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利用渗透压调控聚酯基聚合物体的形状

DOI:

10.3791/62548

2021年4月21日

本文内容

摘要

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聚合物囊泡是自组装形成的聚合物囊泡,通常呈球形,以最小化吉布斯自由能。在药物递送应用中,更长的结构更为有利。本实验方案建立了利用盐诱导渗透压、减小囊泡内部体积,从而制备具有较高长径比的棒状聚合物囊泡的方法。

摘要

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聚合物囊泡是由两亲性嵌段共聚物形成的具有膜结构的双层囊泡,可包载疏水性和亲水性药物,用于药物递送。尽管前景广阔,但由于其球形结构不易被细胞摄取,限制了聚合物囊泡的应用,这一点已被固体纳米颗粒研究人员证实。本文介绍一种基于盐的方法,用于提高以聚乙二醇(PEG)为基础的球形聚合物囊泡的长径比。该方法通过在形成后的透析过程中添加氯化钠,实现对聚合物囊泡的拉长,并最终调控其形状。根据所用嵌段共聚物的疏水性以及目标形态,可按照本方法调整盐浓度。拉长的纳米颗粒有望更有效地靶向大直径血管(如静脉)中的内皮细胞,这些部位可观察到边缘化现象。该方案通过将拉长技术与聚合物囊泡的双负载、长循环优势相结合,拓展了治疗性纳米颗粒的应用范围。

引言

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形状调控是一种相对较新且高效的纳米颗粒介导药物递送优化方法。形态的改变不仅增加了颗粒的表面积,从而提高其载药能力,而且在增强稳定性、延长循环时间、提高生物利用度、实现分子靶向以及控制释放等方面均具有广泛优势1。本方法所关注的纳米颗粒——聚合物囊泡(polymersomes)在热力学上倾向于自组装成球形结构,但这种形态在细胞摄取方面已被证明不切实际,且更容易被免疫系统识别为异物。若能将结构拉长为长椭球形或棒状,则可使药物载体模拟天然细胞,逃避免疫系统中巨噬细胞的清除,从而更有效地递送至目标部位2,3,4,5,6,7。在进行形状调控的同时,聚合物囊泡所具备的诸多显著优势仍得以保留,包括对载荷的膜包被保护作用、膜对外界刺激的响应性,以及对亲水性和疏水性药物的双重包封能力8,9,10,这些特性使其成为极具潜力的药物递送载体。

调控聚合物囊泡形状的方法有多种,每种方法都有其相应的优缺点。然而,大多数方法可归为两类:溶剂驱动和盐驱动的渗透压变化11。这两种方法的目的都是克服聚合物囊泡在形成球形平衡结构后所存在的弯曲能。通过引入渗透压梯度,即使存在较强的弯曲能,聚合物囊泡仍可被迫使弯曲成伸长的结构11,12

基于溶剂的方法借鉴了 Kim 和 van Hest13 的研究,探索了形变过程。他们将聚合物囊泡置于有机溶剂与水的混合体系中进行增塑,使有机溶剂滞留在囊泡膜内并驱除囊泡核心中的水。最终,颗粒内部体积显著降低,导致其发生伸长。尽管该方法已展现出一定潜力,但其实用性有限。该方法需要针对参与调控的不同聚合物骨架使用特定的溶剂,因此难以广泛适用于诱导形变。相比之下,基于盐的方法具有一致性,且采用一种通用的驱动机制,可对多种基于嵌段共聚物的聚合物囊泡施加渗透压,从而诱导形变。

本项目采用 L'Amoreaux 等人提出的基于盐溶液的方法14。该方案包含两轮透析:第一轮旨在通过去除在制备过程中可能被困在双分子层中的有机溶剂,来纯化并稳定聚乙二醇-嵌段-聚乳酸(PEG-PLA)聚合物囊泡;第二轮则促进囊泡的形态转变。第二次透析步骤引入50 mM NaCl溶液,形成渗透压梯度,从而驱动形态变化。Salva 等人的研究支持该方法,指出溶液中的高渗应力会导致囊泡收缩15。该方法基于先前发表的一项研究14,该研究考察了两种不同的聚酯类聚合物囊泡以及50–200 mM NaCl范围内的不同盐浓度梯度。由于聚酯具有良好的生物相容性和可生物降解性,因此被选用。盐浓度梯度对形态的影响取决于嵌段共聚物主链的疏水性,可诱导形成长椭球形、棒状及口杯状结构。本研究选择这种由盐驱动的方法,因其易于重复且具备较高的实验灵活性。

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方案

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1. 使用溶剂注入法形成球形聚合物囊泡

  1. 在有机溶剂中溶解聚酯
    注意:每次仅应将一种聚酯溶解于其相应的有机溶剂中,以形成聚合物囊泡(polymersomes)。
    1. 将聚乙二醇-聚乳酸(PEG-PLA)或聚乙二醇-嵌段-聚(乳酸-共-乙醇酸)(PEG-PLGA)溶解于二甲基亚砜(DMSO)中,浓度为1.5%(质量分数)。具体操作:将0.015 g选定的聚酯溶解于1 mL DMSO中(15 mg/mL)。聚合物完全溶解可能需要最多15分钟的涡旋振荡。
  2. 在聚酯于有机溶剂中溶解的同时,根据图1设置溶剂注射装置。
    1. 将搅拌台置于垂直注射泵正下方。在搅拌台上放置一个5 mL玻璃小瓶,内含1 mL II型去离子水和一个微型搅拌子。
    2. 调节注射泵的高度,使针头尖端完全浸入II型去离子水中。
    3. 将注射泵的输注速率设定为5 µL/min。
      注意:若使用小体积注射泵,可将带针筒的适配器安装在铁环架上;若使用大体积注射泵,则可将其垂直放置于实验室升降台(lab jack)上以调节高度。
  3. 通过将有机溶剂与聚酯溶液(步骤1.1.1)吸入一支27 G、针长½"的针头中,进行溶剂注射。
    1. 将针头装入注射泵,并确保其完全固定。调节推块使其接触针筒活塞末端。
    2. 启动搅拌台,使水以100 rpm转速旋转,随后启动注射泵。
  4. 当注射泵将有机溶剂和聚合物完全注入搅拌中的水中后,移开搅拌子并盖上玻璃小瓶盖。
  5. 通过动态光散射(DLS)对聚合物囊泡进行表征。
    1. 取1 mL含有少量有机溶剂和聚合物的水样,置于1 mL比色皿中。
    2. 根据表1中的设置,将1 mL比色皿放入DLS系统中并开始测量。读取并记录聚合物囊泡的强度加权直径及多分散性指数(PDI)。
      注意:由于有机溶剂含量极低,塑料比色皿在此情况下即可满足要求;但若存在任何疑虑,也可使用玻璃比色皿。
  6. 利用透射电子显微镜(TEM)和扫描电子显微镜(SEM)确认球形聚合物囊泡的形成。
    1. 根据可用设备优化TEM和SEM的操作方案。代表性结果在TEM中于120 kV、SEM中于5.0 kV条件下获得。
    2. 若通过电子显微镜无法观察到聚合物囊泡,可使用醋酸铀酰作为背景染色。
      ​注意:有关聚酯基聚合物囊泡形貌调控的TEM和SEM成像细节,参见文献14;软纳米颗粒电子显微镜技术的详细信息参见文献16

2. 透析去除有机溶剂

  1. 根据制造商提供的方案清洗一个分子截留量为 300 kDa 的透析膜。
  2. 将 1 mL 聚合物囊泡溶液加入透析装置的储液室中。
  3. 将透析装置置于盛有 150 mL Ⅱ级去离子水的 250 mL 烧杯中,并将烧杯放在搅拌台上,调节搅拌速度,使透析装置缓慢移动,持续搅拌过夜。
    注意:若透析过程中产生涡流,则需降低搅拌速度。
  4. 透析完成后,从透析装置中取出 1 mL 聚合物囊泡溶液,并按照步骤 1.5 对聚合物囊泡溶液进行表征。
    注意:收集该信息有助于评估形貌调控实验是否成功,因为若聚合物囊泡发生拉长,其多分散系数(PDI)应有所增加。

3. 盐浓度梯度透析

  1. 根据最终期望的聚合物囊泡特性,配制150 mL所需盐缓冲液,其中氯化钠浓度可选择50 mM、100 mM或200 mM。通常情况下,盐浓度越高,聚合物囊泡的伸长程度越大。
  2. 取已透析并表征过的聚合物囊泡溶液,重新放入透析装置中。将装有样品的透析装置置于150 mL相应盐溶液中,轻轻搅拌18小时。
    ​注意:形态调控后的聚合物囊泡可在等渗溶液中储存,并在长达7天内保持其形态稳定。

4. 形状调控的聚合物囊泡表征

  1. 形态调控完成后,通过动态光散射(DLS)、透射电子显微镜(TEM)和扫描电子显微镜(SEM)对聚合物囊泡进行表征。若在电子显微镜下无法观察到聚合物囊泡,可使用醋酸铀酰进行背景染色。
  2. 按照步骤1.5所述进行DLS测量,特别注意与球形聚合物囊泡相比的多分散系数(PDI)测量结果,因为PDI的变化表明聚合物囊泡的形态发生了有效改变。
  3. 确保成像时使用适当的对照,尤其是未经形态调控的聚合物囊泡,以验证该方法的成功实施。

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结果

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表2展示了按照步骤1进行实验时的预期结果。请注意,在聚合物囊泡(polymersomes)的制备过程中,DMSO被用作PEG-PLA和PEG-PLGA的溶剂。虽然可使用其他与水混溶的溶剂替代DMSO以溶解共聚物,但可能会影响实验结果。通常多分散系数(PDI)应小于0.2,表明形成了单一分散性的聚合物囊泡17。需注意的是,疏水性增加会导致聚合物囊泡直径和PDI的偏差增大。若在实验过程中所得聚合物囊泡直径与本表中报告值存在显著差异,最常见的原因是纳米颗粒浓度过低,表现为该样品的计数率较低。

图2展示了在未添加盐梯度前非形状调控型聚合物囊泡的形态。此处展示的是按照实验方案步骤1制备的基于PEG-PLA的聚合物囊泡的代表性结果。无论使用何种嵌段共聚物,透射电子显微镜(TEM)图像均应显示整体呈球形结构,并具有较厚的外圈线条,提示存在膜结构。在无NaCl条件下,PEG-PLA聚合物囊泡在扫描电子显微镜(SEM)中呈现球形结构,其表面粗糙,反映出PEG形...

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讨论

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自组装体系 notoriously 难以控制。其最终性质,包括尺寸、形状和结构,取决于所选两亲性分子的疏水性质以及选定的溶剂环境。两亲性嵌段共聚物倾向于形成球形结构,这可以最小化吉布斯自由能并达到热力学平衡23,从而形成聚合物体(polymersomes)。由于其处于热力学平衡状态,聚合物体在拉长或改变形状方面具有显著挑战性,因此相较于固体纳米颗粒,相关研究较少。溶剂驱动法已与基于聚乙二醇-嵌段-聚苯乙烯(PEG-b-polystyrene, PS)的聚合物体进行了广泛联合研究12,13,24,25,26,27。然而,由于每种嵌段共聚物在采用基于溶剂的方法时都需要重新优化实验方案,该方法尚未被广泛应...

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披露

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作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

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本项目部分由美国国立卫生研究院项目(项目编号:5P20GM103499-19)通过学生自主研究项目计划资助。本研究还部分得到了克莱姆森大学创意探究计划的支持。我们同时感谢Nicholas L'Amoreaux和Aon Ali,他们最初参与了本实验方案的建立,并发表了本文引用的第一篇相关论文14

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
15*45 毫升螺口小瓶,带盖Fisherbrand9609104000
二甲基亚砜Fisher ChemicalD128-1
二甲基亚砜BDHBDH1115-1LP
Isoremp 搅拌器、加热板及加热搅拌板Fisher scientificCIC00008110V19
LEGATO 130 注射泵kd Scientific788130
PEG(1000)-b-PLA(5000),双嵌段聚合物Polysciences Inc24381-1重复实验时请注意分子量
聚乙二醇(2000)甲醚-嵌段-聚乳酸-共-乙醇酸(4500)Sigma aldrich764825-1G重复实验时请注意分子量
一次性注射器/BD PrecisionGlide 针头组合,无菌,BD 医疗BD medicalBD305620结核菌素
氯化钠BDHBDH9286
Zetasizer Nano ZSMalvern

参考文献

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  1. Varma, L. T., et al. Recent advances in self-assembled nanoparticles for drug delivery. Current Drug Delivery. 17 (4), 279-291 (2020).
  2. Salatin, S., Maleki Dizaj, S., Yari Khosroushahi, A. Effect of the surface modification, size, and shape on cellular uptake of nanoparticles. Cell Biology International. 39 (8), 881-890 (2015).
  3. Baio, J. E., et al. Reversible activation of pH-sensitive cell penetrating peptides attached to gold surfaces. Chemical Communications. 51 (2), 273-275 (2015).
  4. Zhou, Y., et al. Mesoporous silica nanoparticles for drug and gene delivery. Acta Pharmaceutica Sinica B. 8 (2), 165-177 (2018).
  5. Champion, J. A., Mitragotri, S. Role of target geometry in phagocytosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (13), 4930-4934 (2006).
  6. Banerjee, A., Qi, J., Gogoi, R., Wong, J., Mitragotri, S. Role of nanoparticle size, shape and surface chemistry in oral drug delivery. Journal of Controlled Release. 238, 176-185 (2016).
  7. Kolhar, P., et al. Using shape effects to target antibody-coated nanoparticles to lung and brain endothelium. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (26), 10753-10758 (2013).
  8. Meng, F., Zhong, Z., Feijen, J. Stimuli-responsive polymersomes for programmed drug delivery. Biomacromolecules. 10 (2), 197-209 (2009).
  9. Iqbal, S., Blenner, M., Alexander-Bryant, A., Larsen, J. Polymersomes for therapeutic delivery of protein and nucleic acid macromolecules: from design to therapeutic applications. Biomacromolecules. 21 (4), 1327-1350 (2020).
  10. Discher, D. E., Ahmed, F. Polymersomes. Annual review of biomedical engineering. 8, 323-341 (2006).
  11. Seifert, U., Berndl, K., Lipowsky, R. Shape transformations of vesicles: Phase diagram for spontaneous- Curvature and bilayer-coupling models. Physical Review A. 44 (2), 1182-1202 (1991).
  12. Rikken, R. S. M., et al. Shaping polymersomes into predictable morphologies via out-of-equilibrium self-assembly. Nature Communications. 7, 1-7 (2016).
  13. Kim, K. T., et al. Polymersome stomatocytes: Controlled shape transformation in polymer vesicles. Journal of the American Chemical Society. 132 (36), 12522-12524 (2010).
  14. L'Amoreaux, N., Ali, A., Iqbal, S., Larsen, J. Persistent prolate polymersomes for enhanced co-delivery of hydrophilic and hydrophobic drugs. Nanotechnology. 31 (17), 175103(2020).
  15. Salva, R., et al. Polymersome shape transformation at the nanoscale. ACS Nano. 7 (10), 9298-9311 (2013).
  16. Skoczen, S. L., Stern, S. T. Characterization of Nanoparticles Intended for Drug Delivery. Methods in Molecular Biology. 1682, Springer New York. New York, NY. (2018).
  17. Bhattacharjee, S. DLS and zeta potential - What they are and what they are not. Journal of Controlled Release. 235, 337-351 (2016).
  18. Men, Y., Li, W., Lebleu, C., Sun, J., Wilson, D. A. Tailoring polymersome shape using the Hofmeister effect. Biomacromolecules. 21 (1), 89-94 (2020).
  19. Decuzzi, P., et al. Size and shape effects in the biodistribution of intravascularly injected particles. Journal of Controlled Release. 141 (3), 320-327 (2010).
  20. Liu, Y., Tan, J., Thomas, A., Ou-Yang, D., Muzykantov, V. R. The shape of things to come: Importance of design in nanotechnology for drug delivery. Therapeutic Delivery. 3 (2), 181-194 (2012).
  21. Tao, L., et al. Shape-specific polymeric nanomedicine: Emerging opportunities and challenges. Experimental Biology and Medicine. 236 (1), 20-29 (2011).
  22. L'Amoreaux, N., Ali, A., Iqbal, S., Larsen, J. Persistent prolate polymersomes for enhanced co-delivery of hydrophilic and hydrophobic drugs. BioRxiv. , 796201(2019).
  23. Chandler, D. Interfaces and the driving force of hydrophobic assembly. Nature. 437 (7059), 640-647 (2005).
  24. Wong, C. K., Mason, A. F., Stenzel, M. H., Thordarson, P. Formation of non-spherical polymersomes driven by hydrophobic directional aromatic perylene interactions. Nature Communications. 8 (1), (2017).
  25. Abdelmohsen, L. K. E. A., et al. Shape characterization of polymersome morphologies via light scattering techniques. Polymer. 107, 445-449 (2016).
  26. Men, Y., et al. Nonequilibrium Reshaping of polymersomes via polymer addition. ACS Nano. 13 (11), 12767-12773 (2019).
  27. Meeuwissen, S. A., Kim, K. T., Chen, Y., Pochan, D. J., van Hest, J. C. M. Controlled shape transformation of polymersome stomatocytes. Angewandte Chemie. 123 (31), 7208-7211 (2011).
  28. Wong, C. K., et al. Faceted polymersomes: A sphere-to-polyhedron shape transformation. Chemical Science. 10 (9), 2725-2731 (2019).
  29. Chidanguro, T., Ghimire, E., Simon, Y. C. Shape-transformation of polymersomes from glassy and crosslinkable ABA triblock copolymers. Journal of Materials Chemistry B. 8 (38), 8914-8924 (2020).
  30. Van Oers, M. C. M., Rutjes, F. P. J. T., Van Hest, J. C. M. Tubular polymersomes: A cross-linker-induced shape transformation. Journal of the American Chemical Society. 135 (44), 16308-16311 (2013).
  31. Che, H., et al. Pathway dependent shape-transformation of azide-decorated polymersomes. Chemical Communications. 56 (14), 2127-2130 (2020).
  32. Haryadi, B. M., et al. Nonspherical nanoparticle shape stability is affected by complex manufacturing aspects: Its implications for drug delivery and targeting. Advanced Healthcare Materials. 8 (18), 11-13 (2019).
  33. Katterman, C., Pierce, C., Larsen, J. Combining nanoparticle shape modulation and polymersome technology in drug delivery. ACS Applied Bio Materials. , (2021).

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PEG PLA

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