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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
为了深入分析呼吸道同步病毒 (RSV) RNA 合成,我们报告了利用伴生磷蛋白 (P) 共同表达无RNA核蛋白 (N0)的协议,用于病毒特定核胶囊 (NCs) 的后续 体外 组装。
使用正宗的RNA模板对于推进病毒RNA合成的基本知识至关重要,该知识可以指导机械发现和病毒学的检测发展。非受教负感 (NNS) RNA 病毒(如呼吸道同步病毒 (RSV))的 RNA 模板不是单单 RNA 分子,而是核蛋白 (N) 封装核糖核蛋白复合物。尽管正宗RNA模板很重要,但这种核糖核蛋白复合物的生成和组装仍然复杂,需要深入阐明。主要的挑战是,过度表达的RSV N非具体地与细胞RNA结合,形成随机核胶囊状粒子(NCLPs)。在这里,我们建立了一个协议,通过与伴郎磷蛋白 (P) 共同表达 N,然后用 RNA 寡头与 RSV 特异性 RNA 序列组装 N0来获得无RNA N (N0),以获得病毒特异性核胶囊 (NCs)。该协议展示了如何克服在准备这个传统上具有挑战性的病毒核糖蛋白复合物的困难。
非隔离性负感(NNS)RNA病毒包括许多重要的人类病原体,如狂犬病、埃博拉和呼吸道同步病毒(RSV)1、2。RSV是导致全球幼儿和老年人患支气管炎和肺炎等呼吸系统疾病的主要原因。目前,没有有效的疫苗或抗病毒疗法可用于预防或治疗RSV4。作为生命周期的一部分,RSV基因组作为RSV RNA依赖RNA聚合酶复制的模板,以产生抗原体,而抗基因组又充当生成后代基因组的模板。基因组和抗基因组RNA都完全被核蛋白(N)封装,形成核胶囊(NCs)3。由于NC是RSV聚合酶复制和转录的模板,因此适当的NC组装对于聚合酶获得RNA合成5的模板至关重要。有趣的是,根据NNS病毒聚合酶的结构分析,假设几个N蛋白暂时脱离NC,允许聚合酶进入,并在RNA合成6、7、8、9、10、11、12后重新绑定RNA。
目前,RSV RNA聚合检测已建立使用纯化RSV聚合酶短裸RNA模板13,14。然而,RSV聚合酶的活动没有达到最佳水平,正如RSV聚合酶在使用裸RNA模板时产生的非加工和流产产品中观察到的。缺乏带有病毒特异性RNA的NC是进一步机械化地理解RSV RNA合成的主要障碍。因此,使用正宗的RNA模板成为推进RSV RNA合成基础知识的关键需要。来自RSV和其他NNS RNA病毒的核胶囊状粒子(NCLPs)的已知结构显示,NCLP中的RNA要么是随机细胞RNA,要么是平均病毒基因组RNA15、16、17、18、19。总之,主要障碍是,当N在主机单元中表达过度时,N与细胞RNA结合,形成NCLP。
为了克服这一障碍,我们建立了一个协议,首先获得无RNA(N0),并组装N0 与正宗的病毒基因组RNA到NCLP20。该协议的原则是获得大量的重组RNA无N(N0)通过共同表达N与伴郎,RSV磷蛋白(PNTD)的N终端域。纯化的 N0P 可以通过添加 RSV 特异性 RNA 寡头来刺激并组装成 NCLP,在组装过程中,伴郎 PNTD 在添加 RNA 寡头后会被移位。
在这里,我们详细说明了 RSV 特定 RNA 特定 NC 的生成和组装协议。在此协议中,我们描述了分子克隆、蛋白质制备、 体外 组装和复杂组件的验证。我们强调克隆策略,为分子克隆的蛋白质共表达生成双柠檬结构。在蛋白质制备方面,我们描述了细胞培养、蛋白质提取和蛋白质复合物的纯化过程。然后,我们讨论RSV RNA特定NC的 体外 组装方法。最后,我们使用大小排除色谱 (SEC) 和负污渍电子显微镜 (EM) 来描述和可视化组装的 NCLP。
1. 分子克隆
注:利气独立克隆(LIC)用于制造RSV双语气联表达构造质粒。LIC是一种在20世纪90年代初开发的方法,它利用T4DNA聚合酶的3'-5'Exo活性来制造载体和DNA插入21,22之间的互补性悬垂。构造使用 2BT-10 矢量 DNA 进行,该 DNA 由他在开放读取帧 (ORF) (图 1)N 端的标记组成。
2. 蛋白质表达和纯化
注意:使用 大肠杆菌 进行N和P两种培养细胞在37°C的联位的双语制构造,但在一夜之间在降低温度(16°C)时进行表达。通过钴柱、离子交换和大小排除色谱(图2)的组合来净化蛋白质复合物。
3. 病毒特异性NC的体外组装
注:RSV 特定 NC (N:RNA) 的 体外 组装通过用 RNA 寡头孵育已准备好的 N0P 复合物来执行。然后,SEC色谱用于将装配复合物与N0P和多余的RNA(图2)分开。
4. 制作负污渍网格
注:负污渍电子显微镜(EM)是一种分子被吸收到碳膜上,然后嵌入重金属原子层的方法。负污渍 EM 产生高图像对比度,便于查看和计算对齐粒子。另一个优点是,将粒子吸附到碳膜上通常诱导分子粘附在网格上,几乎没有偏爱的方向。当分子处于类似的方向时,很容易将其分离成结构上不同的类。因此,负污渍 EM 是指导样品制备25、26 (图 3)的适当技术。
无RNA N0P蛋白的纯化
通过此协议,可以获得大规模可溶性异质 RSV N0P 复合体。P蛋白的N和N终端部分的全长与大肠杆菌中的N蛋白的10倍共同表达。N0P 使用钴柱、离子交换和大小排除色谱进行纯化。N0P 包含全长 N 端和 N 端 P,但不包含基于紫外线吸收 A260 /A 280比率20 (图4)的蜂窝RNA。
N-RNA 的组装和负污渍的检查
然后,我们证明纯化的N0P可以通过与特定的RNA寡头孵育来刺激并组装成类似核苷酸的粒子(NCLPs)。NCLP 通过在室温下以 1:1.5 的比例孵育 N0P 和 RNA 寡头进行组装,持续 1 小时,然后穿过凝胶过滤柱。当 N:RNA 复杂形式时,它显示三个峰值:1 个 峰值为 N:RNA,第 2个 峰值为 N0P,第 3 个 峰值为超额自由 RNA。N:RNA 峰值的最高部分创建负污渍网格,用于检查 EM20 (图 5)。

图1。质粒结构的插图。一。RSV N1-391的构造:乙。RSV P1-126的构造:C. N1-391和P 1-126的联音结构。第一个基因RSV N1-391,第二个基因RSV P1-126,抗生素耐药基因(AmpR),和促进者分别突出显示在黄色,青色,粉红色和橙色框。总之,RSV N1-391和 RSV P1-126的基因插入是单独构建和组装的。请单击此处查看此图的较大版本。

图2。蛋白质复合物N1-391 P 1-126的纯化流程图。它概述了大肠杆菌细胞培养的接种和大规模生长,并通过离心收获细胞。其次是细胞裂解,蛋白质样本通过亲和力色谱(即Co2+列)、离子交换色谱(即Q列)和凝胶过滤大小排除(SEC)色谱进行纯化。SDS-PAGE凝胶进一步分析了蛋白质样本。请单击此处查看此图的较大版本。

图3。为成像准备负污渍 EM 网格。A. 发光会释放网格。乙。显示负染色网格的程序。钳子用于拾取网格,然后应用蛋白质样本1分钟。网格上布满了印迹纸。网格用缓冲器清洗两次,用 0.75% 的尿素为队友染色溶液洗两次。网格在第二个染色溶液下降中保持 30 秒。每次洗涤后,网格都会被弄脏,最后打喷后会风干。C. 网格存储在网格框中进行成像。请单击此处查看此图的较大版本。

图4。N1-391 P 1-126综合体的共化代表结果。 一。美国证券交易委员会(SEC)的N1-391P1-126概况。乙。与RNA的装配N1-391P1-126的SEC配置文件。C. SDS-PAGE 凝胶仅显示 N-RNA 复合物的 N 蛋白和 N1-391 P 1-126复合物的 N 和 P 蛋白质的带状物。请单击此处查看此图的较大版本。

图5。N-RNA 的代表图像。A 和 B 是图 4中 N1-391-RNA峰值 N-RNA 具有代表性的负污渍 EM 图像。N-RNA复合物使用图3中描述的程序进行染色。请单击此处查看此图的较大版本。
| 引 | |
| N1-391 转发 | 5'-泰特卡特卡特卡特加加格加格-3' |
| N1-391 反向 | 5 '- 塔特卡特卡特塔塔卡格特克特 - 3' |
| P1-126 转发 | 5'-泰特卡特卡特加特加特克茨加格-3' |
| P1-126 反向 | 5 '- 塔特卡特卡特塔克特格特格特克特克塔格特克 - 3' |
表1。引物序列。
| 脱氧核糖核酸插入的 PCR 放大 | |
| 15 微升 | 10x 普夫聚合酶反应缓冲器 |
| 3 微升 | 前向引金(100 μM 浓度) |
| 3 微升 | 反向引号(100μM 浓度) |
| 15 微升 | dNTP混合在2.5 mM浓度 |
| 6 微升 | 质粒DNA包含N或P(100ng/μL)的基因 |
| 7 微升 | 德马索 |
| 3 微升 | 2.5U/μL 的普夫聚合酶 |
| 容量填充到 150 μL | 无菌 ddh2O |
表2。脱氧核糖核酸插入试剂的PCR放大。
| 脱氧核糖核酸插入的 PCR 复制 | |||
| 步 | 时间 | 温度 | 周期 |
| 变性 | 4 分钟 | 95°C | 1 |
| 变性 | 45 秒 | 95°C | 30 |
| 退火 | 30 秒 | 62°C | |
| 扩展* | 90 秒 | 72°C | |
| 外延 | 10 分钟 | 72°C | 1 |
| 拿 | ∞ | 4°C | 1 |
| 150 μL 混合物可在三个独立的 PCR 反应(3 x 50μL)中运行。 | |||
| *对于普夫DNA聚合酶,1 kb/min 是延长阶段推荐的速度。在这里,N1-391 基因或P1-126 基因的长度都短于1.5 Kb。 | |||
| 因此,扩展步骤使用了 90 秒。 |
表3。PCR放大DNA插入恒温程序。
| T4 DNA聚合酶治疗 | |
| 10 x 缓冲区 | 2μL |
| 矢量/插入DNA(0.1pmol矢量或0.2pmol插入) | 5 微升 |
| dNTP* 在 25 米 | 2μL |
| 100米时 | 1μL |
| T4 DNA聚合酶(LIC 合格) | 0.4 微升 (1.25 U) |
| 无菌 ddh2O | 9.6 微升 |
| *dGTP用于载体,dCTP用于插入DNA。 |
表4。T4脱氧核糖核酸聚合酶治疗。
| 重叠五氯苯酚 | |
| 15 微升 | 10 X 普夫聚合酶反应缓冲器 |
| 3 微升 | 前进引号 (100μM) |
| 3 微升 | 反向引号 (100μM) |
| 15 微升 | dNTP 混合 (2.5 mM) |
| 3 微升 | 含有基因N1-391(100 ng/μL)的第1轮PCR的DNA |
| 3 微升 | 含有基因P1-126(100 ng/μL)的第1轮PCR的DNA |
| 7 微升 | 德马索 |
| 3 微升 | 普夫聚合酶 (2.5 U/μL) |
| 容量填充到 150 μL | 无菌 ddh2O |
表5。重叠五氯苯酚试剂。
| 重叠五氯苯酚 | |||
| 步 | 时间 | 温度 | 周期 |
| 变性 | 4 分钟 | 95°C | 1 |
| 变性 | 45 秒 | 95°C | 30 |
| 退火 | 30 秒 | 62°C | |
| 扩展* | 2 分钟 | 72°C | |
| 外延 | 10 分钟 | 72°C | 1 |
| 拿 | ∞ | 4 °C | 1 |
| 150 μL 混合物可在三个独立的 PCR 反应(3 x 50 μL)中运行。 | |||
| *对于普夫DNA聚合酶,1 kb/min 是延长阶段推荐的速度。在这里,基因N1-391和P1-126的总长度短于2.0 Kb。因此,扩展步骤使用 2 分钟。 |
表6。重叠PCR恒温程序。
作者没有什么可透露的。
为了深入分析呼吸道同步病毒 (RSV) RNA 合成,我们报告了利用伴生磷蛋白 (P) 共同表达无RNA核蛋白 (N0)的协议,用于病毒特定核胶囊 (NCs) 的后续 体外 组装。
埃默里梁实验室的研究项目由美国国家普通医学科学研究院 (NIGMS)、国家卫生研究院 (NIH) 提供,奖励编号为 R01GM130950,以及埃默里大学医学院的研究启动基金。作者感谢梁实验室的成员给予的帮助和支持和批判性讨论。
| 琼脂糖 | SIgma | A9539-500G | 使用 LIC 方法制作构建体 |
| Amicon Ultra-15 离心过滤装置 | Millipore | UFC901024 | 浓缩蛋白质样品 |
| 氨苄青霉素钠 | GOLD BIOTECHNOLOGY | 5118.111317A | 用于细胞培养的抗生素 |
| AseI | NEB | R0526S | 使用 LIC 法制作构建体 |
| 钴(高密度)琼脂糖微珠 | Gold Bio | H-310-500 | 用于纯化 His 标签蛋白 |
| 康宁 LSE 数字干浴加热器 | 康宁 | 6885-DB | 加热样品 |
| dCTP | 使用LIC 方法 | 制备Invitrogen | 10217016 | 构建体
| dGTP | Invitrogen | 使用LIC 方法制备10218014构建体 | |
| 甘油 | Sigma | G5516-4L | 制备溶液 |
| HEPES | Sigma | H3375-100G | 制备溶液 |
| HiTrap Q HP | Sigma | GE29-0513-25 | 蛋白质纯化 |
| 咪唑 | Sigma | I5513-100G | 制备溶液 |
| IPTG(异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷) | GOLD BIOTECHNOLOGY | 1116.071717A | 诱导蛋白质微量 |
| 离心管的表达 | 用于PCR 的 | VWR | 47730-598 |
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| Superose 6 增加 10/300 GL | Sigma | GE29-0915-96 | 蛋白质纯化 |
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| 盐酸 Trizma | 盐酸盐 Sigma | T3253-250G | 制备溶液 |
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