本方案描述了在培养的斑马鱼神经元和幼体中使用基因编码的过氧化氢(H2O2)生物传感器,以评估H2O2在神经系统发育过程中生理信号传导的作用。该方法可应用于不同类型的细胞,并可通过实验处理进行改良,以研究活性氧(ROS)在一般发育过程中的作用。
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本方案描述了在培养的斑马鱼神经元和幼体中使用基因编码的过氧化氢(H2O2)生物传感器,以评估H2O2在神经系统发育过程中生理信号传导的作用。该方法可应用于不同类型的细胞,并可通过实验处理进行改良,以研究活性氧(ROS)在一般发育过程中的作用。
活性氧(ROS)是公认的信号分子,在正常发育、稳态维持和生理功能中具有重要作用。在各类活性氧中,过氧化氢(H₂O₂)因其相对稳定的化学性质和跨膜扩散能力,成为重要的氧化还原信号传导分子。2O2)在细胞信号传导中的作用最为明确。H2O2 在多个物种的发育过程中均牵涉其中。例如,H2O2 在受精后的最初几天内,已在斑马鱼胚胎中检测到。此外,耗竭一种重要的细胞H2O2 来源,NADPH 氧化酶(NOX),会损害神经系统发育,例如视网膜神经节细胞(RGCs)的分化、轴突生长和导向,两者均 在 体内 和 体外. 本文介绍一种用于成像细胞内H2O2 使用基因编码的H在培养的斑马鱼神经元及发育过程中的完整幼体中检测水平2O2特异性生物传感器roGFP2-Orp1。该探针可在斑马鱼幼鱼中瞬时或稳定表达。此外,其比率型信号输出可降低因基因表达差异或体积效应导致的假象检测概率。首先,我们展示如何分离并培养瞬时表达roGFP2-Orp1的斑马鱼胚胎来源的视网膜神经节细胞(RGCs)。随后,利用完整幼鱼监测H2O2 组织水平的检测。该传感器已通过添加 H 进行验证2O2此外,该方法还可用于测量 H2O2 通过构建在特定组织中表达生物传感器的转基因动物,检测特定细胞类型和组织中的信号水平。由于斑马鱼便于进行遗传和发育操作,本文展示的方法可作为研究H功能的实验流程2O2 在脊椎动物神经元及一般胚胎发育过程中。
活性氧(ROS)信号通路调控神经系统的发育与功能1。细胞内重要的活性氧来源之一是NADPH氧化酶(NOX),这是一类跨膜蛋白,可生成超氧阴离子和过氧化氢(H2O2)2。NOX酶广泛存在于中枢神经系统(CNS)中,由NOX产生的活性氧参与神经元的发育过程3,4,5,6。研究表明,神经干细胞的维持与分化、神经元极性的建立、神经突起的生长以及突触可塑性均依赖于适当水平的活性氧7,8,9,10,11。另一方面,NOX酶过度产生活性氧则与多种神经退行性疾病相关,包括阿尔茨海默病、多发性硬化症和创伤性脑损伤12,13
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所有动物实验均按照美国国立卫生研究院(NIH)指南,在2020年7月24日获得普渡大学动物护理与使用委员会(PACUC)的伦理审查和批准,批准协议号为2006002050。
1. 溶液的配制
| 溶液 | 组分 | 量 |
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培养的斑马鱼RGCs在1天内延伸出轴突。一幅代表性的405/480比率图像显示了H2O2-生物传感器如图所示 图 4A细胞体、轴突和生长锥在单个神经元中清晰可见。这些神经元可在不同时间点接受不同处理,以监测 H2O2 变化。我们先前发现,添加 100 µM H2O2 向培养基中添加物质会提高比值,表明该系统能够检测到实时变化(图4)24.
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在整个实验方案中,有几个关键步骤需要 特别注意。我们认为,考虑这些要点将有助于改善实验流程。对于原代视网膜神经节细胞(RGC)培养而言,ZFCM(-) 培养基的无菌性非常重要,因为该培养基不含抗生素,在成像前或成像过程中可能发生污染。为避免污染,我们建议仅在生物安全柜内配制和使用 ZFCM(-),并定期新鲜配制 ZFCM(-) 培养基(步骤 1.5)。此外,层粘连蛋白(laminin)储备液应保存在 -80 °C。解冻后的层粘连蛋白应始终存放于 4 °C,切勿将其置于室温下或反复冻融,否则会降低该蛋白促进神经突生长的活性。
在适当的时间解剖斑马鱼视网膜对于获得足够数量并能延伸轴突的视网膜神经节细胞(RGCs)至关重要。斑马鱼RGCs在受精后28小时(hpf)生成,并从32至36 hpf开始延伸轴突离开视网膜。因此,为确保RGCs充分分化,关键是要在28 hpf之后接种RGCs,最好在32至36 hpf之间进行。若在更早的时间点制备培养物,可能无法获得足够数量的RGCs,或所得RGCs在接种后24小时内可能无法延伸轴突。建议在成像时间超过30分钟时更换ZFCM(-)培养基,.......
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作者声明不存在利益冲突。
本工作得到了美国国立卫生研究院(资助号 R01NS117701)、美国国家科学基金会(资助号 1146944-IOS)、印第安纳州创伤性脊髓与脑损伤研究基金(资助号 20000289)、普渡大学研究基金会(资助号 209911)以及普渡大学研究与合作伙伴关系执行副校长办公室(资助号 210362)的支持。我们感谢 Cory J. Weaver 博士和 Haley Roeder 建立了斑马鱼视网膜神经节细胞(RGC)培养方案。我们 additionally 感谢 Haley Roeder 提供了图 4 的数据。我们感谢 Leah Biasi 和 Kenny Nguyen 在 RGC 培养方面的帮助。我们感谢 Gentry Lee 对文本的编辑。我们感谢 Tobias Dick 博士提供 roGFP2-Orp1,感谢 Qing Deng 博士提供含有 roGFP2-Orp1 的 pCS2+ 载体。图 2 使用 Biorender.com 制作。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 35 毫米培养皿 | Sarstedt | 83-3900 | |
| 35 毫米玻璃底培养皿 | MatTek | P35G-1.5-10-C | |
| 琼脂糖 | Fisher Scientific | BP160-500 | |
| 硼硅酸盐玻璃毛细管 | Sutter/Fisher Scientific | NC9029378 | |
| 二水合氯化钙 | Fisher Scientific | C79-500 | |
| 盖玻片 | Corning | 2850-22 | |
| 一次性培养皿(100 × 15 毫米) | VWR | 25384-094 | |
| 胎牛血清 | ThermoFisher Scientific | 26140087 | |
| 葡萄糖 | Sigma Aldich | G7528 | |
| HEPES | Sigma Aldich | H4034 | |
| 注射模具 | Adaptive Science Tools | TU-1 | |
| 倒置显微镜 | Nikon | TE2000 | |
| 层粘连蛋白 | ThermoFisher Scientific | 23017-015 | |
| 激光扫描共聚焦显微镜 | Zeiss | 710 | |
| 含酚红的 Leibovitz L-15 培养基 | Gibco/Fisher Scientific | 11-415-064 | |
| 不含酚红的 Leibovitz L-15 培养基 | Gibco/Fisher Scientific | 21-083-027 | |
| 低熔点琼脂糖 | Promega | V2111 | |
| mMessage mMachine SP6 转录试剂盒 | Invitrogen | AM1340 | |
| NotI | New England Biolabs | R0189S | |
| PBS | Hyclone/Fisher Scientific | SH3025601 | |
| 青霉素/链霉素 | ThermoFisher Scientific | 15140122 | |
| 酚红 | Sigma Aldich | P0290 | |
| 苯硫脲(PTU) | Sigma Aldich | P7629 | |
| 气动微量注射泵 | World Precision Instruments | PV820 | |
| 聚-D-赖氨酸(PDL) | Sigma Aldich | P7280 | |
| QiaQUICK PCR 纯化试剂盒 | QIAGEN | 28104 | |
| 重组小鼠 slit2 | R&D Systems | 5444-SL-050 | |
| 丙酮酸钠 | Sigma Aldich | P5280 | |
| Steritop 0.22 µm 滤器 | Millipore | S2GPT05RE | |
| TE 缓冲液 | Ambion | AM9860 | |
| 三卡因甲磺酸盐 | Sigma Aldich | E10521 | |
| 垂直移液器拉制仪 | David Kopf Instruments | 700C |
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