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方法文章

制备用于培养人脂肪源性干细胞的活化富血小板血浆

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DOI:

10.3791/60480

2020年5月4日

本文内容

摘要

本报告中,我们介绍了一种制备活化富血小板血浆(PRP)的双次离心法。采用自体凝血酶激活后,培养人脂肪源性间充质干细胞(hASCs)。结果表明,活化的PRP可促进hASCs的增殖。

摘要

通过离心全血制备的活化富血小板血浆(PRP)在多种培养细胞中表现出促进增殖的作用,提示其在再生医学中具有潜在应用价值。本文采用双次离心法从全血中制备PRP,并使用自体凝血酶进一步活化PRP。检测了活化PRP中的血小板计数,并评估其对人脂肪来源间充质干细胞(hASCs)的促增殖作用。结果显示,PRP中的血小板计数较全血血浆高出11.5倍。与1% PRP共孵育后,hASCs的增殖显著增强。该方法可重复地制备高浓度血小板的PRP,且由此法所得PRP可显著促进hASCs的增殖。

引言

通过离心全血可制备活化的富血小板血浆(PRP),其血小板浓度显著高于基础水平1。自体PRP已广泛应用于外科治疗,包括伤口愈合2、骨损伤修复3以及整形手术4,5。PRP中血小板活化后,其内部的α颗粒会释放多种生长因子,如血小板源性生长因子(PDGF)、表皮生长因子(EGF)、类胰岛素生长因子(IGFs)、转化生长因子β(TGF-β)、血管内皮生长因子(VEGF)等1,6,7。这些生长因子在细胞增殖8、迁移9和分化9过程中发挥重要作用。

迄今为止,已有若干研究报道了富血小板血浆(PRP)对多种细胞的促增殖作用10,11,12....

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方案

本研究经关西医科大学伦理审查委员会批准,符合1975年《赫尔辛基宣言》的伦理准则。所有样本均在获得捐献者知情同意后采集和使用。

1. 准备

  1. 在获得知情同意后,从健康成年献血者中采集血液。本实验中,血液来自四名年龄在28至38岁之间的男性献血者。
    1. 建议献血者在采血前6小时饮用500 mL水。
      注:健康成人血红蛋白(Hb)、红细胞(RBC)计数和血小板(PL)浓度的参考范围由Vajpayee19描述。为符合献血条件,献血者的血液检测结果需处于这些参考范围内。

2. 血液采集

  1. 采血过程中,让献血者保持坐姿。
  2. 佩戴手套。在献血者握紧拳头的同时,于其上臂绑扎止血带。
  3. 确定合适静脉后,用70%酒精对皮肤消毒两次,然后插入针头。
  4. 使用21 G注射器采集血液。采血过程中不得松开止血带。
    1. 使用8.5 mL采血管收集血液。观察管内血液流动情况,一旦血流减慢,立即更换新采血管。
    2. 采集足量血液以制备PRP。共采集4管抗凝血液,总体积为34 mL。采集后将采血管轻轻颠倒10次,使血液与抗凝剂充分混匀。
    3. 使用10 mL无抗凝剂的血清采血管(见

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结果

PRP 中血小板和 PDGF-BB 的富集浓度
PRP 中血小板和 PDGF-BB 的浓度分别增加了 11.5 倍和 25.9 倍,与全血浆中的浓度相当。然而,PRP 中 EGF 的浓度未发生变化,IGF 仅为全血浆的 70%(表 1)。实验采用双离心法重复进行了四次。

PRP 刺激促进 hASCs 增殖
经 0.2% PRP 处理后,细胞增殖增加(P < 0.05,与对照组相比),而 1% PRP 处理的促进作用更显著(P < 0.05,与对照组相比;且 P < 0.05,与 0.2% PRP 组相比)。图 1A 显示,PRP 以剂量依赖的方式刺激 hASCs 的增殖。PRP 刺激增强 hASCs 增殖的效果通过相差显微镜得到证实(图 1B)。数据以均值 ± 标准差(SD)表示。采用 Mann–Whitney U 检验评估各组间.......

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讨论

PRP 激活后,会释放多种生长因子,如 PDGF、EGF、IGF、TGF-β 和 VEGF1,6,7 "激活"伤口中的细胞和组织,促进伤口愈合20,21。在整形重建手术中,已证实被激活的细胞可促进愈合并改善外观效果22,23。此外,在美容与重建领域也可直接使用人脂肪来源的干细胞,而无需 PRP 刺激24,25,26。PRP 还可在三维胶原支架培养体系中与胰岛素联合使用,促进人脂肪来源干细胞的软骨向和成骨向分化

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披露

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
20 mL 注射器,Terumo 锁扣式注射器Terumo,日本东京SS-20LZP
50 mL 离心管,聚丙烯锥形管Corning,美国纽约352070
全自动血液分析系统Sysmex Corp.,日本东京XE-2100
采血针,SafeTouch PSV 带鲁尔接头采血针,21 G × 3/4”Nipro,日本大阪32-384
采血管,ACD 溶液 A 采血管,8.5 mLBD Vacutainer,美国新泽西364606
采血管,血清采血管/单支采血管,10 mLBD Vacutainer,美国新泽西366430
氯化钙,1 mEq/mL大冢制药工厂,日本德岛3215400A1061
套管针,BS 无斜面针,18 G (1.2 mm) × 75 mmBS Medical,日本东京BS-81007非卖品
细胞计数试剂盒-8Dojindo 分子技术公司,日本熊本CK04
离心机Kokusan,日本东京H-19F
离心机Eppendorf,德国汉堡5415R
EnSpire 2300 多功能酶标仪PerkinElmer, Inc.,美国马萨诸塞州沃尔瑟姆
滤器单元Merck Millipore,爱尔兰科克郡SLGP033RS
人 EGF Quantikine ELISA 试剂盒R&D Systems,美国明尼苏达州明尼阿波利斯DEG00
人 IGF-I Quantikine ELISA 试剂盒R&D Systems,美国明尼苏达州明尼阿波利斯DG100
人 PDGF-BB Quantikine ELISA 试剂盒R&D Systems,美国明尼苏达州明尼阿波利斯DBB00
移液器吸头,ART 1000 加长屏障吸头Thermo Scientific,美国马萨诸塞州2079-05-HR
移液器,Nichipet EXII 100–1000 μLNichiryo,日本埼玉00-NPX2-1000
无粉腈类检查手套(Sterling Nitrile Power-Free Exam Gloves)Kimberly-Clark50707
山善消毒用酒精山善制药,日本大阪A7L07

参考文献

  1. Eppley, B. L., Woodell, J. E., Higgins, J. Platelet quantification and growth factor analysis from platelet-rich plasma: implications for wound healing. Plastic and Reconstructive Surgery. 114 (6), 1502-1508 (2004).
  2. Salcido, R. S.

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