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方法文章

并行高通量单分子动力学分析用于位点特异性DNA切割

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DOI:

10.3791/61236

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2020年5月6日

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本文内容

摘要

本文介绍了一种在单分子水平上高通量检测DNA位点特异性切割的实验方法。本方案以限制性内切酶NdeI为例演示了该技术的操作流程。该方法可轻松改造,用于研究任何导致DNA位点特异性切割的生物学过程。

摘要

位点特异性DNA切割(SSDC)是许多细胞过程中的关键步骤,也是基因编辑中的重要环节。本研究描述了一种动力学检测方法,能够同时测量多个单个DNA分子中的SSDC。在微流控流动通道中制备了以磁珠锚定的底物DNA,每个DNA分子仅包含一个拷贝的目标序列。通过外部磁铁对顺磁性磁珠施加微弱拉力。利用宽视野、低倍物镜进行暗场成像,可观测多达1,000个独立DNA分子的完整性。注入限制性内切酶NdeI以启动切割反应。通过视频显微镜观察与DNA相连的磁珠在物镜焦平面中向上移动并消失的帧数,记录每一次DNA切割发生的精确时刻。逐帧统计磁珠数量以量化反应进程,并通过指数拟合确定反应速率。该方法可在单次实验中获得关于单分子SSDC反应的定量且具有统计学意义的数据。

引言

位点特异性DNA切割(SSDC)是许多基因组操作中的关键步骤。例如,细菌的限制-修饰(RM)1系统和CRISPR2系统通过识别并切割特定序列的外源DNA,保护细胞免受噬菌体和质粒的侵袭。在II型限制-修饰系统中,限制性内切酶(REs)通过蛋白质-核酸相互作用识别短至4–8个碱基对(bp)的序列3。CRISPR相关内切酶(如Cas9)则通过靶位点与结合在内切酶上的crRNA进行杂交,从而结合到特定位置4。位点特异性双链断裂(DSBs)的形成也是许多DNA重组事件的第一步5。例如,V(D)J重组产生的抗原结合区多样性依赖于对特定靶位点的识别和切割6。一些转座子也被证实能够靶向特定的DNA序列7。毫不奇怪,参与这些过程的许多位点特异性核酸酶(如Cas9)已成为基因编辑技术的核心组分8。此外,人们还人工设计了新型的位点特异性内切酶(如锌指核酸酶9和TALENs10),用于基因组编辑。

已有多种方法被用于测量核酸位....

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方案

1. 制备流动池

  1. 清洗盖玻片
    1. 将盖玻片放入染色缸中,先用乙醇(EtOH)超声清洗,再用1 M KOH超声清洗,每次各30分钟。为避免KOH在EtOH中析出,每次清洗之间需用ddH2O充分冲洗。
    2. 重复EtOH和KOH清洗步骤各一次,共完成四次清洗(两次EtOH和两次KOH)。将清洗后的盖玻片保存在染色缸中的ddH2O中。
  2. 使用洁净的剃刀切割加样管和出口管(长度均为8 cm),并插入洁净载玻片上的孔中。进样端使用PE-20管,出样端使用PE-60管。用环氧树脂固定5分钟,以确保管路稳固,并剪去多余部分。
    注:载玻片尺寸为2'' × 3'' × 1 mm。孔成对钻取,间距为15 mm,每对孔构成单个通道的两端。内径较小的管路用作进样端,以减少上游死体积,从而缩短混合时间(图1)。
  3. 将预先切割好通道图案的双面胶带对齐并贴附在载玻片的孔位上方,用塑料镊子压平,确保密封良好。
    注:本实验所用双面胶带厚度为120 µm,通道宽度为2 mm,长度为15 mm。通道使用刀片打印机切割(材料表)。单个盖玻片上最多可容纳四个通道。参见 图1 查看流动池的示意图。
  4. 撕去背衬后,....

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结果

利用该技术,在两种不同浓度的镁离子(2 mM 和 4 mM)条件下,测定了 NdeI 的单链切割(SSDC)速率随蛋白浓度(0.25–4.00 U/mL)的变化。每种实验条件至少重复两次,每次实验包含数百至 1,000 个锚定的 DNA 分子。图 2 描述了实验设计。图 3 展示了数据采集与分析细节的示例。图 4 描述了在两种镁离子浓度下,切割速率随蛋白浓度的变化关系。可以观察到,在足够低的蛋白浓度下,切割速率与蛋白浓度成正比,且不受镁离子浓度影响;而在足够高的蛋白浓度下,切割速率依赖于镁离子浓度,但与蛋白浓度无关。

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步骤描述

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讨论

该方案可用于测量任何SSDC系统的动力学过程,前提是实验过程中能够观察到链的分离。通过观察连接珠的脱离来检测切割事件,从而标记链分离的瞬间。所有先前的步骤均发生在切割检测之前;因此,仅记录总的反应时间。

通过将抗体蛋白非特异性吸附到洁净的玻璃表面,对流动池盖玻片进行功能化处理。玻璃表面清洁不充分可能影响抗体的结合。在拴系过程中,微珠密度应足够低,以避免微珠之间发生相互作用。附着位点的表面密度可通过功能化过程中抗体的浓度进行调控。微珠的总数取决于视场的大小。本实验中,数百至1,000个拴系微珠即可获得良好的统计结果,并避免微珠间的相互作用。在注入微珠过程中,通过实时视频监测表面拴系情况。当估计的微珠数量达到500至1,000个时,停止微珠注入。

能够准确测量的最快切割速率受限于流动池的混合时间。层流流动池中的混合时间受多种因素影响。反应物向表面的扩散是一个关键步骤,因此混合时间取决于反应物的扩散系数。在入口管路中会发生显著的剪切,该管路将样品从样品储液池输送至流动通道,这会增加确保反应通道表面充分混合所需的时间。研究发现,通过减.......

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披露

作者声明无利益冲突。

致谢

本工作由美国国家科学基金会资助项目 MCB-1715317 支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
5分钟环氧树脂Devcon14250
抗地高辛素FAB片段Roche Diagnostics11214667001
相机及软件JenoptikGRYPHAX SUBRA
数据分析软件Vernier Inc.LP
双面胶带Grace BiolabsSA-S-1L
杜尔贝科氏磷酸盐缓冲液Corning21-031-CV
95%乙醇VWR89370-082
正向引物:地高辛素-CCAACTTAATCGCCTTGCIntegrated DNA Technologiesn/a
图像分析软件美国国立卫生研究院ImageJ
倒置显微镜NikonTE2000
刻刀打印机Silhouette
M13mp18 DNANew England BiolabsN4040S
MyOne链霉亲和素磁珠Thermo Fisher Scientific65601
NdeI酶New England BiolabsR0111S
PCR纯化试剂盒Qiagen28104
Pluronic F-127AnatraceP305
聚乙烯管PE-20BD Intramedic427406
聚乙烯管PE-60BD Intramedic427416
Q5预混液New England BiolabsM0492S
稀土磁铁 0.5" 外径 0.25" 内径National ImportsNSN0814
稀土磁铁 0.75" 外径 0.5" 内径National ImportsNSN0615
反向引物:生物素-TGACCATTAGATACATTTCGCIntegrated DNA Technologiesn/a
注射泵Kent ScientificGenie Plus
β-酪蛋白(来自牛乳)Sigma-AldrichC6905

参考文献

  1. Tock, M. R., Dryden, D. T. The biology of restriction and anti-restriction. Current Opinion in Microbiology. 8 (4), 466-472 (2005).
  2. Garneau, J. E., et al. The CRISPR/Cas bacterial immune system cleaves bacteriophage and plasmid DNA. Nature. 468

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