我们描述并详细说明了经筛板自主系统的使用。该系统利用人体眼球后段,独立调节眼内压(眼内)和视神经周围颅内压(颅内压),从而产生一种模拟青光眼性视神经病变特征的经筛板压力梯度。
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我们描述并详细说明了经筛板自主系统的使用。该系统利用人体眼球后段,独立调节眼内压(眼内)和视神经周围颅内压(颅内压),从而产生一种模拟青光眼性视神经病变特征的经筛板压力梯度。
目前尚缺乏一种能够利用颅内压(ICP)和眼内压(IOP)在体外靶向疾病病因的新型临床前人类模型,以识别与青光眼发病机制相关的多种致病范式。 既往已成功建立并应用体外人眼前段灌注器官培养模型,作为发现青光眼发病机制和测试治疗方法的有效技术。在体外人类器官系统上开展的临床前药物筛选和研究,其结果更易于向临床研究转化。本文详细描述了一种新型体外人眼跨层压模型——跨层自主系统(translaminar autonomous system, TAS)的构建与操作方法。TAS模型可利用人供体后段组织独立调控ICP和IOP,从而以临床前方式研究疾病发病机制,并有助于减少眼科研究中活体动物的使用。与体外实验模型相比,视神经乳头(ONH)组织的结构、复杂性和完整性在体外TAS模型中亦可得以维持。
最近的调查数据显示,全球约有2.85亿人患有视力障碍,其中包括3900万盲人1。2010年,世界卫生组织记录指出,在列出的九种主要致盲原因中,有三种发生于眼球后段1。后段眼病涉及视网膜、脉络膜和视神经2。视网膜和视神经是大脑中枢神经系统(CNS)的延伸部分。视网膜神经节细胞(RGC)的轴突因需穿过视神经乳头(ONH)形成视神经而易受损伤3。由于存在一种称为筛板(lamina cribrosa, LC)的三维结缔组织梁网结构,ONH仍是RGC 轴突最脆弱的部位4。在青光眼中,ONH是RGC轴突最早受到损害的部位5,6,7,并且已有研究在高眼压和青光眼模型中探讨了ONH内的基因表达变化8,9,10。RGC轴突在ONH处的易损性与眼内腔(即眼内压,IOP)和外部视神经周围蛛网膜下腔(即颅内压,ICP)之间的压力差有关11。LC区域分隔这两个腔隙,维持正常的压力梯度,其中IOP通常为10–21 mmHg,ICP为5–15 mmHg12。两个腔室之间通过筛板产生的压力差称为跨筛板压力梯度(translaminar pressure gradient, TLPG)13。青光眼的主要危险因素之一是眼内压升高14。
眼内压(IOP)升高会增加筛板区域内部及跨区域的应变6,15,16。在人类和动物模型中的实验观察表明,视神经乳头(ONH)是轴突损伤的初始部位17,18。IOP相关应力和应变导致ONH处发生青光眼性损伤的生物力学范式,也影响着青光眼的病理生理过程19,20,21。尽管在人类中,压力诱导的变化会机械性地损伤视网膜神经节细胞(RGC)轴突22,但缺乏筛板内胶原板的啮齿类动物也可能发生青光眼7,23。此外,眼内压升高仍是原发性开角型青光眼患者最显著的危险因素,而正常眼压性青光眼患者即使没有眼内压升高,也会发展为青光眼性视神经病变。同时,也存在一部分眼压升高患者并未出现视神经损伤。已有研究提示,脑脊液压力(CSFp)可能在青光眼发病机制中发挥作用。证据表明,与正常个体相比,青光眼患者的颅内压(ICP)降低至约5 mmHg,从而导致跨筛板压力增加,并在疾病发展中起关键作用24,25。先前在犬类模型中已证实,通过调控IOP和CSFp的变化,可引起视盘显著移位26。在猪眼模型中升高CSFp也显示出筛板(LC)区域及筛后神经组织内的主应变增加。RGCs和LC区域所受应变增加会导致轴突运输受阻以及RGCs的丢失27。RGCs的进行性退变与神经营养支持丧失28,29、炎症过程/免疫调节的激活30,31以及凋亡效应因子的参与29,32,33,34,35相关。此外,轴突损伤(图3)会对RGCs产生有害影响,引发再生失败36,37,38,39。尽管IOP的影响已被广泛研究,但针对异常跨筛板压力变化的研究仍十分有限。目前大多数青光眼治疗策略集中于稳定IOP。然而,尽管降低IOP可延缓疾病进展,却无法逆转视野缺损,也不能防止RGCs的完全丧失。深入理解青光眼中与压力相关的神经退行性变化,对于预防RGC死亡至关重要。
现有证据表明,由于创伤性或神经退行性视觉障碍患者体内发生的各种机械性、生物学或生理学变化所导致的跨层压力波动,可能引起显著的视力丧失。目前尚不存在真正可用于研究体外人眼视神经乳头(ONH)内青光眼生物力学损伤的临床前人眼后段模型。在眼科学中,对眼部后段的观察与治疗仍面临巨大挑战27。眼部后段存在多种物理和生物学屏障,包括高清除率、血-视网膜屏障以及潜在的免疫反应,限制了靶向治疗的实现40。大多数新型药物靶点的有效性和安全性测试依赖于体外细胞模型和体内动物模型来完成41。眼部解剖结构复杂,体外研究无法准确模拟组织模型系统中存在的解剖和生理屏障。尽管药代动力学研究仍需依赖动物模型,但不同动物物种之间的人眼后段生理特性可能存在差异,包括视网膜的细胞结构、脉管系统以及视神经乳头(ONH)的结构41,42。
使用活体动物需要严格的详细伦理规范、高昂的资金投入以及有效的可重复性43。近年来, 已陆续出台多项关于实验研究中动物伦理使用的其他指南44,45,46。一种替代动物实验的方法是使用离体人眼模型,以研究疾病发病机制以及潜在药物对视神经乳头损伤的保护作用。人类死后组织是研究人类疾病范式的重要资源,尤其是在人类神经退行性疾病的研究中,因为在 动物模型中开发出的潜在药物必须能够转化为人类应用47。离体人供体组织已被广泛用于人类疾病的研究47,48,49,而人眼前段灌注器官培养系统此前已提供了一种独特的离体模型,用于研究眼内压升高的病理生理机制50,51,52。
为了研究与眼内压(IOP)和颅内压(ICP)相关的人眼跨层压力,我们成功设计并开发了一种双腔跨层自主系统(TAS),该系统可利用人供体眼球的后段结构独立调节IOP和ICP。这是首个用于研究跨层压力以及探索跨层压力梯度(TLPG)对视神经乳头(ONH)生物力学影响的离体人眼模型。
这种离体人眼视神经乳头模型可用于发现和分类因眼内压(IOP)或颅内压(ICP)长期升高所导致的细胞和功能改变。在本报告中,我们详细描述了分离、建立和监测人眼视神经乳头后段模型的逐步操作流程。该方案将帮助其他研究人员有效重复这一新型的离体加压人眼后段模型,以研究生物力学在疾病发生机制中的作用。
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眼睛样本的获取遵循《赫尔辛基宣言》中关于涉及人体组织研究的规定。
注意:来自信誉良好的眼库(例如,Lions Eye Institute for Transplant, Research, Tampa FL)的眼球在死亡后6–12小时内获取,供体血清经检测排除乙型肝炎、丙型肝炎以及人类免疫缺陷病毒1型和2型感染。收到眼球后,须在24小时内进行解剖并建立TAS模型。排除标准包括任何眼部病理改变;但不因年龄、种族或性别排除眼球。为确保收到的视网膜组织具有活性,从供体组织中分离视网膜外植体,并在体外培养7天和14天(补充图1)。这些视网膜组织还被解离并在培养中成功生长出健康的视网膜神经节细胞(RGCs),培养7天后可见RGC标志物——具有多种剪接功能的RNA结合蛋白(RBPMS)阳性染色,以及神经丝中神经丝轻链(NEFL)阳性染色(补充图2)。 。
1. 仪器设备与耗材的准备及灭菌
2. 灌注培养基的制备
3. 经层自主系统(TAS)设置
4. 人全眼球的制备
注意:如果收到的是完整眼球,请按照以下步骤将眼前段与眼后段分离。如果眼球已沿中线切开,则从步骤 4.4 开始操作。
5. 数据记录系统设置
注意:数据记录系统由一个8通道电源、多通道桥式放大器、静水压力传感器以及配备数据采集软件的计算机组成(参见材料表)。以下介绍如何设置和校准该系统。
6. 数据检索与分析
7. 后段组织的免疫组织化学与苏木精-伊红染色
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经巩膜自主系统的构建与设计
经巩膜压力差可能是多种疾病(包括青光眼)发病机制中的一个关键潜在因素。本研究所描述模型的应用范围包括但不限于青光眼(眼内压升高,可能伴随颅内压降低)、创伤性脑损伤(颅内压升高)以及长期暴露于微重力相关视觉障碍(颅内压升高、眼内压升高)等疾病的研究。为了帮助揭示以人眼经巩膜压力为靶点的分子发病机制,我们设计、构建并验证了该经巩膜自主系统(TAS)模型。我们这一新型的离体人眼模型为独立研究颅内压(ICP)和眼内压(IOP)相关致病性改变提供了独特的临床前研究平台。为应对人类临床前研究需求,该模型提供了一种离体研究经巩膜压力变化所致发病机制的范式。模型的密封式设计以实心前视图和透明视图展示(图1A、1B),并配有详细示意图以显示模型中所有灌注流入和流出端口(图1C)。实际3D打印模型中包含人眼后段的彩色透明视图如图所示(图1D、1E
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人类尸检组织是研究人类神经退行性疾病的一种尤为宝贵的资源,因为在 动物模型中开发的潜在药物必须能够转化为人类应用47。眼内压(IOP)升高的影响已得到充分证实,但关于视神经乳头(ONH)跨层压力异常变化的研究却极为有限。尽管目前已存在多种动物模型以及针对人类ONH的有限元模型,但仍缺乏可用于研究跨层压力变化的离体人类模型41,54,55,56,57。目前迫切需要建立一种新的临床前人类模型,能够在离体条件下利用IOP和颅内压(ICP)靶向疾病病因,并 识别与青光眼发病机制相关的多种致病范式。理解ONH处与压力相关的病理变化对于防止视网膜神经节细胞(RGC)死亡至关重要。在TAS模型中联合使用IOP、ICP和跨层压力梯度(TLPG),是一种利用人类眼球...
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手稿作者无潜在利益冲突需要披露。
本项目资金来自 Colleen M. McDowell 博士的自主支配经费。本研究部分得到了防盲研究基金会(Research to Prevent Blindness, Inc.)向威斯康星大学麦迪逊分校眼科与视觉科学系提供的无限制资助支持。我们感谢 Abbot F. Clark 博士和 Weiming Mao 博士在灌注器官培养模型方面提供的技术支持。我们感谢狮子会移植与研究眼科研究所(Lions Eye Institute for Transplant and Research,佛罗里达州坦帕市)提供人眼供体眼球。
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