RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
zh_CN
Menu
Menu
Menu
Menu
A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Research Article
Kyla A. Britson1,2, Aaron D. Black2,3, Kathryn R. Wagner1,2,3,4, Thomas E. Lloyd1,2,4
1Graduate Program in Cellular and Molecular Medicine,Johns Hopkins University School of Medicine, 2Department of Neurology,Johns Hopkins University School of Medicine, 3Kennedy Krieger Institute, 4Department of Neuroscience,Johns Hopkins University School of Medicine
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
在传统的实验室模型系统中,复杂的人类疾病对建模可能具有挑战性。在这里,我们描述了一种通过将人类骨骼肌活检移植到免疫缺陷小鼠中来模拟人类肌肉疾病的外科方法。
在动物研究中观察到的治疗效果往往不能在临床试验中重新概括。虽然这个问题是多方面的,但造成这种失败的原因之一是实验室模型使用不足。在传统实验室生物体中模拟复杂的人类疾病是具有挑战性的,但是这个问题可以通过研究人类异种移植来规避。我们在这里描述的手术方法允许创建人类骨骼肌异种移植物,可用于模拟肌肉疾病和进行临床前治疗测试。根据机构审查委员会(IRB)批准的协议,从患者身上获取骨骼肌标本,然后移植到NOD-Rag1空IL2rénull (NRG)宿主小鼠中。这些小鼠是移植研究的理想宿主,因为它们无法制造成熟的淋巴细胞,因此无法发展细胞介导和体液适应性免疫反应。宿主小鼠用肌胶麻醉,小鼠前体和外展性长肌被去除。然后,将一块人类肌肉放在空的骨骼隔间中,并缝合到直龙肌的近端和远端肌腱。异种移植的肌肉由小鼠宿主自发血管化并内化,从而产生强健再生的人类肌肉,可以作为临床前研究的模型。
据报道,所有进行临床试验的药物开发项目中,只有13.8%是成功的,并导致了1批准的疗法。虽然这个成功率高于先前报道的10.4%,但仍有重大改进的余地。提高临床试验成功率的一个方法是改进临床前研究中使用的实验室模型。美国食品和药物管理局(FDA)要求动物研究在第一阶段临床试验之前显示治疗效果和评估毒性。然而,动物研究和临床试验3之间的治疗结果往往有限。此外,临床前动物研究的需要可能是缺乏公认动物模型的疾病的治疗发展的不可逾越的障碍,而罕见或零星疾病往往就是这种情况。
模拟人类疾病的一种方法是将人体组织移植到免疫缺陷小鼠体内,以产生异种移植物。异种移植模型有三个关键优点:首先,它们可以概括人类疾病中存在的复杂遗传和表观遗传异常,这些异常可能永远无法在其他动物模型中重现。其次,如果患者样本可用,异种移植可用于模拟罕见或零星疾病。第三,异种移植物在一个完整的体内系统中对疾病进行建模。由于这些原因,我们假设治疗效果导致异种移植模型更有可能转化为在患者的试验。人类肿瘤异种移植已经成功地用于开发常见癌症的治疗方法,包括多发性骨髓瘤,以及针对个别患者的个性化治疗4、5、6、 7.
最近,异种移植物已经被用来开发人类肌肉疾病的模型8。在这个模型中,人类肌肉活检标本被移植到免疫缺陷NRG小鼠的后肢,形成异种移植物。移植的人类肌纤维死亡,但异种移植物中的人类肌肉干细胞随后膨胀并分化成新的人类肌纤维,重新填充移植的人类基础层。因此,这些异种移植物中再生的肌纤维完全是人,由小鼠宿主自发地重新血管化并内化。重要的是,移植到小鼠体内的肌肉萎缩症(FSHD)患者肌肉组织重述了人类疾病的主要特征,即DUX4转录因子8的表达。FSHD是由DUX4的过度表达引起的,在正常的肌肉组织中,DUX4在表观遗传上是沉默的9,10。在FSHD异种移植模型中,使用DUX4特异性形态诺治疗已被证明能够成功地抑制DUX4的表达和功能,并且可能是FSHD患者11的潜在治疗选择。这些结果表明,人类肌肉异种移植是模拟人类肌肉疾病和测试小鼠潜在疗法的新方法。在这里,我们详细介绍了在免疫缺陷小鼠中创建人类骨骼肌异种移植物的手术方法。
约翰霍普金斯大学机构审查委员会(IRB)批准了所有人类研究标本的使用,以保护参与者的权利和福利。所有动物实验都根据国家卫生研究院(NIH)《实验室动物护理和使用指南》获得约翰霍普金斯大学机构动物护理和使用委员会(IACUC)的批准。雄性NOD-Rag1nullIL2r®(NRG)宿主小鼠(8-12周大)用于进行异种移植实验。这些小鼠被安置在通风架中,并带有HEPA过滤、回火和加湿的空气以及反渗透过滤的超氯水。老鼠提供水和辐照抗生素饮食(材料表)和设施提供14小时到10小时的黑暗,由中央计时器控制。
1. 设备准备
2. 外科准备
3. 异种移植手术
4. 异种移植系列
注:异种移植通常在手术后4至6个月之间收集。然而,在手术后12个月,已经进行了收集。
5. 异种移植免疫组织化学

图2:异种移植手术。(A) 头发从手术部位被移除.(B) 在前部 (TA) 上切口。TA 和扩展位长肌 (EDL) 的远端肌腱用箭头标记。黑色虚线表示步骤 3.3 中将切割的表皮的位置。(C) TA的远端肌腱被切断,肌肉被拉到膝盖上。(D) EDL 的肌腱被切开,EDL 被拉到膝盖上。这暴露了用箭头标记的直龙 (PL) 的近肌腱。虚线指示用剪刀切割的位置以移除 EDL(绿色)和 PL(蓝色)。(E) 删除 EDL 和 TA。(F) 缝合通过 PL. (G) 的近端肌腱放置, 异种移植物被放置在空的牙室中, 并使用两手手术方结缝合到近端 PL 肌腱.(H) 缝合通过PL的远端肌腱放置,用箭头标记,另一个两手手术方结用于缝合异种移植到远端肌腱。(I) 异种移植物被完全移植并缝合到 PL (J) 皮肤用手术胶水封闭.请点击此处查看此图的较大版本。

图3:4个月异种移植收集。(A) 头发从手术部位被移除.缝合在皮肤下可见。(B) 覆盖异种移植的皮肤被去除。然后,异种移植被抓住与虹膜钳在远端缝合,轻轻地向上拉。从脚踝开始,手术刀用于沿着头骨切开并释放异种移植物。箭头显示沿 tibia 的切口的开始。(C) 通过将胃肠肌肉拉到一侧,一条微弱的白线将长毛(PL)肌肉和胃肠(由箭头显示)分开。使用手术刀沿这条线切割,将 PL 与其他腿部肌肉分开。(D) 异种移植的右侧,和PL现在从腿部的其他肌肉中释放,并准备切除。虚线指示用手术剪刀切割的地方,开始去除异种移植物和PL(E)切割后,在远端缝合线下,偏转异种移植向膝盖。虚线指示用手术剪刀切割的位置,以去除异种移植物和 PL 从头骨隔间。(F) 带异种移植物和 PL 的空牙室已成功移除。请点击此处查看此图的较大版本。
正如张元凡等人所证明的,这种手术方案是一种直接的方法来产生人类骨骼肌异种移植物8。再生异种移植物自发地内化,并表现出功能收缩性。此外,从FSHD患者身上移植的肌肉异构体重述了在FSHD患者8中观察到的基因表达变化。
根据我们的经验,从对照患者标本中执行的8种异种移植中,大约7种将显示出成功的肌肉移植。成功的异种移植显示人类肌纤维的强健再生,如人类特异性抗体所识别的(图4)。在一定比例的肌纤维内,阳性胚胎肌苷染色表明再生过程仍在进行中。相反,手术技术差或标本不足可能导致肌肉纤维再生不良(图4)。
从被诊断为特发性炎症肌病(IIM)的患者身上进行的异种移植显示,在4个月和6个月的收集中,再生的人类肌纤维数量适中,胚胎肌苷染色在6个月时持续存在(图5A)。炎症细胞存在于异种移植中,如H&E染色(图5A所示),并已通过CD3、CD68和其他免疫标记(未显示数据)进行确认。异种移植在鼠标内是稳定的,并且已执行长达 12 个月的收集。个体肌纤维大小在4个月和6个月的IIM异种移植物和原始的IIM患者活检(图5B)之间是可比的。在异种移植物中观察到的横截面面积 (CSA) 大于 3500 μm2的稀有纤维,但在 IIM 活检中未观察到,这表明异种移植物中的一些肌纤维可以再生到与健康肌纤维大小相当的 CSA(图 5B)).

图1:手术设置。
A)立体显微镜的标准方向,枫树E呼吸电路,和异种移植手术的手术工具。B)在生物安全柜中放置感应室。

图 4:预期正负结果。
术后4个月收集的异种移植物,显示再生良好或较差,并沾染了人类特异性拉林A/C(1:50)和人体特异性光谱(1:20)和胚胎肌苷(1:10)(材料表)。由白色虚线框指示的区域显示为较高的放大倍数插入。比例尺:200 μm。请点击此处查看此图的较大版本。

图5:代表性异种移植再生。
A) 从诊断出患有特发性炎症肌病 (IIM) 的患者身上进行的异种移植物(带虚线),染色有血酸素和 Eosin (H&E),人类特异性拉明 A/C 和人体特异性光谱,显示肌纤维形成在NRG小鼠在4个月和6个月的时间点。胚胎肌苷染色表明,再生仍在两个时间点。比例尺:200 μm.B)直方图描绘了4个月和6个月异种移植物的肌纤维横截面(CSA),以及一名被诊断为特发性炎症肌病(IIM)的患者和一名健康对照患者的人体活检。请点击此处查看此图的较大版本。
提交人宣称,他们没有相互竞争的经济利益。
在传统的实验室模型系统中,复杂的人类疾病对建模可能具有挑战性。在这里,我们描述了一种通过将人类骨骼肌活检移植到免疫缺陷小鼠中来模拟人类肌肉疾病的外科方法。
这项工作得到了肌炎协会和彼得·巴克基金会的支持。我们要感谢张元凡博士分享她在异种移植外科技术方面的专长和培训。
| 100 mm x 15 mm 培养皿 | Fisher Scientific | FB0875712 | |
| 2-甲基丁烷 | Fisher | O3551-4 | |
| 20 mm x 30 mm 微型盖玻片 | VWR | 48393-151 | |
| 动物体重秤 | Kent Scientific | SCL- 1015 | |
| 抗生素 - 抗真菌溶液 | Corning, Cellgro | 30-004-CI | |
| AutoClip 系统 | FST | 12020-00 | |
| 卡斯特罗维耶霍持针 | 器FST | 12565-14 | |
| 雏鸡胚胎提取物 | 精确 | CE650TL | |
| CM1860 紫外线低温恒温器 | Leica Biosystems | CM1860UV | |
| Coplin 染色罐 | Thermo Scientific | 19-4 | |
| 解剖针 | Fisher Scientific | S13976 | |
| 干冰 - 颗粒 | Fisher Scientific | NC9584462 | |
| 胚胎肌球蛋白抗体 | DSHB | F1.652 | 推荐浓度 1:10 |
| 乙醇 | Fisher Scientific | 459836 | |
| 胎牛血清 | GE Healthcare Life Sciences | SH30071.01 | |
| Fiber-Lite MI-150 | Dolan-Jenner | Mi-150 | |
| 镊子 | F.S.T | 11295-20 | |
| 山羊抗小鼠 IgG1,Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A-21121 | 推荐浓度 1:500 |
| 山羊抗小鼠 IgG2b,AlexaFluor 594 | Invitrogen | A-21145 | 推荐浓度 1:500 |
| 黄蓍胶 | Sigma | G1128 | |
| 火腿 F-10 培养基 | 康宁 | 10-070-CV | |
| 组织丙烯酸蓝 局部皮肤粘附 | 组织密封 | TS1050044FP | |
| 人特异性核纤层蛋白 A/C 抗体 | Abcam | ab40567 | 推荐浓度 1:50-1:100 |
| 人特异性血影蛋白抗体 | Leica Biosystems | NCLSPEC1 | 推荐浓度 1:20-1:100 |
| 诱导室 | VetEquip | 941444 | |
| 鸢尾镊子 | FST | 11066-07 | |
| 2018 年全球辐照(Uniprim 4100 ppm) | Envigo | TD.06596 | 抗生素啮齿动物饮食保护再次呼吸道感染 |
| 异氟醚 | MWI 兽医供应 | 502017 | |
| Kimwipes | Kimberly-Clark | 34155 | 手术湿巾 |
| Mapleson E 呼吸回路 | VetEquip | 921412 | |
| 甲醇 | Fisher Scientific | A412 | |
| 移动麻醉机 | VetEquip | 901805 | |
| 小鼠对小鼠基础套件 | Vector Laboratories | BMK-2202 | 小鼠 IgG 封闭试剂 |
| 指甲油 | 电子显微镜 Sciences | 72180 | |
| NAIR 脱毛剂 化妆水/油 | Fisher Scientific | NC0132811 | |
| NOD-Rag1null IL2rg null (NRG) 小鼠 | 杰克逊实验室 | 007799 2 | 至 3 个月大 |
| OCT 化合物 | Fisher Scientific | 23-730-571 | |
| 氧气 | 空气 | OX USPEA | |
| PBS(磷酸盐缓冲盐水)缓冲液 | Fisher Scientific | 4870500 | |
| 聚维酮碘制备溶液 | Dynarex | 1415 | |
| ProLong™Gold 抗淬灭封片剂 | Fisher Scientific | P10144(无 DAPI);P36935(含 DAPI) | |
| Puralube 眼药膏 | Dechra | 17033-211-38 | |
| Rimadyl(卡洛芬)注射剂 | Patterson 兽医 | 10000319 | 外科镇痛剂,以 5 mg/kg 的剂量皮下给药 |
| 手术刀刀片 - #11 | FST | 10011-00 | |
| 手术刀手柄 - #3 | FST | 10003-12 | |
| 立体声显微镜 | Accu-scope | 3075 | |
| Superfrost Plus 显微镜载玻片 | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
| 缝合线,合成,非吸收,30 英寸长,CV-11 针 | 头Covidien | VP-706-X | |
| 1ml 注射器(26 号,3/8 英寸针头) | BD Biosciences 329412 | ||
| 修剪器 | Kent Scientific | CL9990-KIT | |
| Vannas 弹簧剪刀,8.0 毫米刀刃 | F.S.T | 15009-08 | |
| VaporGaurd 活性炭过滤器 | VetEquip | 931401 | |
| 绕线夹,9 毫米 | FST | 12022-09 |