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方法文章

一种基于荧光光谱法快速评估啮齿类和人类脑组织中肌动蛋白聚合状态的检测方法

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DOI:

10.3791/62268

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2021年6月3日

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本文内容

摘要

我们报告了一种基于荧光光谱法的简单、高效且高通量的检测方法,用于定量微丝中的肌动蛋白 离体 来自啮齿类动物和人类受试者脑组织的生物样本。

摘要

肌动蛋白是细胞骨架的主要成分,在维持神经元结构和功能中起关键作用。在生理状态下,肌动蛋白以两种形式处于动态平衡:单体球状肌动蛋白(G-actin)和聚合的丝状肌动蛋白(F-actin)。在突触末梢,肌动蛋白细胞骨架构成了突触前和突触后重要功能的基础。此外,肌动蛋白聚合状态的动态变化(球状与丝状形式之间的相互转化)与突触结构和功能的可塑性改变密切相关。本文报道了一种改良的基于荧光的方法,用于评估肌动蛋白的聚合状态 离体 条件。该检测利用荧光标记的鬼笔环肽(phalloidin),这是一种可特异性结合肌动蛋白丝(F-actin)的毒蕈环肽,能够直接测定聚合态丝状肌动蛋白的含量。作为原理验证,我们提供了实验证据,证明该方法适用于啮齿类动物及死后人脑组织匀浆。通过使用Latrunculin A(一种可使肌动蛋白丝解聚的药物),我们进一步验证了该检测在监测F-actin水平变化中的有效性。此外,我们将该检测拓展至分离的突触末梢生化组分,在其中通过高浓度细胞外K⁺诱导去极化刺激,证实了肌动蛋白聚合程度的增加。+.

引言

细胞骨架蛋白肌动蛋白参与多种细胞功能,包括结构支持、细胞内运输、细胞运动和分裂。肌动蛋白以两种形式处于动态平衡状态:单体球状肌动蛋白(G-actin)和聚合的丝状肌动蛋白(F-actin)。肌动蛋白聚合状态的快速变化(G型与F型之间的相互转化)导致丝状结构的快速组装与解聚,从而在细胞生理调控中发挥关键作用。肌动蛋白是神经元细胞骨架结构的主要组成成分,影响广泛的神经元功能1,2。值得注意的是,肌动蛋白细胞骨架构成了突触终末结构平台的重要部分,因此在突触形态发生和生理功能中起决定性作用,并在调控突触的大小、数量和形态方面发挥基础性作用3,4,5。特别是,肌动蛋白动态的聚合-去聚合过程是与突触可塑性相关的突触重塑的关键决定因素,而突触可塑性是学习和记忆过程的基础。事实上,无论是突触前功能(如神经递质释放6,7,8,9,10

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方案

所有实验操作均严格遵守新西兰奥塔哥大学实验动物护理与使用伦理委员会(伦理协议编号:AUP95/18 和 AUP80/17)的规定以及新西兰立法要求。人脑组织来自西班牙巴塞罗那市医院临床-IDIBAPS 生物样本库的神经组织库。所有组织采集程序均经巴塞罗那市医院临床伦理委员会批准,并已获得患者家属的知情同意。

1. 缓冲液和试剂的制备

  1. 准备以下缓冲液用于脑组织匀浆及突触终末富集组分的制备:
    匀浆缓冲液:5 mM HEPES,pH 7.4,含 0.32 M 蔗糖
    重悬缓冲液:5 mM Tris,pH 7.4,含 0.32 M 蔗糖
    洗涤缓冲液:5 mM Tris,pH 8.1
    1.2 M 蔗糖
    1.0 M 蔗糖
    0.85 M 蔗糖
  2. 加入自制或商用的蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物。
    注意:我们使用了无 EDTA 的 Complete 蛋白酶抑制剂混合物(每 10 mL 缓冲液使用 1 片)和磷酸酶抑制剂混合物 IV(1:100,体积比)。
  3. 准备以下缓冲液和试剂用于固定、通透及鬼笔环肽结合:
    Krebs 缓冲液:118.5 mM NaCl、4.7 mM KCl、1.2 mM MgCl2、2 mM CaCl2、0.1 mM KH2PO4

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结果

用于评估F-肌动蛋白水平的检测方法的线性关系
首先,确定Alexa Fluor 647鬼笔环肽荧光线性增加的标准曲线,并在每组实验中重复该步骤。图1). 为考察该检测方法的线性范围,使用不同量的啮齿类动物脑匀浆(图2A 和 2B)以及死后人类受试者(图3A 和 3B)进行了处理。该检测在50-200 μg 通过标记的鬼笔环肽保留量评估蛋白质含量。使用540 nm处的光散射来确认样品的不同量图 2C 以及 图3C).

Latrunculin(一种肌动蛋白去聚合剂)可减少标记鬼笔环肽的结合
Latru.......

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讨论

本实验方法基本改编自先前的一项研究30,并进行了修改,采用了一种与荧光标记物结合的鬼笔环肽(phallotoxin)——鬼笔环肽(phalloidin)。荧光标记的鬼笔环肽类似物被认为是固定组织中肌动蛋白丝染色的金标准47,48,49。事实上,它们是最早用于特异性识别肌动蛋白丝的工具50,至今仍是检测肌动蛋白丝最广泛使用的试剂,尤其适用于后续基于荧光显微镜的分析。重要的是,已有研究表明鬼笔环肽甚至能够染色松散且不规则的短肌动蛋白丝网状结构51,表明鬼笔环肽的结合不依赖于肌动蛋白丝的长度。而我们的实验方案则依赖荧光光谱法来分析离体(ex vivo)生物样品(例如啮齿类动物和人类的脑组织)中的肌动蛋白动态变化。

该方案的主要优势在于,与现有方.......

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

本工作由新西兰神经病学基金会(1835-PG)、新西兰卫生研究委员会(#16-597)以及新西兰奥塔哥大学解剖学系资助。我们感谢西班牙HCB-IDIBAPS生物样本库神经组织库提供人脑组织。我们感谢张佳娴在视频录制和编辑过程中提供的帮助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
3.5 mL 开口厚壁聚碳酸酯管Beckman Coulter349622用于梯度离心(突触体提取)
Alexa Fluor 647 鬼笔环肽Thermo Fisher ScientificA22287F-肌动蛋白特异性配体
抗  b-actin 抗体Santa Cruz BiotechnologySc-47778用于免疫印迹法检测总肌动蛋白水平
抗 GAPDH 抗体AbcamAb181602用于免疫印迹法检测 GAPDH 水平
Bio-Rad 蛋白检测试剂浓缩液Bio-Rad5000006基于 Bradford 法的蛋白质定量
二水合氯化钙(CaCl2·2H2O)Sigma-AldrichC3306Krebs 缓冲液组分
cOmplete Mini 无 EDTA 蛋白酶抑制剂混合物Sigma-Aldrich4693159001用于样品制备过程中抑制内源性蛋白酶活性
Corning 96 孔透明平底聚苯乙烯板Corning3596用于光散射测量
D-(+)-葡萄糖Sigma-AldrichG8270Krebs 缓冲液组分
二甲基亚砜Sigma-AldrichD5879鬼笔环肽和拉帕酮 A 的溶剂
荧光平板扫描仪(Odyssey 红外扫描仪)Li-Cor Biosciences用于检测免疫印迹上的免疫反应信号
戊二醛溶液(25% 水溶液)II 型Sigma-AldrichG6257固定剂
HEPESSigma-AldrichH3375样品制备缓冲液组分及 Krebs 缓冲液组分
拉帕酮 ASigma-AldrichL5163肌动蛋白丝解聚剂
六水合氯化镁(MgCl2·6H2O)Sigma-AldrichM2670Krebs 缓冲液组分
微孔板
Millex 5 mm 膜滤器MilliporeLSWP01300突触体的制备
Nunc F96 黑色微孔板Thermo Fisher Scientific237105用于荧光测定
100 mm 尼龙网滤器MilliporeNY1H02500突触体的制备
磷酸酶抑制剂混合物 IVAbcamab201115用于样品制备过程中抑制内源性磷酸酶活性
氯化钾(KCl)Sigma-AldrichP9541Krebs 缓冲液组分,用于突触末梢去极化
磷酸二氢钾((KH2PO4)Sigma-AldrichP9791Krebs 缓冲液组分
硼氢化钠(NaBH4)Sigma-Aldrich71320透化缓冲液组分
氯化钠(NaCl)LabServ (Thermo Fisher Scientific)BSPSL944Krebs 缓冲液组分
碳酸氢钠(NaHCO3)LabServ (Thermo Fisher Scientific)BSPSL900Krebs 缓冲液组分
SpectraMax i3xMolecular Devices用于荧光测定
蔗糖Fisher ChemicalS/8600/60样品制备缓冲液组分
Swimnex 滤器支架MilliporeSx0001300突触体的制备
5 mL Potter-Elvehjem 组织研磨器Duran Wheaton Kimble358034用于组织匀浆
Triton X-100Sigma-AldrichX100透化缓冲液组分
Trizma 碱Sigma-AldrichT6066样品制备缓冲液组分

参考文献

  1. Penzes, P., Rafalovich, I. Regulation of the actin cytoskeleton in dendritic spines. Advances in Experimental Medicine and Biology. 970, 81-95 (2012).
  2. Venkatesh, K., Mathew, A., Koushika, S. P. Role of actin in organelle trafficking in neurons. Cytoskeleton.

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重印与许可

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