延时结构照明显微镜线粒体核素的特定标签

Summary

该协议描述了线粒体核物与商业上可用的DNA凝胶染色的具体标记，通过超高分辨率结构化照明显微镜（SR-SIM）获取活标记细胞的延时序列，以及自动跟踪核素运动。

Abstract

线粒体核物是由涂有蛋白质的线粒体DNA分子形成的紧凑颗粒。线粒体DNA编码tRNA、rRNA和几种必需的线粒体多肽。线粒体核素在经历裂变/融合和其他形态变化的动态线粒体网络中分裂和分布。高分辨率活荧光显微镜是一种描述核素位置和运动的简单技术。对于此技术，核素通常通过其蛋白质成分的荧光标记进行标记，即转录因子 a （TFAM）。然而，此策略需要过度表达荧光蛋白标记构造，这可能导致伪影（为 TFAM 报告），并且在许多情况下不可行。有机DNA结合染料没有这些缺点。然而，它们总是显示核和线粒体DNA的染色，因此缺乏线粒体核物的特异性。通过考虑这种染料的物理化学性质，我们选择了核酸凝胶染色（SYBR Gold），并在活细胞中实现了线粒体核物的优待标记。染料的特性，特别是与DNA结合时的高亮度，允许使用超高分辨率结构化照明图像的时间序列对线粒体核物运动进行后续定量。

Introduction

循环16.5 kbp DNA分子构成线粒体的遗传物质，编码22个tRNA、2个rRNA和13个线粒体氧化磷酸化复合物所需的13个多肽。线粒体DNA结合线粒体转录因子a（TFAM）和其他几个蛋白质形成线粒体核素^1,1，2，3，4。^2,3,4线粒体核素在线粒体网络⁵的成分之间移动和重新分配^，66在其形态重塑、裂变或融合过程中根据细胞周期相、应力和其他因素（在Pernas等⁷中回顾）。此外，线粒体核物的运动，与系统性红斑狼疮病⁸有关，并可能在其他疾病中发挥作用。荧光显微镜是细胞器活细胞研究的一种简单技术，但该技术的分辨率为>200 nm，比线粒体核物（+100 nm^{9、10、11、12）10,11,12}的大小大。⁹这种限制被所谓的"超分辨率"技术所规避，如刺激发射消耗（STED）和单分子定位显微镜（SMLM）13，14。^13,14到目前为止，线粒体核素和其他DNA通过直接随机光学重建显微镜^{（dSTORM）15}在活细胞中成像。STED在活细胞¹⁶中观察到与mtDNA相关的位置的细子线粒体结构。然而，这些超分辨率技术需要高照明强度，这会导致光毒性作用活细胞^17。因此，分辨率超过衍射极限的线粒体核物的延时成像具有挑战性。为了解决这个问题，我们使用超高分辨率结构化照明显微镜（SR-SIM）18。¹⁸SIM 需要比 STED 和 SMLM¹⁹低得多的照明功率剂量。此外，与STED和SMLM技术相比，SIM允许直接的多色三维（3D）成像，它不需要氟波或成像缓冲组合¹⁹的特定光物理特性。

在活细胞中标记线粒体核物的传统策略是线粒体核素蛋白的荧光标记，如TFAM^20。然而，在许多情况下，这种策略并不合适。此外，荧光蛋白标记TFAM的过度表达会产生严重的伪影^21。用有机染料标记DNA比荧光蛋白（FP）为基础的策略有优势。有机染料不含与FP标记相关的约束:它们可用于任何类型的细胞或组织，可在实验的任何时间点应用。线粒体核物的活细胞成像报告有几种DNA结合染料:DAPI 22、SYBR Green²²23、Vybrant²³DyeCycle²⁴和皮科格林15、25、26。^15,25,26大多数DNA结合染料用于核素标签的一个重大缺点是，它们染色细胞内的所有DNA。将染料仅针对线粒体DNA是非常可取的。为此，必须仔细选择具有适当物理化学特性的染料。具有非局部正电荷的脂质染料，如红胺123，已知在活线粒体中积累，从而保持其负膜电位。此外，用于线粒体核物特定标记的理想染料应结合具有高亲和力的DNA，并在DNA结合上发出明亮的荧光。考虑到这些要求，某些氰化物是有希望的（例如，皮科格林），但核DNA被这些染料大量染色，同时与线粒体DNA15，25，26。^15,25,26本协议描述了使用另一种氰化物染料SYBR Gold （SG）在活细胞中跟踪线粒体核物的具体标签，以及跟踪时间推移超分辨率 SIM 视频中的核素。此外，SG染色活细胞可以通过任何类型的倒置荧光显微镜（共聚焦、旋转盘、外皮等）进行成像，适合活细胞，并配备488nm光源。

Protocol

注:这里提到的所有细胞系都培养在高葡萄糖Dulbecco的改良鹰的介质（DMEM），辅以10%的胎儿牛血清（FBS），谷氨酰胺，青霉素/链霉素，和丙酮。在标签和成像当天使用的所有介质和补充剂均以加热至37°C的培养箱中加热至5%CO_2。所有细胞培养工作，包括标签，都在不育条件下进行层流罩。

1. 活细胞标签

1. 在标签程序的前一天，在35毫米的培养皿中培养4 x 10⁵ HeLa细胞，在35毫米的培养皿中，#1.5玻璃底。可以使用多井室滑轨，但体积应根据井的体积按比例调整。稀释细胞悬浮液，在35毫米培养皿中产生大约50，000个细胞/mL和2 mL的细胞悬浮液种子。
2. 准备以下SYBR黄金（SG）商业股票解决方案稀释:1:5，000。在酚类无红培养介质中制备线粒度追踪器深红色（远红色污渍）或Mitotracker CMXRos红（红色污渍）（材料表;商业库存稀释1:2，000）。准备与 SG 相同的皮果格林集稀释。
   注:步骤 1.2 中描述的解决方案是 2x 标签解决方案。尽可能保护所有含有荧光染料的溶液免受光的照射。
3. 用 2 mL PBS 清洗一次粘附细胞。在35毫米培养皿中加入1ml酚类无红培养基。对于 8 井室滑道，使用等于总井容量 1/2 的体积（例如，如果总井容量为 250 μL，则添加 125 μL）。
4. 加入步骤 1.2 至 35 mm Petri 盘中准备的 2x 贴标溶液的 1 mL。对于 8 井室幻灯片，请使用等于总井容量 1/2 的体积。在5%CO2以下的37°C下孵育细胞30分钟₂。
   注:不要用SG标记溶液孵育细胞超过1小时，因为更长的孵育将导致核DNA标记。
5. 小心地吸气含有荧光染料的介质，用PBS清洗细胞一次。
6. 加入无酚无红细胞培养基，将细胞保持在CO₂培养箱中，在37°C下保持黑暗，直到成像。
7. 在装有孵化单元的SR-SIM显微镜上成像活细胞（见下文）。

2. SR-SIM 图像采集

1. 在显微镜舞台上安装舞台顶培养箱。设定所需的温度和CO₂浓度（例如，哺乳动物细胞为37°C和5%），在开始图像采集之前至少保持1小时的温暖。
2. 打开 SR-SIM 显微镜的所有部件（包括激光），使其预热至少 1 小时。
3. 选择显微镜制造商为 SR-SIM 推荐的高放大倍率高数值孔径 （NA） 浸入目标（例如，100x 1.46 NA 油）。
4. 在孵化显微镜阶段安装带有标记细胞的室式幻灯片或 35 mm 盘（从步骤 1.6 起）。
5. 找到样品上感兴趣的区域，最好用眼部。要达到最佳的 SR-SIM 成像质量，请选择与玻璃相连的电池。
6. 使用后镀锡高端电子倍增电荷耦合装置 （EM-CCD） 摄像机获取 SR-SIM 图像。
7. 使用图像采集软件，为所使用的相机（例如 300）设置推荐的高 EM 增益。
8. 在获取核素跟踪的延时序列之前，获取同一视场的双色 SR-SIM 图像:一个线粒体染色通道，另一个用于 SG 通道。设置适用于所使用的线粒体染色的第一个颜色通道（例如，对于远红色的线粒体污渍，将激发设置为 633 nm 或更长，以及 650 nm 长通发射滤镜）。对于 SG 信号，将激励设置为 488 nm 和 500-550 nm 带通发射滤光片。
9. 使用该软件，设置488纳米和远红色染色线的最低激光功率。
   注:典型的设置是 1% 激光输出功率由同心光可调滤波器 （AOTF） 调节。
10. 如果 SIM 显微镜仅按顺序获取通道（单摄像机设置），则关闭远红色的污渍检测通道。
11. 通过取消在软件中的Z 堆栈框进行勾选，从而关闭 Z 堆栈采集，从而设置单个焦点平面的采集。
12. 设置尽可能短的 EM-CCD 摄像机曝光时间。
13. 设置网格的三个旋转，而不是五个旋转。
14. 要提高帧速率，在软件的"采集"选项卡中，将摄像机设置为仅从摄像机传感器的中心区域读取数据，而不是"全芯片"。
    注:例如，从读取 1，000 x 1，000 像素完整传感器的区域切换到仅读取 256 x 256 像素，可将摄像机曝光时间从 50 毫秒缩短到 13.4 毫秒，总帧时间从 1.8 s 减少到 1.2 s。如果只读取摄像机传感器的中心部分，则通常用于 SR-SIM 的 63 倍或 100 倍目标的视场将非常小。更短的曝光时间将降低图像的信号噪声比。
15. 优化激光功率和摄像机曝光时间:以多个激光功率值（例如，0.5%、1.5%、1.5%、2%）获取标记电池的 SR-SIM 二维 （2D） 图像和几次曝光时间（例如，13.4 ms，25 ms，50 ms）。
16. 处理原始 SIM 数据集（请参阅步骤 3.1）。
17. 选择激光功率和相机曝光时间，以产生线粒体（即核素）中具有亮点的 SIM 图像，而 SIM 处理产生的伪影很少或根本没有。检查线粒体以外的区域（例如，488 nm 固态激光器的 1% 功率和 EM-CCD 摄像机的 25 毫秒曝光）。
18. 使用步骤 2.15_2.17 中优化的设置开始获取延时序列。

3. 数据处理和分析

1. 使用适当软件的结构化照明模块（材料表）处理原始 SIM 数据集:选择 SIM 处理参数的自动复选框。对于多个文件的自动处理，请使用批处理工具，取消选择"批量使用当前"，单击"运行批处理"并选择多个文件进行 SIM 处理。
2. 使用 Imaris 文件转换器软件（即与 Imaris 软件版本对应的版本）将 SIM 处理的时间序列数据集转换为ims格式。
3. 在具有"线系（或轨道）模块许可证的软件（版本 8.4.1 或更高版本）中打开转换后的文件。
4. 单击"添加新点"图标，启动"点"创建向导。将启动用于创建的向导。
5. 选择向导的"创建"选项卡。
6. 在向导的第一步中，单击"跟踪点"（随时间而长），然后继续向导的第二步。
7. 将估计 XY 直径设置为 0.1-0.15 μm，单击背景减法并继续第三步。
8. 通过拖动直方图中的垂直线来调整滤波器"质量"中的阈值，以便检测到大多数核素为"点"，而未检测到伪影（即检测到的斑点被标记为叠加在图像上的球）。检查每个帧上是否如此，并在必要时重新调整阈值。继续执行向导的第四步，然后转到向导的第五步。
9. 选择自回归运动算法。将最大距离设置为 0.5 μm。将最大间隙大小设置为 0。
10. 查看时间序列中的每个帧，并检查是否绘制了任何假轨道，以及轨道之间是否引入了任何间隙（向导构建的当前设置的轨道会立即标记为覆盖在图像上的线条）。如有必要，调整"最大距离"。继续向导的第六步。选择"跟踪持续时间"筛选器并设置 3~5 s 的阈值。
11. 如果当前检测到的点或轨道不是最佳的，请使用所需的导航按钮（向导窗口底部）返回向导的上述步骤，以微调任何参数以创建点或轨道。
12. 当微调的参数允许软件检测所有斑点并正确构建轨道时，单击向导中的绿色箭头导航按钮以确认轨道的创建。
13. 通过单击"统计信息"图标窗口提取轨道的统计信息。选择所需的统计信息参数（"统计下的详细值"和"平均值"选项卡），并通过单击Floppy Drive图标进行量化和可视化，将值导出为 csv 文件。
    注:最大轨道速度、平均轨道速度、轨道长度和轨道位移是重要参数的示例。
14. 如果需要显示或发布图像数据集，则使用快照或动画工具创建表示延时序列的快照和/或视频文件，并选择性地覆盖轨道。

4. 共聚焦图像采集

1. 在显微镜舞台上安装舞台顶培养箱，设定所需的温度和CO₂浓度（即哺乳动物细胞为37°C和5%），在开始图像采集之前至少保持1小时的温暖。
2. 打开共聚焦激光扫描显微镜的所有组件（包括激光），并让他们预热至少 1 小时。
3. 根据奈奎斯特标准选择所需的中到高放大倍率目标和空间采样。
4. 对于 SG 通道，将激发设置为 488 nm，检测范围为 500-550 nm。对于线粒体染色通道，红色染料的发射设置为 561 nm 和 570-630 nm，或 633 nm 激励和 >650 nm 发射，用于远红色染料。
5. 设置尽可能低的激光功率（通常为 1% 或更少），允许获取 PMT 探测器增益为 700 mV 的信号。
6. 获取细胞的双色共聚焦图像，在"SG通道"中检测到线粒体核素，在"红色"或"远红"通道中检测到线粒体。

Results

使用 SG 对活细胞标签的定性
首先，SG在各种稀释剂中与染料孵育时在细胞中分布，其特征是共聚焦显微镜。在高浓度SG或皮果格林孵育后，两种染料大多标有核，并在细胞质中出现松痛染色（图1），类似于另一种带正电荷的氰化物（即皮微^）15的已公布数据。然而，在1:10，000稀释时，在SG孵育时，核中出现了微弱的染色，而在细胞质中，我们观察到一个亮点模式（图1）。另一方面，与皮果绿染料稀释1:10，000的孵育产生了大部分核染色。SG信号比同浓度的皮果格林信号亮得多。数据显示，与其他类似的DNA结合染料相比，SG更适合成像线粒体DNA。

为了确认光点在线粒体中局部化，我们同时用SG和远红色的线粒体染色染色活细胞。后者是一种带正电荷的细胞渗透有机染料，在活细...

Discussion

该协议有几个关键成分:为了优先标记线粒体DNA，孵育过程中的DNA结合染料浓度应保持在非常低（例如，一个典型的商业库存的1:10，000稀释），孵育时间应为30分钟。孵育时间不应超过1小时，应使用SYBR金染料;其他DNA结合染料不够亮，在低浓度标记时产生强烈的信号。

我们协议的局限性是，在渗透步骤中，染料从线粒体核物中被冲走。因此，所述程序不适用于传统的免疫荧光方案。在这种情况下，固定细胞中的核素可以通过其他技术（如针对DNA或线粒体转录因子（TFAM）的抗体）有效地标记。

与荧光蛋白标签（ea）标签（Nor-lt;1 h）起，线粒体核物直接标记具有荧光蛋白标签的优点:任何类型的细胞都可以在 <1 h 内标记，而不会对荧光蛋白标记构造的瞬态或稳定表达进行暂时性或其他限制。此外，在目前的协议中，传统的荧光蛋白标记TFAM被报告引起伪影。此外，只有当线粒体膜电位完好无损时，SG才能有效地染色核素。这可以防止图像采集与生物无关的"病"和死细胞，这是无法避免的基于FP的染色。最后，以前公布的基于DNA结合染料的协议没有实现线粒体DN...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
Elyra PS1	卡尔蔡司		多模态超分辨率显微镜，包含超分辨率结构照明显微镜 （SR-SIM） 模块高
葡萄糖 DMEM	GIBCO/ThermoFisher	31966021
同比迪 35 毫米培养皿，玻璃底	Ibidi Gmbh	81158
同比迪 8 孔微载玻片，玻璃底	Ibidi Gmbh	80827
Imaris 8.4.1	Bitplane/牛津仪器		处理和可视化软件包
iXon 885	Andor Technologies		带背照式传感器的EMCCD相机
LSM880 Airyscan	Carl Zeiss		激光扫描共聚焦显微镜 带阵列探测器
Mitotracker CMXRos Red	ThermoFischer	M7512	红色活细胞线粒体染色
Mitotracker Deep Red FM	ThermoFischer	M22426	远红活细胞线粒体染色
picoGreen	ThermoFischer	P7581	细胞通透性 DNA 染色
Plan Apochromat 100x/1.46 油物镜	Carl Zeiss
SYBR Gold	ThermoFischer	S11494	细胞通透性 DNA 染色剂
Zen Black 2012 软件	Carl Zeiss		图像采集和处理软件