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脊髓腔内注射人源间充质干细胞及其向大鼠脑部迁移的追踪

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DOI:

10.3791/62120

2021年2月3日

本文内容

摘要

可采用多种给药途径将间充质干细胞(MSCs)递送至大脑。在本研究中,通过脊髓腔内注射将MSCs递送至整个神经轴和大脑。将MSCs注射到大鼠的脊髓腔内,并对干细胞的迁移进行追踪和定量分析。

摘要

间充质干细胞(MSCs)已被广泛研究用于多种疾病的治疗。在涉及脑和脊髓功能缺陷的神经退行性疾病中,给药途径至关重要,因为MSCs必须迁移至脑和脊髓。本文描述了一种在大鼠模型中将MSCs注入脊髓腔(脊髓腔内注射)的方法,可同时靶向脑和脊髓。将一百万个MSCs注射至大鼠腰椎2-3节段的脊髓腔内。给药后,大鼠分别在注射后0、6和12小时被处死。采用光学成像和定量实时聚合酶链式反应(qPCR)技术追踪注射的MSCs。本研究结果表明,通过脊髓腔注射的MSCs在12小时后可在脑和脊髓中均被检测到。脊髓腔内注射的优势在于无需全身麻醉,且副作用较少。然而,MSCs向脑部迁移率低的缺点仍需克服。

引言

间充质干细胞
在疾病状态下,间充质干细胞(MSCs)通过旁分泌作用释放具有疾病特异性的治疗性物质1,这些物质已被报道可调节免疫反应、修复受损组织并清除有毒物质2。因此,在治疗阿尔茨海默病和肌肉减少症等多因素疾病时,MSC疗法被认为比单靶点治疗更为有效3,4,5,6。此外,与药物相比,MSCs具有归巢效应,能够通过识别体内炎症性细胞因子或趋化因子迁移至受损组织区域7,8。然而,仅有部分细胞能够到达受损部位,且MSCs在迁移过程中的存活率会下降9,10,11,12。因此,为了最大化MSCs的治疗效果,必须将具有活性的细胞递送至靶部位。故而在给予MSCs时,应根据目标疾病的特....

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方案

注意:本研究已获得三星医疗中心三星生物医学研究所(SBRI)的机构动物护理和使用委员会批准(批准编号:20170125001,日期:2017年1月25日)。SBRI 是国际实验动物评估和认可委员会的认证机构,遵循实验动物资源研究所制定的指导方针开展工作。

1. 人脐带华通氏胶来源的间充质干细胞的制备

  1. 人脐带华通胶来源的间充质干细胞(WJ-MSCs)的培养
    1. 快速将一管人脐带华通氏胶间充质干细胞(WJ-MSCs)在37 °C水浴中解冻。将WJ-MSCs转移至50 mL锥形管中,并加入至少为细胞体积10倍(v/v)的生长培养基。用移液器吹打混匀以悬浮细胞。
    2. 300 × g 离心 g 5 分钟后,小心弃去上清液,并重悬细胞。
      注意:切勿丢弃细胞沉淀。
    3. 以每平方厘米5,000-6,000个细胞的密度将WJ-MSCs接种于T175培养瓶中2. 将WJ-MSCs在37 °C CO₂培养箱中孵育2 培养箱中培养。每72小时更换一次生长培养基,直至华通氏胶间充质干细胞(WJ-MSCs)达到80-90%融合度。
      ​注:通常情况下,MSCs 需要 3-4 天达到 80-90% 汇合度。
  2. 人脐带华通胶间充质干细胞的传代培养
    1. 弃去培养基....

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结果

为了评估间充质干细胞(MSCs)注入脊髓腔内的有效性,本研究使用了DiD标记的MSCs。在将MSCs注入脊髓腔之前,通过光学成像和荧光显微镜在体外评估了标记效率(图1)。按照方案第3.1节所述方法,使用DiD标记试剂对MSCs进行染色后,拍摄了接种DiD标记MSCs的培养板的光学图像(图1A)。DiD标记的MSCs(+DiD)呈红色;未标记DiD染料的对照MSCs(-DiD)未显示阳性信号。该结果通过荧光显微镜进一步验证(图1B)。同时使用4′,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)对MSCs进行染色以观察其形态。未标记的MSCs(-DiD)呈蓝色,表明被DAPI或细胞核染色,但未显示与DiD染色相关的红色荧光。相反,DiD标记的MSCs(+DiD)同时呈现蓝色和红色荧光,表明DiD标记方法成功实现。

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讨论

间充质干细胞(MSCs)治疗的最佳给药途径应根据目标疾病、患者状况以及拟递送药物的类型来选择。在包括MSC治疗在内的细胞治疗中,必须考虑将干细胞直接注射到脑内或通过脑脊液(CSF)进行鞘内注射,因为细胞无法穿过血脑屏障19。脊髓腔内注射相对无创,不会像脑室注射那样造成脑部神经损伤,且相关不良反应风险较低20。通过腰椎穿刺获取脑脊液是一种在临床场所可轻松实施的操作。因此,通过脊髓腔注射向患者给予干细胞、药物、对比剂或其他物质并不困难23,24,25。相比之下,脑室注射需要外科手术干预,操作更为复杂。然而,对于实验动物而言,向脊髓腔内注射比直接向脑内给药更具挑战性,这是因为啮齿类动物(包括小鼠和大鼠)的体型与人类相比非常小26

在进行椎管内给药时,必须将针头.......

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

本研究由韩国国家研究基金会(NRF)通过基础研究项目提供的资助支持,该项目由教育部门资助(NRF-2017R1D1A1B03035940),以及韩国卫生技术研究开发项目提供的资助支持&D 项目,由韩国健康产业开发院(KHIDI)资助,资金来源于保健福祉部 &韩国保健福祉部(资助编号:HI14C3484 和 HI18C0560)。我们感谢 Editage(www.editage.co.kr)在英文语言编辑方面提供的帮助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
0.25% 胰蛋白酶-EDTAGibco-invitrogen25200114细胞培养
胎牛血清biowestS1520培养基添加剂
gentamicinGibco-invitrogen15710-072培养基添加剂
Gentra Puregene 组织试剂盒QIAGEN158689基因组DNA分离
MEM,无谷氨酰胺,无酚红Gibco51200038WJ-MSC 注射用配方
最低必需培养基αGibco-invitrogen12571063WJ-MSC 培养基
Power SYBR Green PCR 主混合液Applied Biosystems4368577定量实时PCR试剂
QuantStudio 6 Flex 实时PCR系统Thermo fisher4485694定量实时PCR
台盼蓝Gibco15250061注射
Vybrant DiD 细胞标记溶液invitrogenV22887干细胞标记溶液
Xenogen IVIS Spectrum 系统Perkin Elmer124262光学成像设备

参考文献

  1. Gnecchi, M., Danieli, P., Malpasso, G., Ciuffreda, M. C. Paracrine mechanisms of mesenchymal stem cells in tissue repair. Methods in Molecular Biology. 1416, 123-146 (2016).
  2. Liang, X., Ding, Y., Zhang, Y., Tse, H. F., Lian, Q. Paracrine....

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