可视化蛋白质激酶 在头部固定行为小鼠中使用 Vivo 双光子荧光寿命成像显微镜的活性

神经调节,也称为缓慢突触传输,在不同的行为状态(如压力、觉醒、注意力和运动1、2、3)期间对大脑功能施加强有力的控制。^4.尽管其重要性,神经调节事件发生的时间和地点的研究仍处于起步阶段。神经调节剂,包括乙酰胆碱、多巴胺、肾上腺素、血清素和许多神经肽,激活G蛋白耦合受体(GPCRs),进而触发细胞内第二信使通路,时间范围很宽从秒到小时。虽然每个神经调节器触发一组不同的信号事件,cAMP/蛋白质激酶A(PKA)通路是许多神经调节器1,5的常见下游通路。cAMP/PKA通路调节神经元兴奋性、突触性传播和可塑性6,7,8,9,因此,调节神经元网络动力学。由于不同的神经元或神经元类型表达不同类型或水平的神经调节器受体10,同一细胞外神经调节器的细胞内效应可能是异质的,因此,必须研究与细胞分辨率。迄今为止,在行为过程中监测体内单个神经元的神经调节事件仍然具有挑战性。

为了研究神经调节的时空动力学,需要一种合适的记录方式。微透析和快速扫描循环伏特经常用于研究神经调节器的释放,但它们缺乏监测细胞事件11、12的空间分辨率。PKA成像与钙动力学一样,在群体^成像13中用作神经元电活动的代理,PKA成像可用于以细胞分辨率读取神经元群中的神经调节事件。本协议描述了使用改进的A-激酶活动报告器(AKAR)来监测动物行为期间体内的PKA活动。此处描述的方法允许以亚细胞分辨率同时成像神经元群,其时间分辨率可跟踪生理神经调节事件。

AKAR由一个供体和接受荧光蛋白组成,由PKA磷酸化基质肽和叉头相关(FHA)域连接,与基^质14、15的磷酸化丝氨酸或三甲氨酸结合。PKA通路激活后,AKAR的基质肽被磷酸化。因此,FHA 域与磷酸化基质肽结合,从而使两个荧光苷酸接近,称为 AKAR 的闭合状态。磷酸化AKAR的封闭状态导致供体和受体荧光量之间增加Fürster共振能量转移(FRET)。由于磷酸化ARNA的比例与PKA^活性16的水平有关,生物样品中的FRET量可用于量化PKA活性16、17、18^{的含量。 19,20}.

早期版本的AKARs主要设计为双色比例^成像14。当成像深入到脑组织,比例法遭受信号失真,由于波长依赖光散射17,18,21。如下所述,荧光寿命成像显微镜(FLIM)消除了这个问题,因为FLIM只测量供体荧光量18、21发出的光子。因此,FRET 的 FLIM 定量不受组织深度¹⁷的影响。此外,可以使用接受器荧光的"暗"(即低量子收率[QY])变体。这释放了一个颜色通道,以方便通过同步成像第二个传感器或形态标记17,19,20的正交神经元属性的多路测量。

FLIM成像量化荧光在兴奋状态下花费的时间,即荧光^寿命18。荧光回到地面状态,从而结束兴奋状态,通常伴随光子的发射。虽然单个兴奋分子的光子发射是随机的,但在人群中,平均荧光寿命是该特定荧光的特性。当纯荧光群同时激发时,产生的荧光将跟随单个指数衰变。此指数衰减的时间常数对应于荧光蛋白的平均荧光寿命,荧光蛋白通常为 1 到 4 纳秒。FRET 也可以将兴奋的供体荧光剂返回到地面状态。在FRET的存在下,供体荧光的荧光寿命缩短。非磷酸化的AVR表现出相对较长的供体荧光寿命。在PKA的磷酸化后,传感器的寿命较短,因为供体和受体的荧光量彼此靠近,FRET增加。因此,在AKARs的种群中荧光寿命的量化代表PKA活性水平。

早期版本的AKARs尚未成功用于单细胞分辨率的体内成像。这主要是由于AKAR传感器对生理活化^信号振幅低。最近,通过系统地比较两光子荧光寿命成像显微镜(2pFLIM)的可用AKAR传感器,发现一种名为FLIM-AKAR的传感器性能优于替代传感器。此外,还开发了一系列称为靶向AKARs(tAKARs)的FLIM-AKAR变体,以可视化特定亚细胞位置的PKA活性:微管(tAKAR®)、细胞醇(tAKAR®)、活性素(tAKAR®)、丝状活性素(tAKAR®)、膜(tAKARé)、膜(tAKARé)、微管(tAKAR®)、细胞醇(tAKAR®)、活性素(tAKAR®)、膜(tAKARé)、膜(tAKARé)、微管(tAKAR®)、细胞源性活性素(tAKAR®)、活性剂(tAKAR®)。(tAKAR®),和鼻后密度(tAKAR*)。在tAKARs中,tAKAR®将去甲肾上腺素引起的信号振幅提高了2.7倍。这与神经元中的大多数PKA固定在静止^{状态22、23}的微管上的知识是一致的。tAKAR® 是现有 2pFLIM 的 AVR 中表现最好的。此外,tAKAR®检测到由多个神经调节剂引起的与生理相关的PKA活性,tAKAR®的表达并没有改变神经元^功能17。

最近,tAKAR®成功地用于可视化头固定行为^小鼠17中的PKA活动。结果表明,强制运动触发了运动、桶和视觉皮质中表层神经元(第1层至3层,距离pia深度为+300μm)的PA活性。运动触发的PKA活性部分依赖于通过β-肾上腺素受体和D1多巴胺受体的信号,但不受D2多巴胺受体拮抗剂的影响。这项工作说明了tAARs使用2pFLIM跟踪体内神经调节事件的能力。

在当前协议中,在强制运动范式期间,在头部固定的醒小鼠中进行 PKA 活动成像的整个方法用六个步骤来描述。首先,在传统的双光子显微镜中增加2pFLIM功能(图1)。第二,建造电动跑步机(图2)。第三,通过子宫电穿孔(IUE)的DNA质粒,或对腺相关病毒(AAV)的立体注射,在小鼠皮层中表达tAKAR®传感器。IUE^24、25和立体注射病毒^颗粒26的出色手术方案已经发表。我们使用的关键参数如下所述。第四,安装一个颅窗。优秀的方案已经发表颅窗手术27,28。介绍了从标准协议修改的几个步骤。第五,在体内表演2pFLIM。第六,分析2pFLIM图像(图3和图4)。这种方法应该很容易适用于许多其他头部固定的行为范式和大脑区域。

这里描述的所有方法都已获得俄勒冈健康与科学大学的机构动物护理和使用委员会(IACUC)的批准。

1. 2pFLIM 显微镜设置

1. 安装光子定时计数模块(PTCM,材料表),并根据制造商手册连接到计算机(图1)。
   注:PTCM 通常是接收激光脉冲计时的"同步"输入和来自光电倍增管 (PMT) 的光子输入的计算机板。它还从双光子成像控制软件接收像素、线条和帧的时钟计时。PTCM 使用时钟信号将单个光子分离到不同的像素和帧中。
2. 添加具有 >200 MHz 带宽的光电二极管,以测量激光定时。在光道中放置一个标准玻璃盖玻片,将激光的一小部分反射到垂直于光路的光电二极管中(图1)。将光电二极管输出连接到 PTCM 的"同步"输入。
   注:许多现代激光器也输出激光正时。对于这些激光器,光电二极管是不必要的,可以直接将激光正时输出连接到PTCM的同步输入。
3. 在 tAKAR® 的情况下,使用低噪声、快速 GaAsP PMT 交换 PMT(图 1)。将 PMT 输出连接到 PTCM 的信号输入。
   1. 如果需要通过传统的双光子成像通道同时采集强度,则添加可选的信号分路器(图1)。将 PMT 输出连接到信号分路器,并将分路器输出连接到 PTCM 和传统的双光子成像模块。
      注:GaAsP PMT 提供比传统双碱 PMT 更快的单光子信号,并允许更精确地确定光子定时。某些型号的 GaAsP PMT 可冷却到环境温度以下的 10~35 °C,从而将暗数抑制到每秒几百以下(通常为 ±200 计数/秒)。这种低噪声水平对于精确测量荧光寿命非常重要,因为噪声光子计数无法从荧光寿命曲线中轻松区分或减去。
4. 添加带通荧光发射过滤器,将接受荧光剂的光谱污染(如果有)降至最低。例如,对于 tAKAR®,用于绿色通道的 500 nm × 20 nm 阻隔过滤器用于减少接受器 sREACh 的污染,这是一种深色 (QY =0.07) 黄色荧光蛋白 (YFP)^29、30。与控制软件(PTCM 用户手册中所述)连接计时信号,如单个图像像素、线和帧的时钟。安装适当的数据控制和采集软件。
   注:一些PTCM制造商 (材料表) 提供其 2pFLIM 成像软件.在这里,使用称为FLIMimage的定制软件,这是由Yasuda实验室(马克斯普朗克佛罗里达州,通过个人沟通)开发的。该软件作为某些双光子采集软件(材料表)的附加用户功能。它在双光子成像过程中以适当的时间控制和与PTCM通信,以获取2pFLIM图像。

2. 建造电动跑步机

注:定制电动跑步机的设计如图2所示。

1. 使用精细的锯子将泡沫辊 (Φ = 200 mm) 切割至 150 mm 的长度。或者,将泡沫球的两半粘在一起,将胶带放在接缝上。可选择在滚轮上粘附轮廓的橡胶垫,以增加滚子的牵引力。
2. 在滚子平侧的滚子中心钻一个直径为 1/4 英寸的孔,或者在使用泡沫球时,在球的中间钻一个直径为 1/4 英寸的孔。
3. 通过孔安装直径为 1/4 英寸的钢轴。使用与泡沫兼容的胶水将泡沫滚轮/球粘附到轴上。或者,修改两个柔性轴联轴联轴(1/4 英寸内径),以加强轴与泡沫辊/球的耦合。
   注:请注意,许多常见的胶水可能会溶解泡沫。
   1. 对于每个轴联轴器,将轴联轴放在其平面和矩形金属板的中心(0.7 mm x 15 mm x 76 mm)。将板焊接到轴联轴器上。在板的中心钻一个 1/4 英寸的孔,以便将修改后的轴联轴安装到轴上,并将两个螺钉孔从中心侧向安装到金属板上。
   2. 将轴联轴接头安装在轴上,与泡沫滚轮/球进行连接。如果使用后者,则稍微弯曲板以适合球的曲率。将螺钉放入侧孔以固定轴上的滚子/球。
4. 钻取和敲击笼板中心的 3/8-32 螺纹,然后安装旋转编码器。将螺钉孔钻入直角电机支架的底座,以便将电机连接到柱架上。使用灵活的轴联轴将旋转编码器和电机连接到轴末端。
5. 使用电机和旋转编码器的柱子将组装的跑步机安装在铝面包板上(图2)。将电机输入连接到速度控制器,并将旋转编码器输出连接到计算机数据采集 (DAQ) 板的模拟输入。
   注:旋转角度速度由旋转编码器编码为电压,并使用名为"动物跟踪器"的自定义软件进行数字化,该软件名为"动物跟踪器",用 MATLAB 编写。
6. 将头板兼容支架安装到右角支架上。在跑步机前面的面包板上安装一个实心支架,并将装配的头板支架与右角支架安装在支架上(图2)。确保头板支架杆与车轴对齐,以便鼠标可以在跑步机上采用适当且舒适的行走位置(图 2C)。

3. 在小鼠皮质中表达 tAKAR® 传感器

1. 在子宫电穿孔
   1. 在质粒DNA(3⁄4 μg/μL)中加入0.2%的快速绿色染料的最终浓度(用于注射期间的可视化),为IUE制备DNA溶液;传感器结构包含CAG前动、传感器序列和木丘克肝炎病毒转录后反应元件[WPRE]转化增强剂)溶于/稀释在水中或Tris-EDTA中。
   2. 在 E16²⁴为 IUE 准备一只有时位怀孕的雌性小鼠(例如 C57BL/6)。用异构体麻醉小鼠(4%用于诱导,1.5%用于维护,在95%O2与5%CO 2)上,并应用皮下注射,包括5毫克/千克Meloxicam和4mg/kgBupivacaine。用手术刀和剪刀切开腹腔,小心地露出子宫角。
   3. 如前所述,在一个半球的侧心室中注射每个胚胎的1μLDNA溶液。
   4. 将正电极端脚置于皮层,并在 1 Hz 处使用 5 个 100 ms 方脉冲 (38 V),使用电波器,对皮质神经元执行常规 IUE^24。
      注: 通过改变电极端脚相对于侧心室的位置,可以针对不同的皮质区域进行电穿孔。
2. 立体注射
   1. 准备在产后第30天进行老鼠立体^手术26。如步骤3.1.2所述,麻醉小鼠,并应用皮下注射含有5毫克/千克卡洛芬的术前镇痛药。
   2. 稀释 AAV 血清型 2/1 (AAV2/1) 将 hSyn-tAKAR®-WPRE 表达到经验测定的定位子 (+1 x 10⁹+1 x¹⁰ 10 基因组/μL) 注射器过滤 (0.2 μm 纤维素醋酸酯膜) 磷酸盐缓冲盐水。
   3. 在运动皮层的以下坐标下,使用手持钻头在立体显微镜下钻一个直径为 ±500 μm 的孔:0.5 mm 前向布雷格马,1.2 mm 横向到中线。
   4. 将喷油器(例如,带定制柱塞/玻璃移液器支架的油液压操纵器)安装到电动操纵器上。将注射针置于相对于布雷格玛-兰布达平面的 15° 角处。分别沿前后轴和背向轴对角线移动,等效于 700 μm 和 200 μm 的步数。
      注:为避免对正上方目标成像场上方的组织造成损伤,AAV 粒子以相对于布雷格玛-兰布达平面的角度注入。
   5. 将注射针的尖端置于钻孔中心的 pia 处,然后缓慢执行上述对角线运动(±25 μm/s)。此过程将注射中心定位在 1.2 mm 前向布雷格马,1.2 mm 横向到中线,0.2 mm 低于 pia。
   6. 注射20 nL稀释的病毒颗粒(±10 nL/min)。等待至少 10 分钟,然后慢慢缩回注射针(±12.5 μm/s)。
   7. 完成立体注射程序,并粘合/缝合皮肤26。

4. 颅窗的安装

1. 在产后30至60天,通过IUE(第3.1节)或病毒颗粒的立体注射(第3.2节)对表达tAKAR®的小鼠进行颅状窗口的放置。对于感染病毒颗粒的小鼠,在病毒注射后至少两周实施颅窗口。安装颅窗,如前所述27,28,与以下细节。如步骤3.1.2所述,麻醉小鼠,并在4mg/kg下注射术前镇痛药0.075mg/kgBuprenex和抗炎剂Dexamethasone。
2. 取出穿孔并缩回颈部肌肉。用组织粘合剂将皮肤边缘粘附到头骨上,以避免手术后颈部肌肉暴露。
3. 使用手术刀轻轻刮擦,干燥并去除颅骨上的任何骨膜。放置成像头板(8 mm 内径)以环绕预定的成像场。使用氰丙烯酸酯胶水将头板粘到头骨上,然后是牙科丙烯酸水泥。为获得最佳附着力,请确保头板位于裸露和干燥的头骨上。胶水加速器可用于加速硬化。
4. 使用牙科钻头在预定成像场上方绘制一个直径为 5 mm 的圆(步骤 3.2.3 中指定的坐标),并露出 Dura 母体。
5. 在杜拉表面涂上一层薄薄的透明聚合物(也称为人造杜拉)以覆盖整个颅面。聚合物将保护和稳定杜拉母体。在杜拉垫上放置无菌圆形盖玻片(直径 5 mm)。用氰丙烯酸胶固定在窗边上,然后涂上牙科丙烯酸水泥。

5. 在 Vivo 双光子荧光寿命成像显微镜

1. 在颅窗安装后2周或2周以上开始2pFLIM成像(第4节)。在开始成像研究之前,通过频繁处理和擦伤小鼠来适应小鼠,以尽量减少由于压力引起的实验干扰。
2. 使用控制双光子激光的软件将双光子激发激光波长设置为 960 nm。
3. 使用 4% 的异常胶对鼠标进行麻醉。通过尾部捏合和观察呼吸速率确认适当的麻醉。也就是说,不应对尾部捏合有反应,呼吸速率应降至每秒±1次。为了尽量减少不必要的程序时间,并且麻醉只持续两到三分钟,不使用眼部润滑剂。
4. 将麻醉鼠标转移到电动跑步机(图2C),并将鼠标的表板安装到跑步机设置的头板支架上(详情见图2)。用 70% 乙醇清洁鼠标上的颅面窗盖玻片表面。
5. 将装有鼠标的电动跑步机置于 2pFLIM 目标下。在颅窗盖玻片和目标之间涂抹一滴蒸馏水。
6. 让装载的鼠标从麻醉中醒来,在跑步机和显微镜环境中适应至少10分钟。
7. 导航到外光照明下的喷射位置。在明景下记录基准特征(即血管),以帮助在后续成像过程中对同一感兴趣区域 (ROI) 进行成像。
8. 除脑组织发出的光外,消除任何入射光。关闭外光光源并关闭 2pFLIM 钻机的外壳。通过打开硬件命令电压控制来激活 2pFLIM PMT。
9. 使用 2pFLIM 采集软件 FLIMimage 获取 z-stack 2pFLIM 图像,并采用以下推荐设置,用于在醒着的小鼠中成像 tAKAR® 阳性 somata。将平均帧设置为 3 帧,扫描速度设置为 2 ms/线,图像大小设置为 128 x 128 像素,将视野设置为 90*100 μm。根据准备和硬件配置调整映像设置。
10. 在 FLIMview 中检查获取的图像(内部开发的自定义软件;请参阅第 6 节)。在步骤 5.9 之后调整成像设置,以优化光子计数并最大限度地减少光漂白。
    注:根据特定刺激产生的信号振幅,在 ROI 中,一个可行的集成光子计数,用于对体内 tAKAR® 阳性体进行终生成像,其值为 ±1,000~10,000 光子。
    1. 必要时,使用视野减少、扫描速度降低、激光功率增加和平均帧数增加,以增加集成光子计数并减少寿命估计误差。同时,请务必使用最小的基本激光功率、帧平均和扫描速度,以尽量减少光漂白。
11. 使用步骤 5.10 中确定的设置重复 z 堆栈采集,以常规时间间隔(例如,每 30-60 秒)进行映像。在零跑步机速度下获取基线 2pFLIM 图像至少 15 分钟。
12. 将跑步机转速设置为 ±15 cm/s 15 分钟,同时获取 2pFLIM 图像。关闭跑步机旋转后,继续成像 20 分钟,以评估强制运动停止后 PKA 活动的持续时间。

6. 分析 2pFLIM 图像

1. 在 FLIMview 中打开获取的图像,并在 FLIMview 中设置以下参数。
   注:参数详细信息在讨论中描述。
   1. 单击 FLIMview 中的单个光子计数 (SPC) 最小和最大范围字段。输入适当的最小值和最大 SPC 范围值,通常分别介于 1.2⁄2 和 10*12 ns 之间。
   2. 单击 FLIMview 中的 t₀值字段并输入 t₀值(通常为 ±2 ns)。单击 FLIMview 中的生存期亮度最小阈值值字段,并将所需的阈值输入 5±30 光子。
2. 单击新的组按钮 (N) 并指定实验组名称。这将生成一个组合来自每个添加的 FLIM 图像的数据的组。
3. 单击 FLIMview 的ROI 控制模块中的ROI按钮,并围绕 tAKAR® 阳性索马绘制 ROI。通过在 FLIMview 中的 z 堆栈控制滑块中移动z-stack 控制滑块的下限和上限,减小 z 堆栈范围,以尽量减少来自其他 z 深度背景光子的信号污染。
4. 单击+按钮将 FLIM 图像添加到组中(步骤 6.2)。单击Calc按钮以计算 ROI 和生存期估计误差 (*) 的平均寿命(LT,也称为平均光子发射时间 [MPET])。
5. 打开慢性 2pFLIM 成像系列中的下一个文件。重复步骤 6.4。请务必调整 ROI 和 z 堆栈范围的位置,以测量相同的 tAKAR® 阳性索马随时间推移,因为随着时间的推移,组织可能会漂移。
6. 在组控制模块的下拉菜单中选择增量MPET/MPET_0。 单击"基线+"字段并输入索引(例如,对于步骤 6.3 中创建的组中的前五个图像,索引为 1 2 3 4 5)。这将定义用于计算基准生存期 (LT₀) 的图像。
7. 单击绘图以生成包含 tAKAR® 的 FLIM 响应 ([LT/LT₀) 的图形。"通过相应的基准生存期 (LT 0) 对单个 ROI 的生存期(+LT) 进行规范化更改,可以比较不同 ROI 在运动期间的 PKA 活动。

FRET-FLIM 传感器允许可视化许多不同的信号通路,包括神经调节中涉及的 cAMP/PKA 通路。当前协议利用最近开发的 takaR® 传感器与 2pFLIM 相结合,在头部固定行为小鼠中可视化 PKA 活动。大多数现有的双光子显微镜可以通过添加三到四个组件来升级,如图 1所示(另请参阅第 1 节)。为了在2pFLIM采集的图像中可视化FRET,对每像素收集的光子计时的直方图图进行了平均寿命的量化(图3A,B)。使用伪彩色图像可视化平均生存期,其中高(冷色)和低(暖色)均值分别表示低和高 PKA 活动,因为 PKA 激活会导致寿命缩短。必须注意正确设置 SPC 范围;此范围应在激光脉冲间隔内设置(例如,脉冲速率为 80 MHz 的 12.5 ns),并尽可能减少硬件边缘伪影(另请参阅第 6 节和讨论)。通过组合给定 ROI 内所有像素的 LT(图 3C,D),计算了 ROI 中的 PKA 活动。在头固定清醒小鼠的基础寿命范围在1.3至1.8 ns之间(图3E)。在头部固定的醒小鼠的运动皮层中对tAKAR®进行成像,允许在基底和强制运动期间用细胞分辨率实时定量PKA活动(图4)。实验可以重复几天和几个月。强制运动触发PKA活动在小鼠运动皮层17表面层的神经元群中。这种PKA活性依赖于神经调节通过激活β-肾上腺素和D1受体17。

图 1:2pFLIM 系统的架构图。2pFLIM 可通过添加黄色突出显示的硬件组件在传统的双光子显微镜上实现:光子定时计数模块、低噪声快速光电倍增管 (PMT)、光电二极管(仅当激光没有激光定时输出信令),以及可选的信号分路器。这个数字已由马等人17日修改。请点击此处查看此图的较大版本。

图2:定制电动跑步机的设计。(A) 跑步机设计的图式,从正面(左上)、侧面(右上)和顶部视图(左下)。跑步机(泡沫球)轴连接到旋转编码器和电机,它们共同安装在一个坚固的铝面包板上的两个柱子上。右角支架上的头板兼容支架固定在实心柱上,并位于跑步机上方。原理图不能缩放。正面 (B) 和侧面 (C) 查看跑步机的照片.在C面板中显示了鼠标在跑步机上的正确定位。 请点击此处查看此图的较大版本。

图3:2pFLIM数据的量化。(A) 每个像素呈伪色的 FLIM 图像,表示该像素中所有光子的平均寿命 (LT)相对于激光时向值。(B) 单个像素内的光子到达时间(面板A中的紫色正方形)绘制在直方图(左面板)中。集成边界设置为确定单个光子计数范围(SPC、灰色)。在 SPC 范围内,光子计时的积分除以光子的总数,然后减去 t 0(1.65 ns,虚线),从而得出 1.74 ns 的平均寿命(LT、虚线和虚线之间的距离)。 整个视场的平均寿命(面板A中的浅蓝色正方形)的量化涉及在所有像素(右面板)中收集的光子计时的集成,从而得出 1.7 ns 的平均寿命。内展在半日志比例中显示相同的数据。(C和D)每个感兴趣区域的平均寿命量化 (ROI)。(C) 2pFLIM 图像的代表示例。在运动皮层的第2/3层中,围绕两个索马塔绘制了两个ROI。(D) 光子时序分布集成在每个 ROI 中的所有像素(左面板)。细胞ROIs被颜色编码(如面板C所示)红色,单元格1;蓝色,单元格 2。标准化光子计数允许比较两个ROIs之间的光子时序分布(右面板,平均寿命;单元格1,1.33 ns;单元格2,1.73 ns)。内展在半日志比例中显示相同的数据。(E) 运动皮层表面层中 254 个图像细胞的平均基底寿命分布图。L1细胞(n = 186细胞/11动物,左面板),驻留在100μm以下的皮亚,在AAV2/1-hSyn-tAKAR®-WPRE的立体注射后表示tAKAR®,和L2/3金字塔细胞(n = 68细胞/4个动物,右面板),驻留至少150μm以下的pia,在 CAG-tAKAR®-WPRE DNA构造的 IUE 后表示 tAKAR®。请点击此处查看此图的较大版本。

图4:tAKAR®跟踪运动皮层中由运动引起的PKA活动。(A) 运动皮层中三个 L1 细胞的代表性强度(左面板)和寿命(中面板和右面板)图像。细胞ROIs的颜色编码:橙色,单元格1;蓝色,单元格 2;黄色,单元格 3。(B) 在基底条件下以单元 1(上面板)测量的光子时序分布(橙色痕迹,在中间面板α中测量)和强制运动(loco.,浅橙色轨迹,右面板A中测量)。标准化光子计数允许直接比较光子时序分布(下面板,平均寿命:基底,1.72 ns;运动,1.42 ns)。内展在半日志比例中显示相同的数据。(C) = 寿命/寿命0 (+LT/LT0) 相应单元的轨迹(上面板,见面板A),具有强制运动速度(下面板)。请点击此处查看此图的较大版本。

作者没有什么可透露的。