通路1,5。cAMP/PKA通路调控神经元的兴奋性、突触传递和可塑性6,7,8,9,从而调节神经元网络的动力学特性。由于不同神经元或神经元类型表达不同类型或水平的神经调节物质受体10
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本文所述所有方法均已获得俄勒冈健康与科学大学机构动物护理和使用委员会(IACUC)的批准。
1. 双光子FLIM显微镜设置
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FRET-FLIM 传感器可用于可视化多种不同的信号通路,包括参与神经调节的 cAMP/PKA 通路。本实验方案采用近期开发的 tAKARα 传感器,并结合双光子荧光寿命成像技术(2pFLIM),以在固定头部的行为小鼠中可视化 PKA 活性。大多数现有的双光子显微镜可通过添加三到四个组件升级为具备 2pFLIM 功能,如图1所示(另见第1节)。为了在 2pFLIM 获取的图像中可视化 FRET,需对每个像素收集的光子到达时间直方图进行平均寿命的量化分析(图3A、B)。平均寿命通过伪彩色图像进行可视化展示,其中较高的平均寿命(冷色调)和较低的平均寿命(暖色调)分别代表较低和较高的 PKA 活性,因为 PKA 的激活会导致荧光寿命缩短。必须谨慎正确设置 SPC 范围;该范围应设定在激光脉冲间隔内(例如 80 MHz 脉冲频率对应的 12.5 ns),并尽量减少硬件边缘伪影(另见第6节及“讨论”部分)。对感兴趣区域(ROI)内.......
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本方案展示了使用FRET-FLIM传感器tAKARα在头部固定的行为小鼠中可视化神经调节触发的PKA活性。该应用基于对tAKARα在体外和体内进行的大量测试与表征,以证明所获得的FLIM信号与生理性的神经调节事件相关17。本文以运动诱导的运动皮层中PKA活性这一在体应用为例,详细描述了将传感器递送至脑组织、用于成像的动物手术、行为与成像数据采集所需的硬件和软件要求,以及成像数据分析所用的软件与算法。
通过子宫内电穿孔(IUE)导入DNA质粒或通过立体定位注射AAV颗粒,可将tAKARα传感器引入大脑皮层。根据电穿孔参数和DNA浓度的不同,IUE可在皮层相对较大的区域内实现不同程度的皮层神经元标记密度25。使用IUE所标记的皮层层级取决于手术时的胚胎发育阶段。当需要在特定脑亚区成像大量细胞时,通常采用立体定位注射AAV颗粒。该方法通常在注射中心处产生密集的神经元标记,而距离中心越远,标记密度逐渐降低。重要的是,AAV对脑内细胞的感染效率取决于所使用的AAV血清型。AAV2/1在皮层、丘脑和.......
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作者无任何利益冲突需要披露。
感谢Tess J. Lameyer女士、Ruth Frank女士和Michael A. Muniak博士提供的修改意见和建议,感谢Max Planck Florida研究所的Ryohei Yasuda博士提供2pFLIM采集软件。本研究由两项BRAIN计划资助项目U01NS094247(H.Z.和T.M.)和R01NS104944(H.Z.和T.M.)、R01基金R01NS081071(T.M.)以及R21基金R21NS097856(H.Z.)支持。所有资助均来自美国国家神经疾病和卒中研究所。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 0.2 μm 醋酸纤维素注射器滤器 | Nalgene | 190-2520 | 步骤 3.2.2. |
| 16倍 0.8 NA 水浸物镜 | Nikon | MRP07220 | 步骤 5.5. |
| 3针电缆 | US digital | CA-MIC3-SH-NC | 步骤 2.5. 用于连接旋转传感器与显微镜的DAQ输入端口 |
| 铝制光学平台板 | Thorlabs | MB1012 | 步骤 2.5. |
| AnimalTracker MATLAB 软件 | N/A | N/A | 步骤 2.5 及第5–6节。可向通讯作者申请获取 |
| 带通滤光片 | Chroma | ET500-40m | 步骤 1.4. |
| 笼式安装板 | Thorlabs | CP01 | 步骤 2.4. 用作旋转传感器的安装支架 |
| 微型钻头用碳钢钻头,尖端直径 0.5 mm | FST | 19007-05 | 步骤 3.2.3. 和 4.4. |
| 圆形盖玻片(直径 5 mm) | VWR | 101413-528 | 步骤 4.5. |
| 定制注射针固定装置 | N/A | N/A | 步骤 3.2.4. 技术细节可向通讯作者申请获取 |
| 牙科丙烯酸树脂 | Yates Motloid | 44114 | 步骤 4.3. 和 4.5. |
| 牙科钻机;Microtorque ii | Ram products | 66699 | 步骤 3.2.3. 和 4.4. |
| 道康宁透明聚合物 | The Dow Chemical Company | 3-4680 | 步骤 4.5. 人工硬脑膜 |
| 电穿孔电极 | Bex | LF650P5 | 步骤 3.1.4. |
| 电穿孔仪 | Bex | CUY21 | 步骤 3.1.4. |
| 亮蓝FCF | Sigma-aldrich | F7258-25G | 步骤 3.1.1. |
| FLIMimage MATLAB 软件 | N/A | N/A | 第5节。由Max Planck Florida研究所Ryohei Yasuda博士惠赠 |
| FLIMview MATLAB 软件 | N/A | N/A | 第5和第6节。可向通讯作者申请获取 |
| 泡沫兼容胶水(Gorilla 白胶) | Gorilla | 5201204 | 步骤 2.3. |
| 头固定板 | N/A | N/A | 步骤 4.3. 技术细节可向通讯作者申请获取 |
| 头固定板支架 | N/A | N/A | 步骤 2.6. 技术细节可向通讯作者申请获取,需与安装柱支架和直角支架配合使用 |
| 液压显微操作器 | Narishige | MO-10 | 步骤 3.2.4. |
| Krazy胶水 | Krazy glue | KG82648R | 步骤 4.3. 氰基丙烯酸酯类胶水 |
| 低噪声高速光电倍增管 | Hamamatsu | H7422PA-40 或 H10769PA-40 | 步骤 1.3. |
| MATLAB 2012b | Mathworks | N/A | 步骤 2.6 及第5、6节。用于运行显微镜采集和数据分析软件 |
| 电机 | Zhengke | ZGA37RG | 步骤 2.4. |
| 电机调速控制器 | Elenker | EK-G00015A1-1 | 步骤 2.5. |
| 电动显微操作器 | Sutter | MP-285 | 步骤 3.2.4. |
| 安装底座 | Thorlabs | BA1S | 步骤 2.5. 与PH4和TR2配合使用,用于电机和传感器的安装柱 |
| 安装柱 | Thorlabs | P14 | 步骤 2.6. 与PB2配合使用,用于头固定板支架的安装柱 |
| 安装柱底座 | Thorlabs | PB2 | 步骤 2.6. 与P14配合使用,用于头固定板支架的安装柱 |
| 安装柱支架 | Thorlabs | C1515 | 步骤 2.6. 与直角支架和头固定板支架配合使用 |
| 光学安装柱 | Thorlabs | TR2 | 步骤 2.5. 与BA1S和PH4配合使用,用于电机和传感器的安装柱 |
| 磷酸盐缓冲液 | Ν/Α | Ν/Α | 步骤 3.2.2. 方案来源:Cold Spring Harbor Protocols 2006, doi: 10.1101/pbd.rec8247 |
| 光电二极管 | Thorlabs | FDS010 | 步骤 1.2. |
| 光子计时计数模块 | Becker and Hickl | SPC-150 | 步骤 1.1. |
| 质粒:tAKARα (CAG-tAKARα-WPRE) | Addgene | 119913 | 步骤 3.1.3. |
| 安装柱固定夹 | Thorlabs | PH4 | 步骤 2.5. 与BA1S和TR2配合使用,用于电机和传感器的安装柱 |
| 直角支架 | Thorlabs | AB90 | 步骤 2.6 与安装柱支架和头固定板支架配合使用 |
| 旋转编码器 | US digital | MA3-A10-250-N | 步骤 2.4. |
| 橡胶垫 | Rubber-Cal | B01DCR5LUG | 步骤 2.1. |
| 轴套联轴器(1/4 英寸 × 1/4 英寸) | McMaster | 6208K433 | 步骤 2.3. 和 2.4. |
| ScanImage 3.6 | Svoboda Lab/Vidrio Technology | N/A | 步骤 5.9. 和 6.1. |
| 信号分路器 | Becker and Hickl | HPM-CON-02 | 步骤 1.3.1. |
| 不锈钢轴(直径 1/4 英寸,长度 L = 12 英寸) | McMaster | 1327K66 | 步骤 2.3. |
| 立体定位对准系统 | David Kopf | 1900 | 步骤 3.2. 和 4.1. 经过改装;包含Sutter显微操作器、定制注射针固定装置和液压显微操作器 |
| 双光子显微镜 | N/A | N/A | 第5节。基于HHMI Janelia研究园区的模块化活体多光子显微系统(MIMMS)构建(https://www.janelia.org/open-science/mimms) |
| Vetbond 组织粘合剂 | 3M | 14006 | 步骤 3.2.6. |
| 病毒:tAKARα (AAV2/1 hSyn-tAKARα-WPRE) | Addgene | 119921 | 步骤 3.2.2. |
| 白色聚乙烯泡沫滚筒(8 英寸 × 12 英寸) | Fabrication Enterprises INC. | 30-2261 | 步骤 2.1.1. |
| 白色聚苯乙烯泡沫球半球(直径 200 mm,两个空心半球) | GrahamSweet | 200mm diameter 2 hollow halves | 步骤 2.1.1. |
| Zipkicker | PACER | PT29 | 步骤 4.3. 硬化加速剂 |
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