方法文章

严重卵巢功能障碍患者的生育力保存

DOI:

10.3791/62098

2021年3月25日

本文内容

摘要

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我们介绍了针对卵巢功能严重障碍患者进行无药物体外激活(IVA)卵巢卵泡的实验室操作步骤。该方法可增加每次卵巢超促排卵中可获取的卵母细胞数量,有助于此类患者的生育力保存。

摘要

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卵巢功能在衰老过程中以及某些病理生理条件下会逐渐衰退,这些条件包括核型异常、自身免疫性疾病、化疗和放疗,以及卵巢手术。对于患有严重卵巢功能障碍的未婚女性而言,生育力保存对其未来妊娠至关重要。尽管卵母细胞冷冻保存是目前公认的生育力保存方法,但即使经过卵巢促排卵刺激,这些患者也只能保存有限数量的卵母细胞,因此需要多次重复刺激以获得足够数量的卵母细胞,从而确保未来的妊娠机会。为解决这一问题,我们近期开发了一种无需药物的体外激活(IVA)技术,该技术可促使卵巢卵泡的早期阶段发育至前窦卵泡阶段。这些前窦卵泡能够对独特的促性腺激素刺激方案产生反应,从而在每次卵巢刺激中获得更多的可采集卵母细胞用于冷冻保存。这种无药物IVA技术包括外科操作和卵巢刺激两个部分。我们在腹腔镜手术下从患者单侧或双侧卵巢中取出部分皮质组织,将卵巢皮质组织切成小块,以破坏Hippo信号通路并促进早期卵泡的发育。随后将这些组织小块原位移植回残留的卵巢组织中,并移植至双侧输卵管浆膜下。我们此前已发表过无药物IVA的外科手术步骤及后续卵巢刺激方案,但本文将详细介绍实施无药物IVA所必需的实验室操作方法。

引言

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卵巢功能在衰老过程中以及某些病理生理状态下会逐渐衰退,这些状态包括核型异常、自身免疫性疾病、化疗和放疗、以及卵巢手术。对于患有严重卵巢功能障碍的未婚女性而言,生育力保存是保留其未来妊娠潜力的最佳选择之一。目前,生育力保存主要在肿瘤生殖医学领域有两种常用方法。卵母细胞冷冻保存是一种成熟的生育力保存技术,已有大量成功案例报道1,2。另一方面,卵巢组织冷冻保存也已在癌症患者中用于生育力保存,但目前仍属于实验性策略3,4。这两种方法均需要获取多个成熟卵母细胞才能实现妊娠。通常,早发性卵巢功能不全(POI)患者(即40岁之前出现闭经)以及卵巢储备功能低下的中年女性,对促排卵刺激的反应较差5,6,7。此外,窦卵泡数量较少的年轻患者也表现出对卵巢刺激的低反应7。这些患者即使经过充分的卵巢高刺激,可获得的卵母细胞数量仍极为有限,因此需要多次昂贵的治疗过程,以确保获得足够数量的卵母细胞用于妊娠。

对于难以获得自身卵母细胞的早发性卵巢功能不全(POI)和卵巢反应低下(POR)患者,使用供卵者卵母细胞,结合丈夫精子进行体外受精(IVF)并实施胚胎移植(ET),是目前唯一的治疗选择8,9,10。然而,供卵治疗存在伦理问题,并可能引发自身免疫反应及妊娠相关并发症11,12,13,14。为解决上述问题,亟需建立利用患者自身卵母细胞进行不孕治疗的新方法。针对POI患者,我们已开发出体外激活(IVA)技术,可有效促进卵泡生长并获得成熟卵母细胞,已成功实现多次妊娠与分娩15。在IVA过程中,我们通过腹腔镜手术切除卵巢后,将卵巢皮质组织进行机械切割成碎片,随后使用Akt通路激活药物进行为期两天的体外培养以激活卵泡,再通过第二次腹腔镜手术,将组织移植回输卵管浆膜下人工创建的异位移植袋中15。该操作通过卵巢皮质碎片化促进原始卵泡、初级卵泡和次级卵泡的生长,其机制涉及Hippo信号通路的中断16,随后通过两天的Akt信号通路激动剂培养进一步增强卵泡激活效果17

与严重的原发性卵巢功能不全(POI)病例不同,卵巢反应低下(POR)且卵巢储备功能减退的患者通常存在多个次级卵泡。由于单独破坏Hippo信号通路已能有效促进次级卵泡的生长16,我们近期已证明,对于POR患者,采用无需药物的IVA技术(即仅通过卵巢皮质切割与原位移植,而不使用Akt激活药物)可成功实现妊娠并分娩。无需药物的IVA技术仅需一次手术即可刺激卵巢早期卵泡发育至前窦卵泡阶段,并增加可用于体外受精-胚胎移植(IVF-ET)的获卵数量15,18。与我们最初版本的IVA相比,无需药物的IVA具有多项优势:1)避免了体外培养过程中潜在的卵泡丢失;2)减少了二次手术的侵入性与成本;3)术后仅需短期卧床休息;4)由于采用原位移植,存在自然妊娠的可能性。我们近期发表了一篇视频文章,展示了无需药物IVA的手术操作流程19以及术后卵巢刺激的详细方案20。本文中,我们介绍了实施无需药物IVA所需的实验室方法细节。

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方案

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所有参加无药物IVA治疗的卵巢储备功能减退POR患者均签署了书面知情同意书。本研究已获得国际健康福利大学伦理委员会的批准(编号:17-S-21)。临床试验注册号为UMIN000034464,并依照世界医学协会《医学伦理守则》(赫尔辛基宣言)进行。

1. 卵巢皮质提取

  1. 在全身麻醉下,通过腹腔镜手术从一个或两个卵巢中取出部分卵巢皮质组织(10 × 10 mm,厚 2–3 mm),操作方法如先前所述19,20
  2. 将采集的卵巢皮质组织置于含有 10 mL 改良HTF(mHTF)的无菌容器中,保持温度为 37 °C。

2. 卵巢皮质碎裂

注意:在解剖卵巢皮质之前,将 mHTF 预热至 37 °C。整个操作过程中须保持无菌条件。本实验所需所有工具均列于材料表中。

  1. 将收集的卵巢皮质组织置于含有 5–10 mL mHTF 的塑料培养皿中,于 37 °C 条件下放置在加热板上,以维持组织温度为 37 °C(图 2A)。
  2. 在开始下一步操作前,使用数码相机拍摄每块皮质组织,并标注患者姓名,以便关联患者的背景资料。
  3. 将单个卵巢皮质组织放置于经 mHTF 润湿的无菌纱布上(图 2B)。
    注意:在此操作过程中,可使用一次性移液管向纱布上补充适量 mHTF,以防止皮质组织表面干燥。
  4. 使用显微剪刀去除呈粉红色的残余髓质组织,使组织厚度达到 1–2 mm(图 2CD)。
    注意:为避免早期卵泡丢失,不要将皮质条切成小于 1 mm 的厚度,因为早期阶段的卵泡位于卵巢皮质表面下 1–2 mm 范围内21
  5. 使用精细手术刀从每条卵巢皮质组织上切取 1 mm × 1 mm × 5 mm 的组织样本,并进行组织学分析,以确定是否存在残留卵泡,方法如前所述18图 2E)。
    注意:用于组织学分析的组织样本应浸入 mHTF 中,并在 4 °C 保存直至固定(图 2F,见步骤 4)。
  6. 使用精细手术刀将皮质组织切成 1 mm × 1 mm × 10 mm 的条状(图 2G)。
    注意:切割时向下按压手术刀比拖拉更易于操作。
  7. 将这些组织条进一步切成 1 mm × 1 mm × 1 mm 的小立方体(图 2H)。
    注意:为避免培养基中渗透压发生变化,在进行组织自体移植前应适量添加 mHTF。

3. 卵巢皮质碎片自体移植

  1. 打开IVA套管针的包装,将其放置在无菌敷布上。
  2. 通过反复抽吸和排出mHTF,用mHTF冲洗IVA套管针内部。
  3. 抽吸100–200 µL的mHTF,填充IVA套管针的尖端,以避免在装载过程中皮质立方体干燥(图3A)。
  4. 使用精细镊子将皮质立方体装入IVA套管针的尖端(图3B-E)。
    注意:装载的皮质立方体数量取决于移植部位。通常可将20–30个立方体移植至原位残留卵巢,而10–15个立方体可移植至输卵管浆膜下袋状区域。
  5. 装载皮质立方体后,在将IVA套管针移交给外科医生前,用手指握住含有皮质立方体的套管针尖端,以避免立方体温度下降。
    ​注意:腹腔镜手术下自体移植操作的详细步骤已有前期报道19。针对卵巢皮质立方体的移植,本研究合作者Kitazato Corporation开发了一种管状装置(IVA套管针)。

4. 卵巢皮质的组织学分析

注意:为了计数残留卵泡的数量,需按照先前所述方法进行组织学分析15

  1. 在样本固定前,使用组织标记染料标记皮质条的表面,以指示组织条中皮质一侧,便于后续组织学分析。
  2. 使用Bouin溶液在4 °C下过夜固定组织条。
    注意:为检测闭锁卵泡,不建议使用多聚甲醛固定,以避免卵母细胞胞质收缩。
  3. 将组织条进行脱水并包埋于石蜡中。
  4. 对含有组织样本的石蜡块进行连续切片。
  5. 使用苏木精和伊红对每张切片染色,以观察卵泡结构。
  6. 按照先前描述的方法计数卵泡17

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结果

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在IVA技术的首次发表中15,我们通过腹腔镜手术将卵巢皮质组织块逐一移植至移植部位(图1A)。由于使用了100–150个卵巢组织块,腹腔镜下的组织移植过程耗时3–4小时,且部分卵巢组织块在移植前即已丢失。由于IVA穿刺导管可一次性将20–30个组织块输送至移植部位(图1B),我们将手术时间缩短至1–2小时。此外,IVA穿刺导管还可避免卵巢皮质组织块在手术过程中的丢失。

微创手术示意图;使用器械进行组织操作。
图1:IVA套管的有效性。A

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讨论

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在本论文中,我们展示了一种无药物IVA的详细实验室方案。无药物IVA是一种针对卵巢储备功能减退的难治性卵巢反应不良(POR)患者的新型不孕症治疗方法,旨在促进次级卵泡的生长,从而在卵巢刺激后获得更多的成熟卵母细胞,并提高成功妊娠的几率20。在15例卵巢储备功能减退的POR患者中,该方法实现了1例自然妊娠,通过体外受精-胚胎移植技术获得了4例活产,另有1例持续妊娠19

为制备用于移植的卵巢皮质组织,使用显微剪刀去除髓质组织,保留1-2 mm厚度的皮质。此前,我们已证实,在卵巢储备功能正常的患者中,原始卵泡、初级卵泡以及大部分次级卵泡均位于卵巢皮质表面下1 mm以内的区域21。在早发性卵巢功能不全(POI)患者中,我们发现次级卵泡位于皮质表面下超过1 mm但不超过2 mm的深度21。已知窦状卵泡主要位于髓质组织中21,但在POI患者的髓质组织中并未...

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披露

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作者确认他们不存在利益冲突。

致谢

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我们感谢 Tatsuji Ihana、Sachiyo Kurimoto、Kazuko Takahasih、Yuki Yoshizawa、Maho Arashi、Kentaro Fujita、Erina Kudo、Yuka Kurimoto 和 Mayuko Wakatsuki 在无药物 IVA 操作中的支持,感谢美国加利福尼亚州斯坦福大学医学院 Aaron J.W. Hsueh 教授对稿件的审阅与修改。同时感谢 Rebecca Truman 和 Gregory Truman 为视频添加英文旁白。本研究由日本促进科学基金(JSPS)科学研究 B 项目(19H03801)及挑战性探索研究项目(18K19624)资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
4.5 盎司标本容器FALCON354013其他产品也可能适用
60 毫米培养皿FALCON351007其他产品也可能适用
50 x 50 厘米无菌铺巾HOGY MedicalSR-823任何类型的无菌产品也可能适用
一次性移液管FALCON357575其他产品也可能适用
精细剪刀,弯型WPI#14224-G尽管其他产品也可能适用,但我们强烈推荐使用此产品
加热板TOKAI HITTPiE-SP在手术室中用于维持移植前含卵巢组织的培养皿温度
人血清白蛋白溶液Irvine Scientific9988用于处理卵巢组织的培养基
IVA 套管针KITAZATO446030 IVA-6030E专用于组织自体移植的套管针
KAI 医用一次性手术刀WPI#5 10-A尽管其他产品也可能适用,但我们强烈推荐使用此产品
显微剪刀,弯型WPI#503364尽管其他产品也可能适用,但我们强烈推荐使用此产品
改良 HTF 培养基-HEPESIrvine Scientific90126用于处理卵巢组织的培养基
无菌纱布Osaki Medical15004任何类型的无菌产品也可能适用
瑞士镊子,弯头尖端KAI#504505尽管其他产品也可能适用,但我们强烈推荐使用此产品

参考文献

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