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方法文章

新生兔盲法经气管插管

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DOI:

10.3791/61874

2021年2月26日

本文内容

摘要

我们介绍了一种在经食管导管插入胃管后对新生兔进行气管插管的技术。

摘要

新生兔是研究多种病理状况和操作的有用动物模型。由于兔的解剖学特征,其气道管理较为复杂,而在新生兔中这一问题更为突出。在各种高级气道管理方法中,气管插管相较于气管切开术更具微创性,且由于缺乏适用于如此小体型的声门上通气设备,声门上气道管理的可行性较低。由于在此体型动物中直接观察声门极为困难,本文介绍的盲插技术可作为一种有效的替代方法,尤其适用于需要长时间麻醉的实验。采用该方法,我们实现了90%的盲插成功率。

引言

兔子呼吸系统的特殊解剖结构使得气管插管操作变得复杂。其口腔深而狭窄,张口范围有限,且舌头相对较大,即使使用喉镜也难以直接观察到喉部1,2。此外,新生兔的体型仅为成年兔的1/10至1/20,对其进行插管更具挑战性。除了这些解剖学特点外,兔子在气道操作过程中还容易发生继发性喉痉挛。

文献中已描述了多种插管技术,如喉镜气管插管、盲插插管、耳镜插管、逆行插管、内镜插管、气管切开术以及声门上装置通气3,4,5,6,7,8,9。这些技术在成年兔中均已成功实施;然而,关于新生兔高级气道管理的文献报道较少10。有一项研究描述了在此年龄段动物中实施气管切开术以评估呼吸力学和肺容积,但该方法具有侵入性且不可逆11。本气管插管方法已被证实是在新生兔中进行气道管理的一种有效且低成本的方法。

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方案

以下插管操作程序已获得巴塞罗那大学机构动物护理与使用委员会(CEEA 180/19)批准

1. 实验准备

  1. 准备以下材料:2 mm 直径的聚氯乙烯(PVC)气管插管、6 法制(Fr)聚氨酯喂养管、扁平宽头解剖镊和无菌润滑剂(图 1)。
  2. 在插管和手术过程中,保持无菌条件。

2. 麻醉

  1. 用5 mg/kg的赛拉嗪和25 mg/kg的氯胺酮混合后经肌肉注射,对动物进行麻醉 股外侧肌 股四头肌。α-2 肾上腺素能受体激动剂(如右美托咪定)也可替代赛拉嗪使用。
  2. 等待药物起效,需 3-5 分钟。
  3. 以相同剂量重复给药,直至达到深麻醉状态(足底、眼睑和角膜反射消失)。理想情况下,家兔在气管插管前应维持自主呼吸。

3. 气管插管

  1. 将兔子置于37 °C的保温毯上,使其呈仰卧位,头部处于过伸状态。尽量将头部摆正至正中位置。在颈部背侧放置一个由无菌纱布卷成的4厘米高的卷垫,有助于实现至少45°的伸展角度(图2)。
  2. 使用扁平且宽头的解剖镊子将口腔打开至约1厘米宽。应选用钝头且末端较宽的镊子,以避免造成口腔损伤。
  3. 测量口腔至胃部区域(第一肋)的距离。将一根已润滑的6 French(Fr)聚氨酯胃管插入至预先测量好的标记处(图3-4)。
  4. 将饲管移向左侧,并用胶带固定于手术区域。
  5. 将直径为2 mm、涂有无菌润滑剂的PVC气管插管插入至3 cm标记处。
    1. 若推进过程中遇到阻力,应完全撤出导管并重新尝试,直至顺利滑入。多次插管尝试会显著增加喉部和会厌损伤的风险。将导管用胶带固定于手术区域(图5-6)。
  6. 将气管插管连接至呼吸机,设置如下:潮气量 — 10 mL/kg;呼吸频率:40 次/分钟;吸入氧浓度(FiO2)100%,呼气末正压(PEEP)6。
  7. 通过检测呼出气体中的CO2(ETCO2)、直接观察胸廓扩张以及导管内壁出现雾气来确认导管位置正确。通过脉搏血氧仪监测及肺部听诊也有助于判断(图7)。
  8. 实验结束后,采用标准化的安乐死程序,即静脉注射戊巴比妥钠120–240 mg/kg。重复给药直至呼吸停止、反射消失和心搏停止。
    注:在手术实验中,动物在通气过程中保持存活,最终实施安乐死。

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结果

在实验室中,该技术由具有新西兰兔实验经验以及儿科气道管理专业知识的医务人员操作。该操作已由一名研究人员在10只动物上实施,总体成功率为90%。此前,另一名研究人员曾实践优化动物体位及气管导管固定长度。所有动物均未发生食管插管。仅有一例(10%)因动物体型极小而失败(表1)。在掌握盲插技术后,即使操作者此前未接受过兔气道管理培训,大多数情况下也可在首次尝试即获成功。对于体重等于或大于120 g的动物,我们在一至两次尝试内实现了100%的插管成功率。

无菌区域上的手术器械和导管管路;用于医疗操作和插管。
图 1

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讨论

由于兔子易于获取、繁殖率高且代际周期短,同时便于操作,因此在动物实验中被广泛使用2。在我们中心,我们采用5至7日龄的新西兰兔(Oryctolagus cuniculus)作为新生儿模型,研究体外循环手术对发育中大脑的神经学影响。因此,我们需要实施深度麻醉,并进行长达一小时的气管插管操作。

在成年兔中,已有多种气道管理技术的描述,通常是在外科手术背景下进行的。当我们尝试将这些技术外推至幼兔时,出现了若干问题。幼兔体重在110至210克之间,最大张口范围仅为1厘米。这些特征使得直接观察喉部变得困难,且难以找到尺寸足够小的内镜器械。文献中描述的另一种方法是将耳镜置入口腔,并以其作为引导插入PVC导管7。在新生兔中,舌体的存在以及口腔尺寸较小使得声门的直接可视化尤为困难。此外,目前尚无适用于新生儿的合适尺寸的声门上通气装置。

由于上述情况,对非常小的兔子进行气道保护主要有两种基本方法:气管切开术和盲插管术。气管切开术是一种...

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

本工作获得了 Instituto de Salud Carlos III [PFIS2017-0224] 的资助、Sociedad Española de Cuidados Intensivos Pediátricos 提供的"Beca Ruza" 奖学金以及范德堡医学学者项目的支持。

资助方未参与数据的收集、分析或解释。

我们感谢伊莎贝尔·萨拉斯在动物实验室中提供的帮助,同时感谢圣琼德迪医院视听技术团队的卡洛斯·法布雷加先生和赫玛·费尔南德斯-阿森西奥女士在视频录制与制作过程中提供的技术支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
2 mm 直径聚氯乙烯 (PVC) 气管插管Vygon520.20
6 法式聚氨酯喂养管Vygon310.06
麻醉剂(氯胺酮和赛拉嗪)
多功能监护仪 Intellivue MP5Phillips
普通宽头解剖镊LensforVisionAK005
无菌润滑剂 (Silkospray)Rush
呼吸机 Servo 900cMaquet

参考文献

  1. Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).
  2. Graham, J. Common procedures in rabbits. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).
  3. Fick, T. E., Schalm, S. W. A simple technique for endotracheal intubation in rabbits. Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).
  4. Conlon, K. C., et al. Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits. Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).
  5. Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).
  6. Falcão, S. C., et al. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).
  7. Miura, H., et al. Endotracheal intubation in rabbits. The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).
  8. Thompson, K. L., et al. Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter. Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).
  9. Comolli, J., et al. Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy. Veterinary Record. , 1-8 (2020).
  10. Hua, S., et al. Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits. Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).
  11. Kitchen, M. J., et al. The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits. Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).
  12. Boon, M. S., et al. Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model. The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).
  13. Dion, G. R., et al. Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models. The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).
  14. Phaneuf, L. R., et al. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).

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盲法插管新生兔气道管理PVC气管插管胃管解剖镊赛拉嗪-氯胺酮俯卧位成功率