由于NADH和fura-2类似物的激发波长与发射波长存在光谱重叠,因此在活细胞中对[Ca2+]进行定量测定时,这两种化学物质的信号干扰不可避免。为此,开发了一种新型的在线校正NADH信号干扰以测定[Ca2+]的方法。
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由于NADH和fura-2类似物的激发波长与发射波长存在光谱重叠,因此在活细胞中对[Ca2+]进行定量测定时,这两种化学物质的信号干扰不可避免。为此,开发了一种新型的在线校正NADH信号干扰以测定[Ca2+]的方法。
为了定量测量[Ca2+],通常使用作为比率型荧光探针的fura-2类似物。然而,由于内源性荧光干扰(主要来自烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)),染料在活细胞中的应用本质上受到限制。更具体而言,当使用fura-2类似物定量测定线粒体[Ca2+]时,这是一个主要障碍,因为大部分NADH存在于线粒体中。如果荧光染料浓度相同,则特定激发强度应产生相同的发射强度。因此,两种不同激发波长下的发射强度比值应保持恒定。基于这一原理,开发了一种新型在线校正NADH信号干扰以测量[Ca2+]的方法,从而可以获得NADH和fura-2的真实信号强度。此外,还建立了一个新的方程,利用等吸收点激发或在400 nm激发来计算[Ca2+]。利用该方法,成功地测量了线粒体[Ca2+]的变化。另外,通过采用不同的激发和发射波长组合,可同时测量多个参数,包括NADH、[Ca2+]以及pH或线粒体膜电位(Ψm)。线粒体[Ca2+]与Ψm或pH分别使用fura-2-FF和四甲基罗丹明乙酯(TMRE)或羧基-硒萘罗丹明荧光素-1(carboxy-SNARF-1)进行测量。
细胞内 Ca2+ 的重要作用广为人知1。定量测定 [Ca2+] 对于理解细胞生理功能过程至关重要。Fura-2 类似物非常有用,因为它们可在紫外光范围(<400 nm)被激发,并且可采用比率法进行定量测量。因此,其他生理参数(如 pH、膜电位等)也可通过其他荧光染料同时测定。据报道,线粒体 Ca2+ 浓度([Ca2+]m)范围为 0.08−20 μM2,3,4,5。在 Fura-2 类似物中,Fura-2-FF 适用于测量该范围内的 [Ca2+]。然而,活细胞因其代谢过程含有 NADH/NADPH,而 NADH 由于与 Fura-2 类似物的激发和发射光谱重叠,会产生信号干扰。这种干扰极大地限制了 Fura-2 类似物的应用。特别是当该类似物用于测量线粒体 [Ca2+] 时,这一干扰成为最大的障碍,因为线粒体中含有最丰富的 NADH。情况进一步复杂化的是,NADH 的变化与线粒体膜电位(Ψm)相关,而 Ψm 的变化又会影响 [C....
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所有实验方案均经当地机构动物护理与使用委员会批准。
1. 溶液配制
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由于校正引起的线粒体 Ca2+ 变化10
图 4 显示了校正前后 [Ca2+]m 的变化。结果清楚地表明 [Ca2+]m 发生了显著改变。在无胞质 Ca2+([Ca2+]c)条件下,线粒体静息钙浓度为 1.03 ± 0.13 µM(均值 ± 标准误,n = 32),而在 1-µM [Ca2+]c 条件下,[Ca2+]m 的最大值达到 29.6 ± 1.61 µM(均值 ± 标准误,n = 33)(图 5)。
同时测量 NADH、[Ca2+] 和 Ψm10
带正电荷的 TMRE 可以依据膜电位进行分布。可.......
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已成功开发出一种干扰校正方法,用于准确测量NADH和fura-2类似物的信号。信号的精确测量是实现准确校正的关键。然而,荧光装置本身的固有特性会产生与NADH或fura-2无关的背景信号。即使最高质量的带通滤光片也只能阻隔至多10−8的非目标波长光。然而,单个细胞产生的荧光信号非常微弱,经过带通滤光片后残留的激发光反射仍足够强,会污染真实的荧光信号。因此,必须对背景信号进行仔细校正。
Fura-2 在用于测量线粒体 Ca2+ 时存在负载问题。首先,很难将染料特异性地导入线粒体,而对其他细胞器的非特异性负载可能导致错误结果。线粒体内的 Ca2+ 浓度通常高于细胞质,因此使用具有较高 Kd 值的 fura-2-FF 可避免细胞质 Ca2+ 变化带来的干扰。另一个可能造成干扰的细胞器是肌浆网(SR)。然而,由于分布容积的差异(大鼠心室肌细胞中 SR 占 3.5%,线粒体占 34%−36%)13,
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作者声明无利益冲突。
本工作部分由韩国国家研究基金会(NRF)通过教育部长资助的基础科学研究中心项目(2018R1A6A3A01011832)以及科学技术信息通信部支持 & 未来规划(NRF-2016M3C1A6936606)以及贸易、工业 & 能源 (10068076)
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