需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

肺快速恢复获取联合腹部常温区域灌注在控制性循环死亡后捐献中的应用

2.5K 次观看

⸱

DOI：

10.3791/63975

⸱

2022年8月15日

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Thoracic Surgery and Lung transplant Unit, University Hospital Marqués de Valdecilla, 2University of Cantabria School of Medicine, 3Intensive Care Unit, Donor Coordination Unit, University Hospital Marqués de Valdecilla, 4Department of Pneumology, Lung Transplant Unit, University Hospital Marqués de Valdecilla

本文内容

摘要

该方案结合了肺部冷却快速复苏技术与腹部常温区域灌注，用于控制性心脏停搏供体的腹部器官获取，是一种安全且有效扩大供体库的方法。

摘要

控制性循环死亡后捐献（cDCD）已在全球范围内促进了供体数量的增加。近年来发表的经验证实，来自cDCD供体的肺移植结果与脑死亡供体相似；然而，心脏停搏供体肺脏的利用率仍然较低。可能涉及多种原因：不同国家和移植中心之间法律框架不同，临终前干预措施存在差异，获取前肺供体管理不当，或对cDCD操作流程与方案经验不足。

最初，快速获取技术常用于cDCD中胸腹部器官的获取；但在过去十年中，体外膜氧合设备辅助的腹部常温区域灌注（ANRP）已成为恢复腹部器官血流的有效方法，可在移植前改善器官质量并进行功能评估。这使得捐献过程更加复杂，并引发了关于双重温度可能导致移植物损伤的疑虑。

本文旨在介绍基于单一中心经验的马斯特里赫特Ⅲ型供体肺脏获取方案，该方案结合了胸腔内快速冷却和腹部常温区域灌注技术。文中详细阐述了针对死亡前干预措施及肺脏获取手术操作技巧的要点与经验。这有助于减少专业人员对该联合技术应用的顾虑，并鼓励其他供体中心采用该方法，尽管该操作流程更为复杂。

引言

循环死亡后捐献（DCD）最初在西班牙始于非控制性捐献者。1996年，首份关于DCD的全国共识文件发布，为非控制性循环死亡后捐献1（uDCD）的实践提供了指导，并同时暂停了控制性循环死亡后捐献（cDCD）的相关操作。2012年，新的共识出台，确立了uDCD和cDCD实践的基础及法律框架2。目前，西班牙是全球DCD活动最活跃的国家之一，循环死亡后捐献者的比例居世界首位3。2021年，此类捐献者占该国捐献者总数的近35%，其中uDCD显著减少，所有捐献者均为cDCD4。

在控制性捐献后心脏死亡（cDCD）中，器官获取通常采用超快速恢复技术5。宣布死亡且无接触期结束后，迅速进行胸骨切开术和剖腹术。通过插管腹主动脉和肺动脉，并用冷灌注液冲洗，以保存腹腔和胸腔器官，同时在器官获取前进行表面降温6。在此情况下，cDCD 的特征是在生命支持治疗撤除后，发生不可预测的热缺血后果 。在停跳前的低血压和进行性缺氧阶段发生的缺血性损伤，加上心脏停搏后无接触期的影响，随后又因冷缺血期而进一步加重7。这种热缺血与冷缺血的联合作用似乎对腹部移植器官尤为不利8,9,10， 导致临床专业人员在使用来自cDCD供体的器官时更加犹豫。

为尽量降低这些风险，一种 原位 保存模型，基于西班牙团队在uCDC工作中积累的先前经验11, 近年来，人们对体外膜氧合（ECMO）系统的应用兴趣日益增长。在死亡后至器官获取前使用ECMO系统恢复血流，可逆转缺血引起的代谢异常，并恢复细胞生理功能12腹部常温区域灌注（ANRP）可改善cDCD中缺血损伤器官的质量13器官功能可被评估和改善，从而更好地筛选用于移植的腹部移植物。

近期国际多中心经验表明，与快速恢复（RR）技术相比，非体外再灌注（ANRP）技术有助于克服传统控制性捐赠后死亡（cDCD）肝移植中的局限性，降低移植后胆道并发症的发生率，促进高龄供肝的成功移植，并提高肝脏移植物的存活率14,15。在肾脏移植中，ANRP似乎可改善短期预后，表现为移植物延迟功能恢复的发生率更低，且1年移植物存活率更高16。基于这些证据，cDCD中采用ANRP在腹部器官获取方面已较快速恢复技术更具优势，目前该技术已在多个欧洲国家及世界其他地区得到应用17,18。

然而，全球已迅速采用cDCD供体的肺脏。长达60分钟的肺功能热缺血时间似乎不影响生存率19。在过去十年中，多个中心及多机构的经验均报道了cDCD来源肺移植的预后与DBD来源相当20,21。RR技术是肺脏获取的常规方法：肺脏经局部冷却，并在用冷保存液灌洗后切除22。

两项来自英国团队的研究首次报道了在控制性院内死亡后捐献（cDCD）中联合应用常温区域灌注（ANRP）与肺再灌注（RR）的实践23,24。数年后，一种在此技术基础上增加临终前干预措施的改良方法被发表25。研究结果表明，这种双重器官获取技术在腹部和胸部移植物的获取中均安全且有效26。显然，捐献流程因此变得更加复杂，需要相应的技术与人力资源、充足的组织协调能力，并带来更高的经济成本，这些因素可能使专业人员在启动此类项目时有所顾虑。本研究旨在介绍一项特别聚焦于临终前干预、插管以及主动脉阻断球囊置入的操作方案，结合实践经验中的技巧与注意事项，并探讨在应用ANRP时肺脏获取过程中需考虑的各项技术细节。目前，在本中心，cDCD捐献者已成为胸腹部器官移植移植物的主要来源。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

这些干预措施在重症监护室（ICU）的床旁进行。本方案遵循马尔克斯·德·巴尔德基利亚大学医院伦理委员会的指南，并符合西班牙关于器官捐献程序的法律框架。已从患者近亲处获得知情同意，允许对操作过程进行录像，用于科研目的。对于因严重脑损伤、终末期心脏病或神经退行性疾病而决定撤除生命支持治疗（WSLT）的患者，可考虑进行控制性器官捐献（cDCD）。排除标准及肺脏评估与脑死亡捐献者相同（表1）。

1. 供体的生前干预措施

  1. 肝素化：向供体静脉内推注 300-500 IU/kg 的肝素。
  2. 插管
    注意：插管由心血管外科医生进行，为无菌操作。
    1. 准备无菌器械台，放置所有必需设备（ECMO 套件和手术器械），以及电凝和吸引系统。
    2. 使用消毒液和无菌铺巾，在选定的腹股沟区域建立手术野。
    3. 使用 23 号刀片做 8-10 cm 的纵向切口，用电凝和 Liga 夹控制出血。使用拉钩牵开切口边缘，继续解剖以暴露股动脉和股静脉。用血管环套住两根血管，以便控制出血。
    4. 根据血管大小选择合适的插管直径，直径应足够大，以提供充足的器官灌注流量，并防止低流量问题（通常为 21 French）。
    5. 插入股静脉，先插入金属导丝作为引导，随后使用渐进式扩张器，最终插入插管。如观察到出血，可在插管周围使用 4-0 聚丙烯缝线做荷包缝合以控制出血。
    6. 以同样方式插入股动脉，此时使用双腔插管。
    7. 截取一段 10 cm 长的 ECMO 输入管路。在一端连接带鲁尔锁的直型接头，并装配三通旋塞阀，将该段管路的另一端连接至动脉插管（图 1）。
    8. 排出 ECMO 管路中的空气。使用生理盐水填充管路，同时连接插管。将 ECMO 输出管路连接至静脉插管，将 ECMO 输入管路连接至已装配三通旋塞阀的直型接头，该接头此前已连接至动脉插管。三通旋塞阀可用于排出系统内的空气（图 2）。
    9. 保持 ECMO 管路处于夹闭状态。使用 1 号丝线将两根插管固定于腹股沟处，以防止转运过程中发生移位。
    10. 在股动脉插管和供体左桡动脉内放置有监测功能的压力导管。
  3. 主动脉阻断球囊置入
    1. 以供体剑突与动脉插管远端之间的距离为参考，确定导管应插入的长度，以到达胸主动脉降部。在球囊上用丝线或标记笔做一参考标记。
    2. 通过股动脉插管的未使用腔道插入金属导丝。随后在导丝引导下插入导管，直至达到参考标记位置。
    3. 通过便携式胸部 X 光或透视检查确认阻断球囊位置正确（检查导管的不透射线标记位于膈肌上方）。
    4. 使用 50 ml 注射器注入生理盐水，充盈球囊约 4-5 秒，以检测球囊功能是否正常：确认股动脉插管处的动脉压消失，而左桡动脉压力保持不变（图 3）。
    5. 当股动脉脉搏消失时，记录此时的充盈体积，作为 ARNP 期间阻断胸主动脉所需的最小体积。若在股动脉插管处检测到血流，需重新检查位置或充盈情况。

2. 撤除生命支持治疗（WLST）与死亡宣告

  1. 将连接体外膜肺氧合（ECMO）系统的供体转移至手术室。以无菌方式准备并铺巾。
  2. 准备好肺脏和腹部器官的保存液及管路。确保外科团队已刷手消毒、无菌并准备就绪，位于相邻的手术室内。
  3. 使用计时器记录热缺血时间。
    注：功能性热缺血时间（FWIT）定义为从收缩压 <60 mmHg 开始，至启动腹部器官的常温机械灌注（ANRP）或通过肺动脉灌注肺保存液为止（包含5分钟非接触期）。肝脏和胰腺的上限为30分钟，肾脏和肺脏为60分钟。
  4. 允许亲属在撤除生命支持治疗（WLST）期间陪伴其亲人，直至宣布死亡。
  5. 开始撤除生命支持治疗（WLST）。根据亲属意愿，可选择是否拔除气管插管。宣布死亡后，引导亲属离开手术区域。
  6. 经过5分钟非接触期后，使用先前确定的最小容量充盈主动脉阻断球囊，以确保降胸主动脉完全阻断。
  7. 若左桡动脉压力消失，启动常温机械灌注（ANRP）。股动脉插管处的压力将转变为由ECMO提供的持续非搏动性血流。
  8. 若桡动脉导管内血流随股动脉压力同步升高，则暂停ANRP，并检查球囊位置是否正确、充盈是否充分，或在再等待5分钟非接触期后夹闭胸主动脉，随后恢复ANRP。在未完全确认主动脉阻断前，不得启动ANRP。
    ​注：撤除生命支持治疗（WLST）可在手术室或重症监护室（ICU）进行，依亲属及家属意愿而定。若在ICU进行，在5分钟非接触期后充盈球囊并检查其功能，随后启动ANRP，并将供体转运至手术室，此时外科团队已准备就绪。若发现阻断球囊功能异常，应暂停ANRP，直至在手术室中夹闭胸主动脉后再恢复灌注。

3. 肺脏复苏与获取技术

注意：肺脏修复与获取技术由胸外科医生和 移植协调员图4).

  1. 行中等长度胸骨正中切口：从胸骨上窝至剑突尖端做正中垂直皮肤切口。使用电刀将切口延伸至胸大肌筋膜及胸骨骨膜。
  2. 切开锁骨间韧带，并在胸骨后方的胸骨上窝和剑突水平通过手指钝性分离建立间隙。用电锯劈开胸骨。放置胸骨牵开器并小心撑开，同时将心包从胸骨后表面分离。使用电刀控制任何出血点。
  3. 同时，重新插管并以100%氧气和5 cm H2O的呼气末正压对供体进行通气。
  4. 若在供体重症监护期间未作为关键管理措施行支气管镜检查，此时可由胸外科团队的第二位外科医生进行。进行支气管镜检查时，将可弯曲支气管镜经气管插管插入，评估气道解剖结构、黏膜外观并清除分泌物。
  5. 沿纵隔胸膜做纵行切口，打开双侧胸膜腔。
  6. 若对阻断弓上血管的阻塞球囊效果存疑或存在问题，可将左肺向内侧牵拉，直视下尽可能低位暴露并夹闭胸主动脉。
  7. 通过视诊和触诊评估肺脏。检查是否存在肺大疱、挫伤、肺不张、肺炎及隐匿性肿瘤。向双侧胸膜腔各注入1 L 4 °C生理盐水。
  8. 将吸入氧浓度降至50%。以倒T形切口打开心包。使用蚊式钳将2-0丝线固定于皮肤，牵拉心包边缘向外侧，以暴露心脏结构。
  9. 在肺动脉主干分叉下方放置4-0聚丙烯荷包缝线。使用11号刀片行动脉切开，并用弯头蚊式钳扩张切口。
  10. 将直角形直头插管插入肺动脉（PA），末端夹闭。将肺动脉插管通过带鲁尔锁的直通接头和三通旋塞连接至灌注系统管路。将灌注系统连接至肺保存液，排空管路内气体。
  11. 以顺行方式开始灌注50–60 mL/kg的冷保存液。同时通过三通旋塞开始灌注100 mL生理盐水中稀释的500 µg前列腺素。
  12. 切开左心耳或直接切开左心房，以确保充分引流。若发现肺不张区域，可通过短暂吸气保持在25–30 cm H2O压力下进行复张。
  13. 保存完成后，拔除肺动脉插管。向团队其余成员宣布即将夹闭腔静脉并开始心脏切除。
  14. 在夹闭腔静脉前，向供体输注1–1.2 L生理盐水，以避免因胸腔静脉回流减少而导致灌注泵流量下降。
  15. 在下腔静脉放置横夹，确保留有足够残端供肝脏使用。使用3号丝线结扎并切断下腔静脉。
  16. 在奇静脉远侧使用3号丝线结扎并切断上腔静脉。用血管钳固定远端残端。
  17. 保留手术区域内的血管钳，注意避免意外移除，否则 ANRP将受到影响。以标准方式切除其余心脏组织。
  18. 心脏切除后，按照与脑死亡供体相同的操作流程取出肺脏，具体步骤如下：
    1. 切断下肺韧带，打开后部心包，暴露食管。通过钝性分离解除肺在后纵隔的附着，注意谨慎止血。
    2. 将肺动脉从主动脉分离。在隆突上方游离气管，并环绕放置TA直线切割缝合器。
    3. 在拔出气管插管前，将肺充气至潮气量的50%–60%，然后切断气管。清除任何残留附着组织，将肺整体从供体中取出。
  19. 仔细检查胸腔，排查任何出血点，特别是奇静脉结扎处以及后纵隔、气管旁结构和周围组织的血管或毛细血管电凝情况。持续出血可能导致灌注泵流量下降。
  20. 将肺整体转移至修整台，进行台式手术处理。分离左肺和右肺。
  21. 使用尖端气囊已充气的导尿管，经各肺静脉依次进行逆行灌洗，每次使用0.2–0.25 L冷保存液。
  22. 将每侧肺分别装入第一层无菌袋中，袋内仅含冷保存液，再用另外两个塑料袋包裹，置于便携式冷藏箱中，箱内盛有4 °C冰盐水。
  23. 当需要使用离体肺灌注（ex vivo lung perfusion）系统时，在肺获取过程中按以下步骤连接装置至肺动脉和气管：
    1. 获取时应保留肺动脉主干，而不仅保留其分叉部。
    2. 若无法保留主干，可取一段3–4 cm长的主动脉，将其缝合至肺动脉分叉后方，以替代肺动脉主干。
    3. 在隆突上方4–5个气管环处切断气管，以保证足够长度用于插管。
    4. 保持肺整体状态并妥善保存。

4. 腹部常温区域灌注

  1. 填充主动脉阻断球囊并确认其功能正常后，启动常温无血灌注（ANRP）。
  2. 设定以下监测目标值：灌注泵流量 = 2–2.5 L/min，股动脉插管持续压力 = 60–65 mmHg，温度 = 37 °C，pH = 7.35–7.45，血细胞比容 >25%。
  3. 启动ANRP后，立即从股动脉插管使用10 mL注射器采集血样，之后每30分钟采集一次，用于肝肾生化分析、血清乳酸水平、动脉血气及血细胞比容检测。ANRP至少维持90–120分钟。
  4. 若在ANRP期间丙氨酸氨基转移酶（ALT）或天冬氨酸氨基转移酶（AST）数值超过正常上限四倍，则弃用肝脏。

5. 肝脏与肾脏功能恢复

注意：肝脏和肾脏的获取分别由肝胆外科医生和肾脏外科医生进行。

  1. 行中等长度的剖腹手术：沿腹白线做一条正中垂直的皮肤切口，从剑突（与先前的胸骨切开术切口相连接）至耻骨联合，切口需绕过脐部。使用电刀分离皮下脂肪和浅筋膜层，直至腹直肌鞘。
  2. 切开腹直肌鞘的前层和后层，打开腹膜以进入腹膜腔。将手指插入所形成的切口并撑开，注意避免损伤深部结构。放置拉钩以充分暴露腹腔。
  3. 通过视觉和触诊评估腹部器官的大体质量。如有疑虑，可进行肝活检，脑死亡供者亦同。
  4. 如果化学指标正常且大体外观无异常，则确认器官有效。
  5. 停止体外膜肺氧合（ECMO）装置。灌注腹腔器官保存液 通过 股动脉插管并利用股静脉插管进行放血。
  6. 以标准方式获取适合移植的腹部器官，方法同DBD27,28.

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

我们对过去两年（2020年和2021年）在马克斯·德·巴尔德基利亚大学医院进行的30例来自循环死亡后供体（cDCD）的肺移植手术进行了描述性分析。本文列出了供体与受体的人口学特征、技术数据、术后结果及短期疗效。分类变量的结果以绝对数值和百分比表示，连续变量的结果以集中趋势和离散程度的指标表示。采用柯尔莫哥洛夫-斯米尔诺夫检验对数据的正态分布进行检验。

供体特征与技术数据
表 2 显示供者的 demographics 特征和技术数据。供者中有一半为男性，中位年龄为 56.5 岁。仅有 16.7% 的供者有吸烟史。大多数脑损伤原因为出血（53.3%），其次为缺氧（23.3%）和创伤（3.35%）。其他原因包括肌萎缩侧索硬化症患者撤除生命支持治疗。供者在 ICU 的中位停留时间和机械通气时间均为 6 天。供者最终动脉血氧分压与吸入氧浓度比值（PaO₂/FiO₂）的平均值为2/FiO2为427 mmHg。在两例病例中， 离体 由于肺部出现水肿的肉眼可见表...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

尽管在心脏死亡后捐献（cDCD）中联合使用肺脏低温灌注与ARNP的技术最早于2014年发表，但相关经验报道极少25,26,29。此外，无论采用何种技术，cDCD肺脏的利用在大多数国家仍处于较低水平。

本方案中的关键步骤包括使用临终前干预措施；采用特定方法确保在ANRP过程中不恢复冠状动脉和脑部灌注；通过双温法尽量减少对移植物的损伤；以及维持ECMO设备足够的血流以保证腹部器官灌注的目标。

西班牙的方案中考虑了死亡前干预措施。尽管这些措施并非必需，但死亡前肝素化和插管不仅可以缩短腹部器官的功能性热缺血时间，还能避免在宣布死亡后需要进入主动脉进行插管。如果实施死亡前操作，必须充分解释，并始终尊重患者及其家属的意愿和价值观，获得明确的知情同意。最初采用双侧腹股沟入路：一侧用于插管，另一侧用于插入主动脉阻断球囊。使用双腔动脉插管可同时提供体外膜肺氧合...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

作者声明不存在利益冲突。

致谢

作者感谢所有参与瓦尔德基利亚大学医院肺移植项目的成员。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
5 mL 肝素小瓶，1000 UI/mLROVI用于供体肝素化
ECMO 套件（插管材料）
动脉压监测管路BEXEN MEDICAL137.15用于桡动脉和股动脉插管的动脉压监测管路
绷带剪刀SURGIMEDICBC-881R用于剪切 ECMO 管路
Bio-medicus 静脉插管 21 Fr (7.0 mm) x 27.5 in (69.9 cm)MEDTRONIC96670-121静脉插管
2% 氯己定溶液消毒液
ECMO 设备 Maquet RotaflowMaquet, Rastatt, GermanyECMO 系统
电凝手柄DEXTROSW12200
EndoReturn 动脉插管套件  21-23FEdwards LifesciencesER21B, ER23B带双腔的动脉插管，用于连接 ECMO 及引入主动脉阻断球囊
Ethicon LigaClip 中/短 20 钛合金中号ETHICONMCS30用于腹股沟解剖期间控制出血的结扎夹
Ethicon LigaClip 中/短 20 钛合金小号ETHICONMCS20用于腹股沟解剖期间控制出血的结扎夹
Bio-medicus 插入套件 180 cmMEDTRONIC96551ECMO 插管插入套件，包含导管、金属导丝和扩张器
冲洗球MEDLINEDYNDE 20125用于盛装生理盐水，并在插管连接部位冲洗 ECMO 管路
鲁尔锥形注射器 50 ccCARDIONATUR60ML盛装生理盐水以填充阻断球囊的注射器
Mersilk 1 号，LR-60 CONV，75 cmETHICONW562H用于固定 ECMO 插管的带针弯头丝线缝合线
Prolene 4/0ETHICONW8355用于股血管荷包缝合或血管缝合的聚丙烯缝合线
Prolene 5/0，60 cmETHICON8325用于血管缝合的聚丙烯缝合线
Prolene 5/0，90 cmETHICON8720用于血管缝合的聚丙烯缝合线
Reliant 支架移植物球囊导管 12FMedtronic, IrelandAB46经股动脉置入的主动脉阻断球囊，用作腔内钳夹
11 号手术刀片INTRAVEN150011
23 号手术刀片INTRAVEN150023
硅胶管IBERHOSPITEX0027224-P用于连接吸引系统的硅胶管
Sofsilk 编织丝线 1 号单股COVIDIENL-12用于结扎或控制出血的丝线
Sofsilk 编织丝线 3 号三股COVIDIENL-115用于结扎或控制出血的丝线
直通接头 3/8"x3/8" 带鲁尔锁ANDOCOR04CS0022用于连接动脉插管与 ECMO 管路，以及连接三通旋塞阀以进行压力监测和采血
外科敷料包TEXPOL146500
外科缝合器COVIDIEN8886803712用于关闭手术切口的缝合器
三通旋塞阀BD CONNECTA394501用于连接动脉插管与压力监测管路的三通旋塞阀
大号血管环MEDLINEVLMAXR用于环绕股动脉和股静脉以控制出血的血管环
小号血管环MEDLINEVLMINR用于环绕股动脉和股静脉以控制出血的血管环
Yankauer 吸引头 50 VDEXTROMEDICA349701用于手术解剖期间吸引的吸引头
插管用外科器械
Adson 拉钩 20 cm 和 33 cm
主动脉钳
Boyd 剪刀 18 cm
无齿解剖镊 21 cm
小号 Farabeuf 拉钩
直 Mayo 剪刀 14 cm 和 16 cm
Metzenbaum 剪刀 18 cm、20 cm 和 23 cm
直型和弯型蚊式止血钳
持针器 18 cm 和 23 cm
Russ 解剖镊 15 cm
23 号和 21 号手术刀柄，  21 cm
外科剥离器 23 cm
肺获取材料
10 cc 注射器BD DISCARDIT309110
前列地尔注射液 500 mcgPFIZER与肺保存液一同注射的前列腺素
一次性 GIA 钉仓 Steril 6/CaMEDTRONIC1141634
一次性 GIA 缝合器 60/3.8 3/CaMEDTRONIC2802122用于气管和支气管离断的缝合器
Foley 导尿管 18 Ch FolysilFolysil, ColoplastAA6118用于插管肺静脉以进行逆行灌注的导尿管
肺保存液 Perfadex 1000 mLMedisan, Uppsala, Sweden19811 (每盒 10 单位)肺保存液
Mersilk 1 号，LR-60 CONV，75 cmETHICONW562H用于心包缝合的带针弯头丝线缝合线
小儿静脉插管SORIN GROUPV132-12用于肺动脉插管的插管
Prolene 4/0ETHICONW8355用于肺动脉荷包缝合的聚丙烯缝合线
11 号手术刀片INTRAVEN150011
Sofsilk 编织丝线 1 号单股COVIDIENL-12用于将动脉插管与止血带固定的丝线
Sofsilk 编织丝线 3 号三股COVIDIENL-115用于血管结扎的丝线
无菌袋用于保存和储存肺脏
直通接头 1.4"/1.4" 带鲁尔锁ANDOCOR04CS0032用于连接肺动脉动脉插管与保存液管路，以及连接三通旋塞阀以注入前列腺素
三通旋塞阀BD CONNECTA394501用于连接动脉插管与压力监测管路的三通旋塞阀
双通道 Uromatic 灌注装置MEDISAVETRC4007N肺保存液灌注系统
单通道 Uromatic 灌注装置MEDISAVETRC4002肺保存液灌注系统
肺获取用外科器械
主动脉阻断钳
电池供电的外科锯
Cooley 血管钳
解剖镊 18 cm 和 27.9 cm
Finochietto 胸骨拉钩
Metzenbaum 剪刀 20 cm 和 23 cm
弯型蚊式止血钳 12.5 cm
血管钳
腹部器官获取用外科器械
Adson 关节拉钩
Allis 钳 16 cm
主动脉阻断钳
Boyd 剪刀 17 cm
Castroviejo 持针器
Cooley 血管钳
弯型 Crile 钳 18 cm
Davis 拉钩 24.5 cm
DeBakey 解剖镊 19.7 cm 和 24.1 cm
DeBakey 血管钳
解剖镊 18 cm 和 27.9 cm
Duval 钳 23 cm
Farabeuf 拉钩
肾盘 300 cc 和 500 cc
直 Kocher 钳 18 cm
Langenbeck 拉钩 21 cm 和 23 cm
直型和弯型 Mayo 剪刀，17 cm
直型和弯型蚊式止血钳，12.5 cm
持针器 15 cm、18 cm、23 cm 和 23 cm
Pean 钳 16 cm
Potts 剪刀 19 cm
弯型 Rochester 钳 24 cm
直型 Rochester 钳 24 cm
Russ 解剖镊 15 cm 和 20 cm
手术刀柄
Senn-Mueller 拉钩 16 cm

参考文献

  1. Matesanz, R. Spanish National Consensus Document on the recovery of organs from non-heart beating donors. Nefrología. 16, 48-53 (1996).
  2. Donation after circulatory death in Spain: State of the art and recommendations. Consensus Document 2012, Organización Nacional de Trasplantes. , Available from: htpp://www.ont.es/infesp/DocumentoDeConsenso/DONACION%20EN%20ASISTOLIA%20EN%20ESPEÑA%20SITUACION%20ACTUAL%20Y%20RECOMENDACIONES.pdf (2017).
  3. Global Observatory on Donation and Transplantation. , Available from: htpp://www.transplant-observatory.org (2022).
  4. Organización Nacional de Trasplantes. Memoria de actividad donación y trasplante. Organización Nacional de Trasplantes. , Spain. (2020).
  5. Bellingham, J. M., et al. Donation after cardiac death: A 29-year experience. Surgery. 150 (4), 692-702 (2011).
  6. Algahim, M. F., Love, R. B. Donation after circulatory death: The current state and technical approaches to organ procurement. Current Opinion in Organ Transplantation. 20 (2), 127-133 (2015).
  7. Lepoittevin, M., et al. Preservation of organs to be transplanted: An essential step in the Transplant process. International Journal of Molecular Sciences. 23 (9), 4989(2022).
  8. Wadei, H. M., et al. Comparison of kidney function between donation after cardiac death and donation after brain death kidney transplantation. Transplantation. 96 (3), 274-281 (2013).
  9. Jay, C., et al. A comprehensive risk assessment of mortality following donation after cardiac death liver transplant-An analysis of the national registry. Journal of Hepatology. 55 (4), 808-813 (2011).
  10. O'Neill, S., Roebuck, A., Khoo, E., Wigmore, S. J., Harrison, E. M. A meta-analysis and meta-regression of outcomes including biliary complications in donation after cardiac death liver transplantation. Transplant International. 27 (11), 1159-1174 (2014).
  11. Fondevila, C., et al. Applicability and results of Maastricht type 2 donation after cardiac death liver transplantation. American Journal of Transplantation. 12 (1), 162-170 (2012).
  12. Hessheimer, A. J., Riquelme, F., Fudora-Suarez, Y., García Pérez, R., Fondevila, C. Normothermic perfusion and outcomes after liver transplantation. Transplantation Reviews. 33 (4), 200-208 (2019).
  13. Oniscu, G. C., et al. In situ normothermic regional perfusion for controlled donation after circulatory death- The United Kingdom Experience. American Journal of Transplantation. 14 (12), 2846-2854 (2014).
  14. Watson, C. J. E., et al. et al. In situ normothermic perfusion of livers in controlled circulatory death donation may prevent ischemic cholangiopahy and improve graft survival. American Journal of Transplantation. 19 (6), 1745-1758 (2019).
  15. Hessheimer, A. J., et al. Abdominal normothermic regional perfusion in controlled DCD liver transplantation: outcomes and risk factors for graft loss. American Journal of Transplantation. 22 (4), 1169-1181 (2022).
  16. Padilla, M., et al. Improved short-term outcomes of kidney transplants in controlled donation after the circulatory determination of death with the use of normothermic regional perfusion. American Journal of Transplantation. 21 (11), 3618-3628 (2021).
  17. Lomero, M., et al. Donation after circulatory death today: An updated overview of the European Landscape. Transplant International. 33 (1), 76-88 (2020).
  18. Dominguez-Gil, B., et al. Expanding controlled donation after the circulatory determination of death: Statement from an international collaborative. Intensive Care Medicine. 47 (3), 265-281 (2021).
  19. Levvey, B., et al. Influence of lung donor agonal and warm ischemic times on early mortality: Analyses from the ISHLT DCD Lung Transplant Registry. Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 26-34 (2019).
  20. Van Raemdonck, D., et al. Donation after circulatory death in lung transplantation- Five-year follow-up form ISHLT Registry. Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (12), 1235-1245 (2019).
  21. Palleschi, A., et al. Lung transplantation from donation after controlled cardiocirculatory death. Systematic review and meta-analysis. Transplantation Reviews. 34 (1), 100513(2020).
  22. Keshavamurthy, S., Rodgers-Fishl, P. Donation after circulatory death (DCD)-Lung procurement. Indian Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 37, 425-432 (2021).
  23. Oniscu, G. C., Siddique, A., Dark, J. Dual temperature multiorgan recovery from a Maastricht category III donor after circulatory death. American Journal of Transplantation. 14 (9), 2181-2186 (2014).
  24. Perera, M. T., Clutton-Brock, T., Muiesan, P. One donor, two types of preservation: First description of a donation after circulatory death donor with normothermic abdominal perfusion and simultaneous cold perfusion of lungs. Liver Transplantation. 20 (8), 1012-1015 (2014).
  25. Miñambres, E., et al. Improving the outcomes of organs obtained from controlled donation after circulatory death donors using abdominal normothermic regional perfusion. American Journal of Transplantation. 17 (8), 2165-2172 (2017).
  26. Miñambres, E., et al. Combined lung and liver procurement in controlled donation after circulatory death using normothermic abdominal perfusion. Initial experience in two Spanish centers. American Journal of Transplantation. 20 (1), 231-240 (2020).
  27. He, B., Han, X., Fink, M. A. Procurement of Abdominal Organs in Multi-Organ Donation in Deceased Donor. Organ Donation and Transplantation - Current Status and Future Challenges. Tsoulfas, G. , IntechOpen. London, UK. (2018).
  28. Baranski, A. Surgical Technique of the Abdominal Organ Procurement. , Springer London. London, UK. (2009).
  29. Tanaka, S., et al. Effect on the donor lungs of using abdominal normothermic regional perfusion in controlled donation after circulatory death. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 59 (2), 359-366 (2021).
  30. Wind, J., Faut, M., Van Smaalen, T. C., Van Heurn, E. L. Variability in protocols on donation after circulatory death in Europe. Critical Care. 17 (5), 217(2013).
  31. Perez-Villares, J. M., Rubio, J. J., Del Río, F., Miñambres, E. Validation of a new proposal to avoid donor resuscitation in controlled donation after circulatory death with normothermic regional perfusion. Resuscitation. 117, 46-49 (2017).
  32. Ausania, F., White, S. A., Pocock, P., Manas, M. Kidney damage during organ recovery in donation after circulatory death donors: Data from UK National Transplant Database. American Journal of Transplantation. 12 (4), 932-936 (2012).
  33. Ausania, F., White, S. A., Coctes, R., Hulme, W., Manas, D. M. Liver damage during organ donor procurement in donation after circulatory death compared with donation after brain death. British Journal of Surgery. 100 (3), 381-386 (2013).
  34. Palleschi, A., et al. Successful preservation and transplant of warm ischaemic lungs from controlled donors after circulatory death by prolonged in situ ventilation during normothermic regional perfusion of abdominal organs. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 29 (5), 699-705 (2019).
  35. Caralt, M., et al. 34;Non-touch" vena cava technique as an improvement in combined lung and liver procurement in controlled donation after circulatory death. Transplantation Proceedings. 51 (1), 9-11 (2019).
  36. Miñambres, E., Rubio, J. J., Coll, E., Dominguez-Gil, B. Donation after circulatory death and its expansion in Spain. Current Opinion in Organ Transplantation. 23 (1), 120-129 (2021).
  37. Perez-Villares, J. M., et al. Mobile ECMO team for controlled donation after circulatory death. American Journal of Transplantation. 18 (5), 1293-1294 (2018).
  38. Rubio Muñoz, J. J., Domínguez-Gil, G., Miñambres García, E., del Rio Gallegos, F., Pérez-Villares, J. M. Papel de la perfusión normo térmica con oxigenación de membrana extracorpórea en la donación en asistolia controlada en España. Role of normothermic perfusion with ECMO in donation after controlled cardiac death in Spain. Medicina Intensiva. 46 (1), 31-41 (2021).
  39. Miñambres, E., et al. Spanish experience with heart transplants from controlled donation after the circulatory determination of death using thoraco-abdominal normothermic regional perfusion and cold storage. American Journal of Transplantation. 21 (4), 1597-1602 (2021).
  40. Messer, S., et al. Human heart transplantation from donation after circulatory-determined death donors using normothermic regional perfusion and cold storage. Journal of Heart and Lung Transplantation. 37 (7), 865-869 (2018).
  41. Suberviola, B., et al. Excellent long-term outcome with lungs obtained from uncontrolled donation after circulatory death. American Journal of Transplantation. 19 (4), 1195-1201 (2019).
  42. Actividad de donación y trasplante pulmonar España Organización Nacional de Trasplantes. , Spain. Available from: htpp://www.ont.es/infesp/Memorias/ACTIVIDAD%20DE%20DONACI%C3%93N%20Y%20TRANSPLANTE%20PULMONAR%20ESPA%C3%91A.pdf (2020).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

标签

肺器官获取腹部常温灌注体外膜肺氧合主动脉阻断球囊肺保存肺动脉插管移植物缺血性损伤
肺快速恢复获取联合腹部常温区域灌注在控制性循环死亡后捐献中的应用
联系我们
向图书馆推荐

隐私政策

使用条款

政策

版权所有 © 2026 MyJoVE Corporation。保留所有权利。