Method Article

使用三天发育中的雏鸡胚胎生成钩缺血再灌注模型

DOI:

10.3791/63288

February 19th, 2022

In This Article

Summary

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本文描述了使用脊髓针定制钩在3天雏鸡胚胎中的缺血再灌注(I / R)建模,以更好地了解I / R发展和治疗。该模型简单,快速且价格低廉。

Abstract

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缺血和再灌注 (I/R) 疾病(如心肌梗死、卒中和外周血管疾病)是疾病和死亡的一些主要原因。目前有许多 体外 体内 模型可用于研究疾病或受损组织中的I / R机制。然而,迄今为止,还没有报告 任何蛋内 I / R模型,这将允许更好地了解I / R机制和更快的药物筛选。本文描述了在3天雏鸡胚胎中使用脊柱针定制钩进行I / R建模,以了解I / R发育和治疗机制。我们的模型可用于研究DNA,RNA和蛋白质水平的异常。此方法简单,快速且价格低廉。当前模型可以独立使用,也可以与现有的 体外体内 I / R模型结合使用。

Introduction

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缺血再灌注组织损伤与许多病理有关,包括心脏病发作、缺血性卒中、创伤和外周血管疾病12345。这主要是由于缺乏对疾病进展的全面了解以及缺乏有效的研究模型。缺血性损伤发生在组织特定区域的血液供应被切断时。结果,缺血组织最终坏死,尽管速率因组织而异。因此,恢复血液供应可能有助于减轻损害。然而,已经观察到,在某些情况下,再灌注比单独的缺血造成的组织损伤更多678。因此,需要了解缺血再灌注的分子和细胞机制,以开发有效的治疗干预措施。目前,尚无针对 I/R 损伤的有效治疗方法。这种差异促使创建了新的实验模型,从体外体内模型,以解决现有问题910111213

雏鸡胚胎(Gallus gallus domesticus)因其易于获取,道德可接受性,相对较大的尺寸(与其他胚胎相比),低成本和快速生长而被广泛用于研究14。我们使用雏鸡胚胎在发育72小时时通过在脊髓针的帮助下闭塞和释放右维特林动脉来创建 卵内 I / R。我们将其命名为 Hook-I/R 缺血再灌注模型(图 1)。本研究中使用的模型能够准确模拟所有下游过程,包括氧化和炎症途径,这些途径通常与I / R损伤相关151617

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Protocol

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Era勒克瑙医学院和医院的机构动物伦理委员会发布了一份书面豁免,指出根据动物实验控制和监督委员会(CPCSEA)进行这些实验不需要正式批准。然而,遵循标准操作程序以尽量减少胚胎痛苦的可能性。

1. 缓冲液制备(表1)

  1. 准备林格的解决方案
    1. 为了制备林格溶液,将0.72克NaCl(123mM),0.017gCaCl2(1.53mM),0.037gKCl(4.96mM)溶解在70mL无菌蒸馏H2O中,最终体积为100mL。 将pH值调节至7.4。让它完全溶解并高压灭菌。然后,通过0.22μm过滤器过滤,等分试样成一次性使用量(约10mL)并在室温下储存。
  2. 准备生理盐水(0.9%氯化钠,氯化钠)。
    1. 在70 mL无菌蒸馏H2 O中,溶解0.9gNaCl(154mM)。将体积补到 100 mL。在121°C下高压灭菌15分钟。 如有必要,用0.1 N HCl或0.1 N NaOH调节pH值至7.4。在15 mL无菌离心管中制备10 mL等分试样,并在室温下储存。
  3. 准备70%乙醇(v / v)。
    1. 将 70 mL 纯乙醇(摩尔重量 46.07 g/L)与 30 mL 无菌 H2O 混合。无需消毒。
  4. 准备1x磷酸盐缓冲液盐水(1x PBS)。
    1. 将0.144克Na2HPO4·7H2O(5.37 mM),0.8 g NaCl(136.8 mM),0.2 g KCl(26.8 mM),0.2 g KH2PO4(14. 6 mM)加入70 mL蒸馏水中,准备100 mL 1x PBS。 溶解并补足体积至100 mL,并在121°C下高压灭菌15分钟。 如果需要,将pH值降至7.4,加入几滴0.1 N HCl或0.1 N NaOH。在15 mL无菌离心管中等分试样10 mL并储存在室温下。

2. 第一天

  1. 安排鸡蛋灭菌所需的所有工具(70%乙醇,清洁湿巾,蛋架和OHP标记)。
  2. 用薄纸巾用70%乙醇清洁0天鸡蛋。只使用0天卵子,因为较老的卵子可能不会产生胚胎。
  3. 用OHP标记在鸡蛋上写下当前日期。
  4. 将卵放入温度设置为36-37°C,湿度水平为60%-65%的蛋孵化器中。在接下来的24小时内孵化卵。

3. 第2天

  1. 安排必要的设备,以取出5-6毫升白蛋白(锋利的剪刀,5毫升注射器,18 G针头,注射器丢弃器和胶带)。
  2. 用70%乙醇擦拭手术剪刀,或在用70%乙醇擦拭后使用高压灭菌器灭菌。
  3. 现在从37°C的鸡蛋孵化器中取出鸡蛋进行分层。
  4. 将鸡蛋放在干净的蛋架上。
  5. 将一小块胶带(尺寸:长约1英寸x宽)绑在鸡蛋的边缘。
  6. 用尖尖的边缘剪刀在蛋壳的边缘打一个小洞。以大约 75° 的角度插入 5 mL 注射器。
    注意:5 mL 注射器随附 24 G x 1 针头(无菌),但最好将 24 G x 1 针头替换为 18 G x 1.5 针头(无菌)。18 G x 1.5 针的宽度为 1.25 x 38 mm。因此,它将促进白蛋白的去除。
  7. 将针头插入卵黄囊后,慢慢取出5-6毫升白蛋白。
    注意:这为胚胎提供了一个可以生长的床。撤回白蛋白可防止白蛋白溢出,同时建立窗口。最后,通过消除5-6mL白蛋白来减轻胚胎在开窗期间受损的风险。
  8. 除去白蛋白后,用胶带重新密封开口,并将卵在37°C下孵育48小时。

4. 第4天

  1. 按照方案第1节所述准备铃声溶液,0.9%生理盐水和1x PBS。然后,高压灭菌三种溶液。高压灭菌后,将相应的溶液置于室温下。
  2. 从37°C的鸡蛋孵化器中取出鸡蛋,并将蛋壳切成圆形。在切割蛋壳之前,用胶带覆盖要切割的区域。
    注意:用胶带覆盖窗户区域可防止蛋壳破裂到不需要的地方。但是,如果您闯入不需要的地方,请用胶带密封该区域。用胶带覆盖要切割的地方,防止壳片掉落到蛋黄囊上。
  3. 在需要窗户的地方用尖尖的边缘剪刀在蛋壳上打一个小洞,然后开始切割一个圆形开口。此过程称为窗口化。
    注意:确保圆形切口足够大,以便从任何方向轻松进入胚胎。如果需要,改变卵子的位置以适应胚胎的位置。
  4. 接下来,使用立体变焦手术显微镜,定位右侧的维特林动脉(RVA)。
    注意:鸡胚胎在发育过程中通常会经历胸扭转(以及宫颈屈曲等),使得头部的左侧在72小时阶段与蛋黄相抵。更尾部,在卵形动脉离开身体的地方,胚胎没有太多扭曲,身体的这一部分位于腹侧朝向蛋黄。所以,直接看,胚胎的右边是研究人员的右边。
  5. 找到RVA后,使用26 G针在RVA的左侧和右侧创建两个小孔(图2)。
  6. 将多普勒血流成像探头放在RVA上方。确保将多普勒血流成像探头放置在距缺血部位5±1mm处,并朝向RVA的远端。取通量读数2分钟30秒(如果需要,则更长)。这将是正氧相读数。
  7. 同时,使用鼻钳和齿镊子,手动将脊髓针的边缘模塑成钩子的形状(图3)。通过弯曲脊柱针的边缘约1毫米来做到这一点。较大的尺寸将使在I / R过程中插入和取出脊柱针头更加困难。
  8. 使用显微操作器将脊髓针直接插入右外斜动脉下方。
    注意:请极其小心地插入脊柱针,以避免损坏RVA或任何相邻动脉。最佳技术是调整脊柱针的定制设计的钩子,正好在RVA孔的右侧上方,然后在微机械手的帮助下,在立体变焦手术显微镜的指导下,通过右孔逐渐将脊柱针的定制设计边缘插入卵黄囊中。一旦脊髓针的钩子进入卵黄囊,逐渐调整RVA下方的钩子,使其边缘正好位于左孔下方。现在是时候抬起脊髓针了。
  9. 现在,在显微操作器的帮助下,逐渐抬起动脉,直到多普勒血流表明动脉血流至少减少80%。
  10. 一旦多普勒通量达到80%或更高的下降,将脊柱针抬起(向上拉动动脉)5分钟。这将是RVA缺血的时期。
    注意:在缺血期间监测多普勒通量至关重要。如果发现大量波动,请终止测试。
  11. 缺血期5分钟后,逐渐松开动脉,恢复正常的血流水平。确保多普勒血流量计读数显示与正常氧期间获得的值相当的值。这将是RVA中再灌注的时期(图4)。
  12. 在I / R程序之后,将几滴(2-3)1x PBS滴到胚胎上,并观察2-3分钟。
    注意:使用1x PBS有助于防止胚胎变干。
  13. 最后,用胶带重新密封窗口,并将鸡蛋放回鸡蛋孵化器中5小时55分钟。
  14. 5小时55分钟后,从鸡蛋孵化器中取出鸡蛋,将其放在蛋架上,重新打开窗口,然后按照下游处理方案进行。

5. 治疗

  1. 对于用药物,激活剂或抑制剂治疗动脉,在I / R过程1小时后切除RVA。
  2. 对于下游研究,首先将胚胎从蛋壳中取出,将其放在无菌的90毫米培养皿上。
  3. 一旦胚胎被释放到培养皿中,在立体变焦手术显微镜的指导下使用眼部虹膜切除RVA。
  4. 确保RVA的切除尺寸不超过15±1毫米(距躯干远端),动脉左侧和右侧各5±1毫米,±1毫米。
    注意:可以使用尺子来测量要切除的区域(可选)。
  5. 切除RVA后,在含有1x PBS的无菌培养皿中用1x PBS洗涤。
  6. 对于所需的治疗,将动脉置于充满500μL林格溶液的1.5mL离心管(灭菌)中。将RVA置于离心管中,并将其置于37°C培养箱中5小时55分钟。
    注意:根据治疗的不同,要么使用林格氏溶液而不进行任何治疗,要么使用所需体积和浓度的药物,激活剂或抑制剂进行治疗。
  7. 孵育5小时55分钟后,从37°C实验室培养箱中取出RVA,然后继续进行所需的处理。

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Results

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多普勒血流成像技术用于评估我们模型的有效性。简而言之,我们将来自对照组的数据与来自RVA组的数据进行了比较,以确定我们创建的成功。 图4A 描绘了与对照动物相关的典型通量,而 图4B 描绘了从RVA获得的结果。数字 1-8 表示与 I/R 阶段关联的各种事件。简而言之,数字1-3对应于正常氧的相位,而3点和4点的通量急剧下降代表了与RVA中血流量减少相关的事件。一旦达到80%或更高的下降,RVA在接下来的5分钟内就会升高。这是缺血的阶段(数字4-5)。在RVA提升5分钟后,RVA被释放,由数字6和7表示。从点7开始的通量代表再灌注阶段,该阶段发生在RVA达到正常血流水平之后,即再灌注阶段。该特定实验证明了I / R建模在3天发育的雏鸡胚胎中的有效性。

为了验证我们模型的实用性,我们通过ELISA,蛋白质印迹,qRT-PCR和凝胶电泳分析研究了蛋白质,RNA和DNA的表达模式。简而言之,我们将3天发育的卵子分为三个实验组:对照组,I / R和治疗+ I / R。在各...

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Discussion

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缺血再灌注研究的目标是制定预防细胞死亡和促进恢复的治疗策略2930。为了克服当前I/R研究的限制,我们设计了一个Hook I/R雏鸡胚胎模型,以产生可靠且可重复的I/R模型。据我们所知,除了研究应激信号(例如,氧化和炎症应激)之外,我们还是在3天雏鸡胚胎中创建的第一个I / R模型,用于常规I / R实验。鉴于发育第3天的大小和可及性的好处31,雏鸡胚胎在72小时的发育阶段使用,因为该模型的高产量,使用简单性以及对常规分析的适应性32。简而言之,在发育第3天, 鸡是蛋内高度受控,但可访问且相当透明的模型,可用于可视化正常生理学,疾病病理学和实验治疗的效果。其巨大的尺寸使其特别适用于研究胚胎在正常生理学和压力下的形成和行为33。虽然可以使用较老的雏鸡胚胎(孵育4天或更长时间的雏鸡胚胎),并且我们确实尝试了较晚的时间点,但使用较老的胚胎作为模型系统受到严重限制...

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Disclosures

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作者声明没有竞争利益。

Acknowledgements

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我们要感谢Hari Shankar先生在摄像和编辑期间提供的重要投入,Baqer Hussain先生提供画外音,Asghar Rizvi先生负责视频编辑,Mohammad Haider先生负责录像,Mohammad Danish Siddiqui先生在实验期间提供协助。

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
(-80°C) 冷冻机海尔,中国-
1.5mL 离心管TARSONS,印度500010X
100mm 培养皿(无菌)Tarsons,印度460050
18G 针头(18G &次;1.5 (1.25&次;38mm)Ramsons, 印度13990
1mL 注射器DISPOVAN-26G
针头 (26G&次;1/2 (10.45x13mm)DISPO VAN, 印度30722D
37°C 湿度可调的鸡蛋孵化器Gentek,印度GL-100
37°;C 实验室培养箱SCIENCE TECH,印度CB 101-14
3-甲基腺嘌呤 (3-MA)Sigma Aldrich,美国M9281
3mL 牧场移液器TARSONS,印度940050
50mL 烧杯TARSONS,印度-
5mL 注射器DISPO VAN,印度IP53
70% 乙醇Merck Millipore,美国64-17-5
胶带/塑料胶带Sunrise,India-Ambra1
引物Applied Biosystems, 福斯特市, 美国Hs00387943_m1
抗小鼠 IgG细胞信号传输技术公司7076S
抗兔 IgG克逊免疫研究实验室, 美国711-035-152
Atg7R&D Systems,美国MAB6608
Atg7 引物Applied Biosystems,福斯特市,美国Hs00893766_m1
高压灭菌袋Tarsons,印度550022
高压灭菌机本地制造-
Beclin-1Proteintech,美国66665-1-IG
β 肌动蛋白免疫标签,美国ITT07018
牛血清白蛋白Himedia,印度孟买TC194
氯化钙Himedia,印度孟买GRM534
过氧化氢酶免疫标签,美国ITT5155
清洁湿巾Kimberly-Clark,印度370080
裂解的 Caspase3免疫标签,美国ITT07022
二钠磷酸氢七水合Himedia,印度孟买GRM39611
多普勒血流计Moors 仪器,英国moorVMS-LDF1
蛋架--
--
GAPDHImmunoTag,美国M1000110
GAPDH 引物Applied Biosystems,福斯特城,美国
甘氨酸Himedia,印度孟买MB013
肾盘HOSPITO-LC3A
/BCell Signaling Technology,美国4108S
甲醇Rankem 实验室,印度孟买M0252
显微作仪Narishige,日本M-152
N-乙酰基-L-半胱氨酸 (NAC)Sigma Aldrich, USAA7250
柚皮素Sigma Aldrich, USA67604-48-2
NF-kβThermo Fisher Scientific,美国51-0500
NLRP3免疫标签,美国ITT07438
割鼻钳本地制造,勒克瑙,印度-
眼钳Stoelting,德国52106-40
眼虹膜Tufft 手术器械,印度斋浦尔Hard Age Vannas 微型剪刀倾斜 8 厘米 / 3 1/8 英寸
OHP记号笔Camlin,
ImmunoTag, USAITT08329
尖锐的锋利边缘剪刀Stoelting, Germany52132-11
氯化钾Himedia, 孟买, 印度MB043
磷酸二氢钾无水Himedia, 孟买, 印度MB050
蛋白酶抑制剂Abcam, 美国Ab65621
SOD-1ImmunoTag, USAITT4364
氯化钠Fisher Scientific, 孟买, 印度27605
十二烷基硫酸钠Himedia, 孟买, 印度GRM886
脊髓针 25GA;3.50 英寸(90.51 X 90 毫米)拉姆森,印度GS-2029
立体变焦手术显微镜日本奥林巴斯SZ2-STU3
注射器丢弃器BIOHAZARD882210
齿形镊子Stoelting, 德国52102-30
Tris BaseG Biosciences, 美国RC1217
Tris 盐酸Himedia, 孟买, 印度MB030
Tween 20G Biosciences, 美国RC1227
来角鸡 0 天鸡蛋--
Z-Val-Ala-Asp(OMe)-FMKMP Biomedicals, LLC, USAFK009
杰物 蛋Hs02758991_g1 India-ORP-150

References

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  1. Fauzia, E., et al. Chick Embryo: A Preclinical Model for Understanding Ischemia-Reperfusion Mechanism. Frontiers in Pharmacology. 21 (9), 1034(2018).
  2. Eltzschig, H. K., Eckle, T. Ischemia and reperfusion--from mechanism to translation. Nature Medicine. 17 (11), 1391-1401 (2011).
  3. Raza, S. S., et al. Neuroprotective effect of naringenin is mediated through suppression of NF-κB signaling pathway in experimental stroke. Neuroscience. 29 (230), 157-171 (2013).
  4. Raza, S. S., et al. Hesperidin ameliorates functional and histological outcome and reduces neuroinflammation in experimental stroke. Brain Research. 28 (1420), 93-105 (2011).
  5. Raza, S. S., et al. Silymarin protects neurons from oxidative stress associated damages in focal cerebral ischemia: a behavioral, biochemical and immunohistological study in Wistar rats. Journal of the Neurological Sciences. 15 (1-2), 45-54 (2011).
  6. Fan, L., Zhou, L. AG490 protects cerebral ischemia/reperfusion injury via inhibiting the JAK2/3 signaling pathway. Brain and Behavior. 11 (1), 01911(2021).
  7. Wu, M. Y., et al. Current Mechanistic Concepts in Ischemia and Reperfusion Injury. Cellular Physiology and Biochemistry. 46 (4), 1650-1667 (2018).
  8. Collard, C. D., Gelman, S. Pathophysiology, clinical manifestations, and prevention of ischemia-reperfusion injury. Anesthesiology. 94 (6), 1133-1138 (2001).
  9. Allen, D. D., et al. Cell lines as in vitro models for drug screening and toxicity studies. Drug Development and Industrial Pharmacy. 31 (8), 757-768 (2005).
  10. Schmeer, C., Gamez, A., Tausch, S., Witte, O. W., Isenmann, S. Statins modulate heat shock protein expression and enhance retinal ganglion cell survival after transient retinal ischemia/reperfusion in vivo. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 49 (11), 4971-4981 (2008).
  11. Huang, K. Y., et al. A systematic review and meta-analysis of acupuncture for improving learning and memory ability in animals. BMC Complementary and Alternative Medicine. 16 (1), 297(2016).
  12. Sommer, C. J. Ischemic stroke: Experimental models and reality. Acta Neuropathologica. 133 (2), 245-261 (2017).
  13. Yang, W., Chen, J., Meng, Y., Chen, Z., Yang, J. Novel targets for treating ischemia-reperfusion injury in the liver. International Journal of Molecular Sciences. 19 (5), 1302(2018).
  14. Seabra, R., Bhogal, N. In vivo research using early life stage models. In Vivo. 24 (4), 457-462 (2010).
  15. Liu, H., et al. Adiponectin peptide alleviates oxidative stress and NLRP3 inflammasome activation after cerebral ischemia-reperfusion injury by regulating AMPK/GSK-3beta. Experiments in Neurology. 329, 113302(2020).
  16. Aboutaleb, N., Jamali, H., Abolhasani, M., Pazoki Toroudi, H. Lavender oil (Lavandula angustifolia) attenuates renal ischemia/reperfusion injury in rats through suppression of inflammation, oxidative stress and apoptosis. Biomedicine and Pharmacotherapy. 110, 9-19 (2019).
  17. Wallert, M., et al. alpha-Tocopherol preserves cardiac function by reducing oxidative stress and inflammation in ischemia/reperfusion injury. Redox Biology. 26, 101292(2019).
  18. Ashafaq, M., et al. Catechin hydrate ameliorates redox imbalance and limits inflammatory response in focal cerebral ischemia. Neurochemical Research. 37 (8), 1747-1760 (2012).
  19. Gallagher, S., Chakavarti, D. Immunoblot analysis. Journal of Visualized Experiments. 20 (16), 759(2008).
  20. Abt, M. A., Grek, C. L., Ghatnekar, G. S., Yeh, E. S. Evaluation of lung metastasis in mouse mammary tumor models by quantitative real-time PCR. Journal of Visualized Experiments. (107), e53329(2016).
  21. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose gel electrophoresis for the separation of DNA fragments. Journal of Visualized Experiments. (62), e3923(2012).
  22. Wu, Y., et al. Cathelicidin aggravates myocardial ischemia/reperfusion injury via activating TLR4 signaling and P2X(7)R/NLRP3 inflammasome. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 139, 75(2020).
  23. Franke, M., et al. The NLRP3 inflammasome drives inflammation in ischemia/reperfusion injury after transient middle cerebral artery occlusion in mice. Brain Behaviour and Immunity. 92, 223(2021).
  24. Lawrence, T. The nuclear factor NF-kappaB pathway in inflammation. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 1 (6), 001651(2009).
  25. Liu, H., et al. Pterostilbene attenuates astrocytic inflammation and neuronal oxidative injury after ischemia-reperfusion by inhibiting NF-kappaB phosphorylation. Frontiers in Immunology. 10, 2408(2009).
  26. Prakash, R., et al. Sivelestat-loaded nanostructured lipid carriers modulate oxidative and inflammatory stress in human dental pulp and mesenchymal stem cells subjected to oxygen-glucose deprivation. Materials Science and Engineering: C Materials for Biological Applications. 120, 111700(2021).
  27. Prakash, R., et al. Oxidative stress enhances autophagy in stem cells through Erk1/2 signaling pathway - implications for neurotransplantations. Stem Cell Reviews and Reports. , (2021).
  28. Ahmad, A., et al. Gelatin-coated polycaprolactone nanoparticle-mediated naringenin delivery rescue human mesenchymal stem cells from oxygen glucose deprivation-induced inflammatory stress. ACS Biomaterials Science and Engineering. 5 (2), 683-695 (2019).
  29. Guan, X., et al. The neuroprotective effects of carvacrol on ischemia/reperfusion-induced hippocampal neuronal impairment by ferroptosis mitigation. Life Science. 235, 116795(2019).
  30. Jin, Z., Guo, P., Li, X., Ke, J., Wang, Y., Wu, H. Neuroprotective effects of irisin against cerebral ischemia/ reperfusion injury via Notch signaling pathway. Biomedicine and Pharmacotherapy. 120, 109452(2019).
  31. Wainrach, S., Sotelo, J. R. Electron microscope study of the developing chick embryo heart. Zeitschrift fur Zellforschung und mikroskopische Anatomie. 55, 622-634 (1961).
  32. Joshi, V. C., Wilson, A. C., Wakil, S. J. Assay for the terminal enzyme of the stearoyl coenzyme A desaturase system using microsomes. Journal of Lipid Research. 18 (1), 32-36 (1977).
  33. Kain, K. H., et al. The chick embryo as an expanding experimental model for cancer and cardiovascular research. Development Dynamics. 243 (2), 216-228 (2014).
  34. Mann, R. A., Moore, K. L., Persaud, T. V. N. Limitations in the u~e of the early chick embryo 88 a teratological model. Teratology. 7, 22-23 (1973).
  35. Chen, T., Vunjak-Novakovic, G. In vitro models of ischemia-reperfusion injury. Regenerative English and Translation Medicine. 4 (3), 142-153 (2018).
  36. Ma, R., et al. Animal models of cerebral ischemia: A review. Biomedicine and Pharmacotherapy. 131, 110686(2020).
  37. Bromage, D. I., et al. Remote ischaemic conditioning reduces infarct size in animal in vivo models of ischaemia-reperfusion injury: a systematic review and meta-analysis. Cardiovascular Research. 113 (3), 288-297 (2017).
  38. Kalogeris, T., Baines, C. P., Krenz, M., Korthuis, R. J. Cell biology of ischemia/reperfusion injury. International Review of Cell and Molecular Biology. 298, 229-317 (2012).
  39. Hogers, B., DeRuiter, M. C., Baasten, A. M., Gittenberger-de Groot , A. C., Poelmann, R. E. Intracardiac blood flow patterns related to the yolk sac circulation of the chick embryo. Circ Res. 76 (5), 871-877 (1995).
  40. Rezzola, S., et al. angiogenesis-inflammation cross talk in diabetic retinopathy: novel insights from the chick embryo chorioallantoic membrane/human vitreous platform. Frontiers in Immunology. 11, 581288(2020).

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