针对从纯培养物中提取辅因子 F420 的方法进行了优化,用于在纯培养和环境样品中对 F420 尾链长度进行液相色谱分离与分析。
方法文章
针对从纯培养物中提取辅因子 F420 的方法进行了优化,用于在纯培养和环境样品中对 F420 尾链长度进行液相色谱分离与分析。
辅因子 F420 作为氢负离子载体,在多种细菌和古菌类群的初级与次级代谢中发挥核心作用。该辅因子最著名的功能是在产甲烷过程中促进热力学上难以进行的反应。由于不同生物体中其多谷氨酸侧链的长度存在差异,因此对侧链长度的分析可能成为区分和表征不同类群及代谢途径的有力工具。本文所述方案描述了辅因子 F420 的提取及其检测方法的优化,该方法采用固相萃取联合高效液相色谱分析,无需依赖培养或分子生物学手段。该方法已应用于获取土壤、厌氧污泥及纯培养物中微生物群落辅因子 F420 表达的额外信息,并通过加标实验进行了验证。研究成功获得了在可控的产甲烷纯培养物以及厌氧消化污泥和土壤等环境样品中,氢营养型和乙酸裂解型产甲烷菌不同的 F420 侧链长度分布图谱。
F420 是一种广泛存在但常被忽视的辅因子,在生物体的初级和次级代谢过程中作为必需的双电子氢化物载体发挥作用 古菌 和 细菌1,2. F420 是一种5-脱氮黄素,结构上与黄素类似,其化学和生物学性质更接近于NAD+ 或 NADP+由于异咯嗪环5号位的氮被碳取代,它成为一种强还原剂,因此表现出-340 mV的低标准氧化还原电位1,3. F420 包含一个5-脱氮黄素环和一个2-磷酸-L-乳酸连接基团(F420-0)。可在该分子上连接一个含有 n+1 个谷氨酸单体的寡聚谷氨酸链(F420-n+14.
长期以来,辅因子 F420 仅被认为存在于古菌(Archaea)和放线菌(Actinobacteria)中。这一观点现已基本被推翻。近期研究表明,F420 广泛分布于多种栖息环境(如土壤、湖泊和人类肠道)中的变形菌门(Proteobacteria)、绿弯菌门(Chloroflexi)以及可能的厚壁菌门(Firmicutes)等需氧和厌氧生物中1,5。2019年,Braga 等人6发现,变形菌Paraburkholderia rhizoxinica 能够产生一种独特的 F420 衍生物,其侧链为3-磷酸甘油酸而非2-磷酸乳酸,这种衍生物可能在多种生境中广泛存在。在古菌(Archaea)域内,F420 已在多个进化分支中被发现,包括产甲烷菌7、甲烷氧化菌8,9 和硫酸盐还原菌10,并推测其也可在奇古菌门(Thaumarchaeota)中合成11。 F420 最为人熟知的是作为氢营养型和甲基营养型产甲烷过程中必需的氧化还原辅酶。其还原形式(F420H2)可作为电子供体,用于还原亚甲基四氢甲烷蝶呤(methylene-H4MPT,Mer)和亚甲基-H4MPT12,13。此外,F420H2 还可在含有细胞色素的产甲烷菌中作为非依赖氢气的电子传递链中的电子载体12,14。同时,F420 的氧化形式在420 nm激发光下会发出特征性的蓝绿色荧光,便于在显微镜下检测产甲烷菌(图1)。由于其具有较低的氧化还原电位,F420 能够实现以下功能:(i)介导多种原本难以还原或有毒的有机化合物的外源性还原;(ii)在链霉菌属(Actinobacteria 门)中参与四环素和林可酰胺类抗生素或植物毒素的合成;(iii)在分枝杆菌(Actinobacteria 门)中增强对氧化应激、亚硝化应激或其他不利条件的耐受性1,5,15,16,17,18,19,20,21,22。因此,依赖 F420 的氧化还原酶在工业、制药领域以及污染环境的生物修复中具有广阔的应用前景1,23。尽管已有上述新发现,F420 辅因子在放线菌(Actinobacteria)或其他细菌门类中的确切功能仍知之甚少。
F420 的生物合成至少存在三条途径2,6,24。最初,该合成途径分为5-脱氮黄素的生物合成和2-磷酸乳酸代谢两个分支。F420 分子的活性部分由FO合成酶催化合成,其底物为酪氨酸和5-氨基-6-核糖基氨基-2,4(1H,3H)-嘧啶二酮,产物为处于黄素单核苷酸水平的发色团FO。在目前公认的乳酸代谢分支中,L-乳酸由L-乳酸激酶(CofB)催化磷酸化生成2-磷酸-L-乳酸;随后,2-磷酸-L-乳酸在2-磷酸-L-乳酸鸟苷酰转移酶(CofC)的作用下发生鸟苷酰化,生成L-乳酰-2-二磷酸-5'-鸟苷。下一步,2-磷酸-L-乳酸转移酶(CofD)将L-乳酰-2-二磷酸-5'-鸟苷与FO连接,形成F420-02。最后,F420-0:ɣ-谷氨酰配体酶(CofE)将谷氨酸单体连接到F420-0上,生成最终的辅因子6,其连接的谷氨酸数量可变23,25。不同生物体中所连接的谷氨酸残基数表现出不同的模式,产甲烷菌中的谷氨酸链较短,而分枝杆菌中的链较长2,25,26。通常,产甲烷菌的侧链长度为2至3个谷氨酸残基,在乙酸裂解型产甲烷菌Methanosarcina sp.中最多可达5个;而Mycobacterium sp.中的侧链长度则为5至7个谷氨酸残基2,25,26,27。然而,最近的研究表明,长链F420与F420依赖性氧化还原酶的结合亲和力高于短链F420;此外,结合后的长链F420可提高酶对底物的亲和力,但会降低其催化转换速率23。
辅因子 F420 的检测通常基于其荧光特性。因此,常采用反相(RP)-HPLC27,28 分离其寡谷氨酸衍生物。最近,Ney 等人成功地使用四丁基氢氧化铵作为离子对试剂,针对带负电荷的谷氨酸侧链,有效增强了在 RP-HLPC 上的分离效果5。本文介绍了一种不仅适用于纯培养物,也适用于多种环境样品(如土壤和消化池污泥)中辅因子 F420 的样品制备、后续裂解、提取、纯化、分离及定量方法。
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注意:辅因子 F420 的提取与分析包括三个步骤:样品裂解、通过固相萃取(SPE)对辅因子进行预纯化,以及通过荧光检测的离子配对反相高效液相色谱法(IP-RP-HPLC)检测辅因子。在开始之前,请按照表1中的说明准备材料和试剂。
1. 样品裂解
2. 通过固相萃取(SPE)对辅因子 F420 进行预纯化
注意:固相萃取(SPE)的所有步骤均在室温下进行
3. 辅因子 F420 的检测
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将嗜热产甲烷古菌(Methanosarcina thermophila)和Methanoculleus thermophilus的纯培养物在合适的培养基中进行培养,具体方法如前所述29,30。Methanosarcina thermophila以甲醇作为能源,而Methanoculleus thermophilus则在H2/CO2条件下培养。通过显微镜观察检测其生长情况,并通过气相色谱法测定甲烷(CH4)产量以评估其活性,检测方法如前所述31。纯培养物用于按照本文所述方案提取辅因子F420。此外,还于2020年秋季采集了环境样品,包括中温厌氧消化反应器污泥样品(奥地利采尔的污水处理厂;有关污泥参数的详细信息请参见文献32)、农业利用的草地土壤样品(奥地...
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对于产甲烷纯培养物中辅因子 F420 的评估,可通过显微观察来可视化相关微生物的生长与活性(荧光显微镜)(图1)。对于来自自然环境的样品,由于其他荧光微生物、有机和无机颗粒的干扰,使用显微镜检测或定量 F420 的应用受到限制。在此情况下,提取 F420 并随后采用高效液相色谱法(HPLC)进行荧光分析(如先前所述5),不仅可提供辅因子 F420 的总浓度信息,还可获得其多谷氨酸侧链长度的分布情况。
对于辅因子 F420 的提取,压力-温度处理被证明具有很高的效率(图2),且与先前的研究结果一致5,27,33。通过该方法并结...
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作者无任何利益冲突需要披露。
我们衷心感谢 Colin Jackson 教授在纯化辅因子 F420 方面提供的支持。本研究得到了蒂罗尔科学基金(TWF)和因斯布鲁克大学(Publikationsfonds)的资助。我们非常感谢 GPS、HK、SB、GG 和 HB 提供的支持。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
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