采用 His标签纯化、透析和活化方法,以提高在细菌中表达的可溶性、有活性的基质金属蛋白酶-3 催化结构域蛋白的产量。通过 SDS-PAGE 凝胶分析蛋白组分。
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采用 His标签纯化、透析和活化方法,以提高在细菌中表达的可溶性、有活性的基质金属蛋白酶-3 催化结构域蛋白的产量。通过 SDS-PAGE 凝胶分析蛋白组分。
基质金属蛋白酶(MMPs)属于含锌金属蛋白酶(metzincin蛋白酶)家族,在细胞外基质(ECM)的降解与重塑过程中发挥核心作用,同时也参与多种生长因子和细胞因子的相互作用。特定MMPs的过表达与多种疾病相关,例如癌症、神经退行性疾病和心血管疾病。近年来,MMPs成为研究热点,被视为开发治疗MMP过表达相关疾病药物的重要靶点。
为了研究溶液中基质金属蛋白酶(MMP)的作用机制,需要更简便且稳定的重组蛋白表达与纯化方法,以获得具有活性且可溶的MMP。然而,大多数MMP的催化结构域无法在 大肠杆菌 (E. coli由于缺乏翻译后修饰机制,可溶性表达往往难以实现,而哺乳动物表达系统通常成本较高且产量较低。基质金属蛋白酶(MMP)的包涵体必须经过繁琐且耗时的纯化与复性过程,这显著降低了具有天然构象的MMP产量。本文介绍一种利用Rosetta2(DE3)pLysS(以下简称R2DP)细胞表达基质金属蛋白酶-3催化结构域(MMP-3cd)的实验方案,该蛋白在N端带有His标签并连接前体结构域(Hisx6-pro-MMP-3cd),可用于亲和层析纯化。R2DP细胞含有一种氯霉素抗性质粒,该质粒携带在细菌表达系统中通常罕见的密码子,从而增强真核蛋白的表达水平。与传统用于重组蛋白表达的BL21(DE3)菌株相比,使用该新菌株可提高纯化的Hisx6-pro-MMP-3cd产量。经激活和脱盐处理后,前体结构域与N端His标签被切除,从而获得具有活性的MMP-3cd,可立即用于多种实验应用 体外 应用。该方法无需昂贵的设备或复杂的融合蛋白,可实现重组人源MMP在细菌中的快速生产。
大多数复杂的真核蛋白在表达后会经历复杂的翻译后修饰,需要高度辅助的蛋白质折叠过程和辅因子才能具备功能1。由于成本高昂,以及缺乏高效且稳定的表达与纯化方法,即使在小规模的实验室实验中,利用细菌宿主生产大量可溶性人源蛋白仍是一项重大挑战2,3。基质金属蛋白酶(MMPs)是一类分子量较大的人源内肽酶,在大肠杆菌(E. coli)中表达时通常形成不溶性的包涵体。提取可溶性人源MMPs往往需要繁琐且耗时的增溶与复性过程4。
基质金属蛋白酶(MMPs)在生理和病理过程中均发挥关键作用。人类MMP家族包含23种锌依赖性内肽酶,根据结构和底物特异性进行分类,尽管其催化结构域高度保守,但表达具有差异性5,6。MMPs以无活性的酶原形式分泌,其活性受翻译后激活机制以及金属蛋白酶组织抑制剂(TIMPs)等内源性抑制因子的调控7,8,9,
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1. MMP 表达
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进行SDS-PAGE检测样品时,由于蛋白以不溶性包涵体形式表达,裂解并超声处理后的组分中应含有极少或不含Hisx6-pro-MMP-3cd蛋白,因为此时蛋白尚未在尿素中重新溶解。图3比较了来自BL21(DE3)细胞和R2DP细胞的Hisx6-pro-MMP-3cd蛋白的His标签纯化洗脱组分。在透析前,分别将BL21(DE3)细胞和R2DP细胞的洗脱组分各自合并。各步骤的组分在蛋白脱盐后进行电泳分析(图4)。所有Hisx6-pro-MMP-3cd样品均在约30 kDa处显示一条条带,而在去除His标签和前结构域后,有活性的MMP-3cd在约20 kDa处出现条带(图4和补充图S1)。
在纯化和脱盐 BL21(DE3) 与 R2DP 菌株培养物后,测定 E. coli 培养液中每升所获得的总蛋白产量(表 1)。使用 R2D.......
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大规模生产可溶性人源重组基质金属蛋白酶(MMP)仍是一项具有挑战性的任务。哺乳动物细胞能够表达具有功能的MMP,但成本高昂且耗时较长;而大肠杆菌(E. coli)虽能快速产生大量MMP包涵体,但这些包涵体必须经过纯化和复性11,16。R2DP细胞显著提高了MMP包涵体的产量,从而实现更经济高效的MMP复性过程。然而,大肠杆菌(E. coli)缺乏折叠MMP所需的翻译后修饰机制,尽管经过基因工程改造的菌株表达水平显著提高,但在去除变性剂后,仅部分中间产物能够正确折叠4。因此,在复性和活化过程中仍可能出现MMP沉淀。这些结果表明,在经过复性、活化和脱盐后,纯化的Hisx6-pro-MMP-3cd产量有相当一部分会损失。
通过增加透析步骤并检测MMP-3cd和APMA的浓度,可进一步优化这些阶段。然而,每升培养物中,R2DP细胞产生的功能性MMP-3cd产量比BL21(DE3)细胞高49倍.......
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作者声明不存在任何竞争性经济利益。
作者谨此感谢佛罗里达州杰克逊维尔梅奥诊所(Mayo Clinic in Jacksonville, Florida)的 Evette Radisky 博士和 Alexandra Hockla,她们提供了 pET-3a-pro-MMP-3cd 质粒作为克隆 Hisx6pro-MMP-3cd 基因的模板,并提出了宝贵意见;同时感谢内华达大学里诺分校内华达基因组中心(Nevada Genomics Center at the University of Nevada, Reno)的 Paul Hartley 博士提供 DNA 测序服务。作者还感谢 Cassandra Hergenrader 在部分蛋白质表达实验中的协助。M.R.-S. 谨此感谢 NIH-P20 GM103650-COBRE 神经科学整合研究资助项目及内华达大学里诺分校研究发展计划(UNR R&D 显微种子基金奖
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 0.22 µm 无菌滤器 | Sigma Aldrich | SLGP033RS | 用于在纯化前去除蛋白提取物中的部分污染物,并防止镍-NTA柱堵塞 |
| 1 L 锥形瓶 | Thermo Fisher Scientific | S76106F | n/a |
| 1 L 玻璃瓶 | Thermo Fisher Scientific | 06-414-1D | n/a |
| 1.5 mL 微量离心管 | Thermo Fisher Scientific | 02-682-002 | n/a |
| 15 mL 圆锥形离心管 | Thermo Fisher Scientific | 339650 | n/a |
| 18 G,1 英寸斜面针头 | Amazon | B07S7VBHM2 | 与透析夹板联合使用 |
| 2 mL 脱盐柱 | Thermo Fisher Scientific | 89890 | 去除激活后残留的 APMA |
| 2-(N-吗啉代)乙磺酸 (MES) | Thermo Fisher Scientific | AAA1610422 | n/a |
| 250 mL 圆锥瓶缓冲垫 | Thermo Fisher Scientific | 05-538-53A | 在大体积离心过程中稳定圆锥瓶 |
| 250 mL 圆锥瓶 | Thermo Fisher Scientific | 05-538-53 | n/a |
| 400 mL 搅拌式超滤池 | Sigma Aldrich | UFSC40001 | 可浓缩比离心过滤装置更大体积的样品。Rosetta2(DE3)pLysS 细胞产生的蛋白量较高,可能超过离心过滤装置 15 mL 的容量限制 |
| 4-氨基苯基汞乙酸盐 (APMA) | Sigma Aldrich | A9563-5G | 通过切割前肽激活 MMP-3 |
| 5 mL 注射器 | Thermo Fisher Scientific | NC0829167 | 与透析夹板联合使用 |
| 50 mL 圆锥形离心管 | Thermo Fisher Scientific | 339650 | 用于多个纯化步骤中的样品储存 |
| 50 mL 再浓缩管 | Sigma Aldrich | UFC901024D | 用于透析后蛋白样品的再浓缩或去除污染物 |
| 琼脂 | Thermo Fisher Scientific | BP1423-500 | 缓冲液成分,使高压灭菌后的 LB 培养基在冷却后凝固 |
| 氨苄青霉素 | Thermo Fisher Scientific | BP1760-25 | 与 pET3a 载体联用的抗生素;在 LB 培养基中使用浓度为 100 µg/mL |
| BamHI | NEB | R3136S | 与 pET3a 载体联用的限制性内切酶 |
| 氯化钙 (CaCl2) | Thermo Fisher Scientific | 600-30-23 | 钙离子可稳定 MMP 的结构 |
| 涂布棒 | Thermo Fisher Scientific | 50-189-7544 | 转化后可用于将细胞均匀涂布于培养皿表面 |
| 氯霉素 | Thermo Fisher Scientific | 22-055-125GM | 与 pET3a 载体联用的抗生素;在 LB 培养基中使用浓度为 34 µg/mL |
| 透析缓冲液 1 | n/a | n/a | 20 mM Tris-HCl (pH 8.0),150 mM NaCl,10 mM CaCl2,1 µM ZnCl2,4 M 尿素 |
| 透析缓冲液 2 | n/a | n/a | 20 mM Tris-HCl (pH 8.0),150 mM NaCl,10 mM CaCl2,1 µM ZnCl2,2 M 尿素 |
| 透析缓冲液 3 | n/a | n/a | 20 mM Tris-HCl (pH 8.0),150 mM NaCl,10 mM CaCl2,1 µM ZnCl2 |
| 透析夹 | Thermo Fisher Scientific | 68011 | 与蛇皮透析管联合使用 |
| 透析管 | Thermo Fisher Scientific | 88243 | 另一种透析方法,可容纳更大体积的样品,但样品损失风险较高 |
| 消化缓冲液 | NEB | B7204S | 用于消化 pET3a 载体 |
| 一次性比色皿 | Thermo Fisher Scientific | 21-200-257 | 用于测量细菌培养过程中的 OD 值以监测生长和表达情况 |
| 二硫苏糖醇 (DTT) | Thermo Fisher Scientific | D107125G | 通过还原二硫键协助蛋白变性 |
| DNA 连接反应混合液 | NEB | E2621S | 用于连接 Hisx6-pro-MMP-3cd PCR 产物与酶切后的 pET3a 载体 |
| DNase I | NEB | M0303S | 内切核酸酶,用于降解可能影响后续蛋白纯化的不利 DNA 污染物 |
| 乙醇 | Thermo Fisher Scientific | A995-4 | n/a |
| 乙二胺四乙酸 (EDTA) | Thermo Fisher Scientific | J15694-AE | 用于变性过程,防止氧化及二硫键的形成 |
| 凝胶回收试剂盒 | Promega | A9281 | 从琼脂糖凝胶中分离并纯化 DNA |
| 甘油 | Thermo Fisher Scientific | G33-500 | 用于制备甘油菌,于 -80 °C 冻存 |
| 重力流层析柱 | BioRad | 7321010 | 用于纯化带有重组组氨酸标签的蛋白 |
| 高效转化感受态细胞 | NEB | C2987 | 具有高转化效率的感受态细胞,可提高将 N 端 His 标签克隆至 pET3a-pro-MMP-3cd 构建体的成功率 |
| HT 洗脱缓冲液 | n/a | n/a | 20 mM Tris-HCl (pH 8.0),50 mM NaCl,6 M 尿素,250 mM 咪唑。调节 pH 至 7.4 |
| HT 平衡缓冲液 | n/a | n/a | 20 mM Tris-HCl (pH 8.0),50 mM NaCl,6 M 尿素。调节 pH 至 7.4 |
| HT 再生缓冲液 | n/a | n/a | 20 mM MES,0.1 M NaCl。调节 pH 至 5.0 |
| HT 洗涤缓冲液 | n/a | n/a | 20 mM Tris-HCl (pH 8.0),50 mM NaCl,6 M 尿素,25 mM 咪唑。调节 pH 至 7.4 |
| 盐酸 (HCl) | Thermo Fisher Scientific | A144C-212 | 用于调节缓冲液 pH |
| 咪唑 | Thermo Fisher Scientific | AAA1022122 | 模拟组氨酸侧链基团,用于将非特异性结合的蛋白与 His 标签目标蛋白分离 |
| 包涵体缓冲液 | n/a | n/a | 20 mM Tris-HCl (pH 8.0),1 mM EDTA,100 mM NaCl,5 mM DTT,2% v/v Triton X-100,0.5 M 尿素。调节 pH 至 8.0 |
| 异丙基-ß-D-硫代半乳糖苷 (IPTG) | Thermo Fisher Scientific | FERR0392 | 诱导 pET3a 载体中目标基因表达的试剂。配制 0.5 mL 1 M 分装液,过滤除菌后于 -20 °C 保存 |
| LB Amp CamR 培养基 | n/a | n/a | 应倒入无菌 1 L 瓶或 1 L 锥形瓶中。配制 1 L 培养基时加入 25 g LB 肉汤,高压灭菌。冷却至 50 °C 以下后,加入氨苄青霉素至 100 µg/mL 和氯霉素至 34 µg/mL |
| LB Amp CamR 平板 | n/a | n/a | 应倒入无菌培养皿中,倒至培养皿盖完全覆盖为止。1 L 培养基可制备 40–60 个平板。配制 1 L 培养基时加入 25 g LB 肉汤和 16 g 琼脂,高压灭菌。冷却至 50 °C 以下后,加入氨苄青霉素至 100 µg/mL 和氯霉素至 34 µg/mL |
| LB 肉汤 | Thermo Fisher Scientific | BP1426-2 | 预先混合了胰蛋白胨、酵母提取物和氯化钠 |
| 裂解缓冲液 | n/a | n/a | 50 mM Tris-HCl (pH 8.0),1 mM EDTA,100 mM NaCl,0.133 g/mL 溶菌酶,0.49% v/v Triton X-100。调节 pH 至 8.0 |
| 溶菌酶 | MP Biomedicals | 195303 | 用于蛋白提取,是一种可裂解细菌细胞壁的酶 |
| 质粒小提试剂盒 | Promega | A1330 | 若成功,可从转化子中提取 pET3a-pro-MMP-3cd 构建体 |
| NdeI | NEB | R0111S | 与 pET3a 载体联用的限制性内切酶 |
| Ni-NTA 树脂 | Thermo Fisher Scientific | PI88221 | 用于结合重组 His 标签蛋白。该强相互作用可通过高浓度咪唑洗脱而解除 |
| 非离子型表面活性剂 | Thermo Fisher Scientific | PI28316 | 用于防止 MMP 聚集的储存用去垢剂。可减少 MMP 表面疏水残基与水分子之间的相互作用,同时不破坏其催化活性 |
| PCR 反应混合液 | NEB | M0492S | 用于将 N 端 His 标签插入 pET3a-pro-MMP-3cd 载体的 PCR 试剂 |
| pET 质粒 | Addgene | n/a | pET3a 载体提供氨苄青霉素抗性、目标基因的可诱导表达以及使用 T7 引物进行测序的功能 |
| 培养皿 | VWR | 25384-342 | 用于在 LB 琼脂培养基上涂布转化子 |
| R2DP 细胞 | Novagen | 714033 | BL21 衍生菌株,可增强真核蛋白的表达,含有在大肠杆菌中稀有密码子对应的 tRNA |
| SOC 生长培养基 | NEB | B9020S | 转化过程中用于快速生长的非选择性培养基 |
| 氯化钠 (NaCl) | Thermo Fisher Scientific | BP358-1 | 用于缓冲液配制,并有助于维持蛋白稳定性 |
| 脱氧胆酸钠 | Thermo Fisher Scientific | PI89905 | 用于蛋白提取的去垢剂,可裂解细胞壁 |
| 溶解缓冲液 | n/a | n/a | 20 mM Tris-HCl (pH 8.0),50 mM NaCl,10 mM DTT,6 M 尿素。调节 pH 至 8.0 |
| Tris 碱 | Thermo Fisher Scientific | BP152-1 | 常用于生理 pH 范围的缓冲液,对温度敏感 |
| Triton X-100 | Thermo Fisher Scientific | M1122980101 | 用于细胞裂解的去垢剂 |
| 尿素 | Thermo Fisher Scientific | AAJ75826A7 | 第一种破坏蛋白二级结构的变性剂 |
| 氯化锌 (ZnCl2) | Thermo Fisher Scientific | AAA162810E | 稳定 MMP 结构。锌离子存在于 MMP-3 的催化位点中 |
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