所提出的协议描述了一种使用96孔高通量透析板筛选蛋白质结晶条件和晶体生长的简单方法。透析管用于微晶的大规模生长也用于连续晶体学和MicroED应用。
Method Article
所提出的协议描述了一种使用96孔高通量透析板筛选蛋白质结晶条件和晶体生长的简单方法。透析管用于微晶的大规模生长也用于连续晶体学和MicroED应用。
在分子水平上了解蛋白质等大分子的结构-功能关系对于生物医学和现代药物发现至关重要。迄今为止,X射线晶体学仍然是以原子分辨率求解三维蛋白质结构的最成功方法。随着连续晶体学的最新进展,无论是使用X射线自由电子激光器(XFEL)还是同步加速器光源,蛋白质晶体学已经发展到下一个前沿领域,其中获取时间分辨数据的能力为室温下生物分子的行为提供了重要的机理见解。该协议描述了一种简单的高通量(HTP)工作流程,用于通过使用96孔透析板筛选结晶条件。这些板遵循生物分子筛选协会(SBS)标准,可以使用任何标准结晶实验室轻松设置。一旦确定了最佳条件,就可以使用透析器生产大量晶体(数百个微晶)。为了验证这种方法的稳健性和多功能性,结晶了四种不同的蛋白质,包括两种膜蛋白。
在上个世纪,X射线晶体学在阐明和理解生物大分子的结构 - 功能范式方面至关重要。迄今为止,它仍然是阐明许多独特不同蛋白质的原子分辨率结构的最成功方法之一,这些蛋白质对于细胞生物化学,医学和早期药物发现的基本理解至关重要1,2。然而,蛋白质结晶仍然是研究许多蛋白质靶标的瓶颈,特别是膜蛋白和大蛋白质复合物3。因此,由于采用劳动密集型的试错法,蛋白质结晶几乎总是被认为是一门艺术4,5,6。
沉淀剂通常以高浓度添加到蛋白质溶液中,以形成有序、规则和重复的蛋白质分子晶格排列,称为晶体。在有利的条件下,如温度、pH、浓度和沉淀剂,最终形成过饱和溶液,然后晶体成核并生长7,8。尽管结晶试验设置取得了许多进展,主要是随着高通量机器人系统的开发和现成的"稀疏基质"筛选的可用性,但多年来蛋白质结晶的一般方法基本保持不变。常见的实验性蛋白质结晶技术包括蒸汽扩散(悬挂液滴和坐滴)9,微批量(油下)10,11,自由界面扩散(微流体装置)12和透析(使用按钮和其他技术)13,14,15。然而,还存在其他更专业的设置,例如用于结晶膜蛋白16,17的中间相方法。虽然沉积在蛋白质数据库中的大多数X射线蛋白质结构到目前为止已经通过气相扩散方法6,18的结晶来解决,但其他方法,例如通过透析结晶,似乎没有得到充分利用,可能是由于与其实验设置相关的实际方面。
透析结晶仅依赖于溶质(沉淀剂、离子、添加剂和缓冲液)通过半透膜的缓慢扩散,同时防止蛋白质分子循环。这样,蛋白质溶液慢慢进入平衡状态,沉淀剂达到结晶所需的浓度。系统的动力学取决于温度、沉淀剂浓度和纤维素膜分子量截止值 (MWCO)19。迄今为止,最流行的透析结晶装置是使用由透明丙烯酸板制成的微透析按钮。它们通常浸入含有结晶沉淀剂溶液的储液器(主要使用蒸汽扩散悬挂滴板)中。然而,这种低通量方法还需要特定的组装来密封放置在纽扣室上方的透析膜内的蛋白质溶液,如图 1所示。此外,滞留在透析膜和蛋白质溶液之间的气泡是损害晶体生长的常见问题。该方法的另一个限制是样品要求,与蒸汽扩散方法相比,需要更高的浓度和体积来适应透析按钮。因此,使用微透析按钮进行结晶被认为是一种没有吸引力的方法,特别是对于膜蛋白等难以识别的靶标,其纯化率低得令人沮丧。最近,已经开发了微流体装置以促进通过透析15实现蛋白质结晶。这些芯片还被设计为具有高X射线透明度和低背景,允许芯片在室温下用于 原位 数据收集,从而消除了收获和低温冷却晶体的不便。尽管取得了这些进步,但这种方法的通量仍然非常低且成本高昂。

图1:使用透析按钮透析结晶的示意图 。 (A)结晶透析按钮的示意图。(B)将蛋白质溶液加入微透析纽室。(C)在通过涂抹器 施加的 橡胶圈(O形圈)的帮助下将透析膜固定在微透析按钮上。(D)透析按钮准备浸入含有结晶溶液(透析溶液)的储液器中,如(E)所示。装有浸入式透析按钮的小瓶必须密封以避免蒸发。 请点击此处查看此图的大图。
在这里,提出了一个简单的方案,用于使用96孔高通量透析板筛选蛋白质结晶条件和晶体生长。这些一次性板的设计用途类似于蒸汽扩散结晶板(移液器然后密封),如图 2所示。这些板可容纳多达 3.2 μL 的蛋白质和 350 μL 的透析液。每个孔都有一个单独的再生纤维素膜,以防止孔之间的交叉污染。设置大约需要 10 分钟才能完成,除了所有标准结晶实验室中都可以找到的设备外,不需要任何专业设备。四种不同的蛋白质,包括两种膜蛋白,用于证明和验证该方法作为高通量(HTP)蛋白质晶体学的有效方法。

图2:使用微透析板的结晶工作流程。 (A)去除红色粘合剂"覆盖膜"。(B)将蛋白质液滴分配到每个滴孔中。(C)孔被紫外线"覆盖膜"覆盖。(D)将板倒置,加入透析液(或结晶筛)。(E)将板密封并孵育。(法,八)液滴的显微镜检查。 请点击此处查看此图的大图。
使用0.5 mL透析管(图3)证明了这种通过透析方案结晶的使用,用于大规模(数百至数千次)微晶生产,适用于最先进的数据收集方法,例如XFEL设施20,21,22,23,24和同步加速器25,26,27的连续晶体学,以及MicroED 28、29、30 方法。

图 3:使用透析管的大规模微透析结晶。 (A) 0.5 mL 透析管的示意图。(B)装有结晶溶液的烧杯和装有透析管的浮动管架的侧视图。请点击此处查看此图的大图。
1. 蛋白质样品制备
2. 设置微透析板
注意:市售微透析板(见 材料表)由两面("蛋白质侧"和"缓冲侧")和再生纤维素膜(可用于不同的MWCO)组成,如图 2所示。
3. 使用透析管进行大规模结晶
注意:一旦使用微量透析板探索了结晶条件,就可以使用透析管进行蛋白质的大规模结晶(用于连续晶体学或其他目的),如图 3所示。与微透析板类似,这些设备可提供 3、5、10 和 30 kDa MWCO 透析膜。
使用微量透析板(具有10 kDa MWCO膜)结晶四种蛋白质,包括两种膜蛋白。将冻干粉中的鸡蛋-清溶菌酶(见材料表)在50 mg.mL-1的20 mM NaOAc(pH 4.5)中制备,并将冻干的thaumatin(见材料表)溶解在水中至终浓度为25 mg.mL-1。本研究中使用的两种膜蛋白是大肠杆菌多药外排泵AcrB和大肠杆菌乳糖转运蛋白LacY。 使用C43(DE3)细胞表达AcrB,并通过Ni-NTA亲和色谱和体积排阻色谱在10 mM Tris (pH 7.5)、300 mM NaCl、0.03% (w/v)正十二烷基-β-D-麦芽糖苷(DDM)和5%(v/v)甘油32中纯化。随后,使用100 kDa MWCO离心浓缩器将蛋白质浓缩至终浓度为6 mg.mL-1。LacY也在C43(DE3)细胞中表达,通过Ni-琼脂糖亲和色谱纯化,然后在20 mM Tris(pH 7.5),150 mM NaCl,0.03%(w / v)DDM中体积排阻色谱,并使用100 kDa MWCO浓缩器浓缩至10 mg.mL-1 4,33。
对于溶菌酶和索马汀蛋白,96孔微透析板填充有内部制备的结晶网格筛选作为透析溶液,而对于膜蛋白AcrB,从先前发表的结晶条件内部制备网格筛选34。对于 LacY,初始命中条件是从商业屏幕(见 材料表)中找到的,并使用内部制作的网格屏幕进一步优化。溶菌酶、索马汀和 AcrB 的结晶下降比为 1:100,含 2 μL 蛋白质与 200 μL 沉淀剂(透析溶液)。由于可用蛋白质的量较低,LacY结晶滴也以1:100的比例,1 μL蛋白质与100 μL透析溶液。
在微透析板设置后,来自所有四种蛋白质(包括膜蛋白)的晶体在20°C下开始出现1-8小时。在这种情况下,没有必要用洗涤剂补充透析溶液以进行膜蛋白结晶,通常在标准透析过程中进行以防止膜蛋白聚集,因为洗涤剂胶束预期大于透析膜35的MWCO。
在微透析板上蛋白质成功结晶后(图4),记录结晶条件,并使用具有相同10 kDa MWCO透析膜的透析管通过透析进行大规模结晶。每个蛋白质的数千个微晶在透析器内生长,如图 5所示。对于索马汀结晶,将 250 μL 蛋白质上样到透析器中,并在 50 mL(1:200 比例)下透析。对于 AcrB,将 250 μL 蛋白质与 25 mL 透析液 (1:100) 进行透析。LacY结晶也以与100 μL蛋白质与10 mL透析液的相同比例建立。

图 4:使用微透析板通过透析生长晶体。 该方案证明了该装置对可溶性蛋白质的适用性:(A)溶菌酶对0.1M NaOAc(pH 4.0),0.5M NaCl和25%(v / v)甘油进行透析。(B)将Thaumatin与0.1M Bis-tris丙烷(pH 6.6),1M K / Na酒石酸盐和18%(v / v)乙二醇进行透析。还获得了膜蛋白的晶体:(C)AcrB针对0.1M MES(pH 5.5),0.3M NaCl和20%(v / v)PEG-400进行透析。(D)对LacY进行透析,以0.1M MES(pH 6.5),0.1M NaCl和32%(v / v)PEG-300进行透析。使用带有交叉偏振器的立体高放大倍率显微镜捕获图像。比例尺: (A,B,D) = 1 毫米;(C) = 200 μm。 请点击此处查看此图的大图。

图5:使用透析管透析生长的膜蛋白晶体的代表性图像。 (A)显示充满微晶体的管的图像(由黑色箭头表示)。(B) 使用 0.5 mL 透析管透析生长的索马汀晶体浆液中的 2 μL 显微图像,透析 0.1 M Bis-Tris 丙烷 (pH 6.6)、1.4 M K/Na 酒石酸盐和 18% (v/v) 乙二醇。(C) 通过透析生长的 AcrB 微晶的暗场(左)和明场(右)图像,针对 0.1 M MES (pH 5.5)、0.3 M NaCl 和 20% (v/v) PEG-400。(D) 通过透析生长的 LacY 微晶的暗场(左)和明场(右)图像,分别针对 0.1 M MES (pH 6.5)、0.1 M NaCl 和 32% (v/v) PEG-300。观察到一些沉淀物。比例尺: (B,D) = 200 μm;(C) = 500 μm。 请点击此处查看此图的大图。
目前,透析结晶是最未充分利用的结晶方法,即由于现有方法(例如带按钮的微透析)的低通量和繁琐的性质。在这里,一个简单但强大的方案遵循HTP工作流程,通过市售的微透析板和透析管透析蛋白质晶体生长。根据目标蛋白的不同,手术中使用的微量透析板和透析管可以选择具有 3、5、10 或 30 kDa MWCO 的透析膜。该方案可以在任何标准结晶设施中轻松设置,并且具有适用于可溶性和膜蛋白的巨大优势。然而,在该协议期间未测试蛋白质 - 蛋白质和蛋白质 - 核酸复合物。
与任何透析结晶方法一样,蛋白质样品和透析溶液之间的体积比至关重要。在该协议中,建议样品和透析溶液之间的比例为1:100,但由于微透析板允许最大容量为350μL透析溶液,因此可以探索这些比例以获得晶体命中。在设置结晶板时,在所提出的方案中使用1-2μL蛋白质的体积。这是为了确保使用手动多通道移液器准确设置液滴。通过使用电动移液器(多通道或重复分液移液器)或HTP液体分液机器人,可以准确地滴低体积,从而降低所需的蛋白质量。此外,由于微透析板所需的透析缓冲液体积相对较低(与其他常规透析方法相反),因此可以(无需大量使用资源)探索大型化学空间,不仅使用市售的结晶筛,还使用优化筛(围绕初始结晶命中条件设计)。
所介绍的HTP程序的一个关键步骤是及时将小体积蛋白质(每个条件0.50-3.2μL)施加到透析板上,以限制脱水和样品损失。通过使用多通道移液器、重复分液移液器或机器人结晶系统,可以轻松缓解这种情况。板在20°C下的孵育时间长,例如超过2周,可能导致蛋白质液滴脱水或最近形成的晶体损坏。将透析板保存在加湿室或可密封袋内可以减轻这种影响。此外,建议使用无菌材料和技术以避免细菌生长。
如引言所述,最近,随着对了解疾病机制、蛋白质-配体结合相互作用和蛋白质-蛋白质相互作用的蛋白质结构动力学的需求增加,蛋白质 X 射线晶体学领域通过开发新的和现有的结晶技术、现代晶体样品输送方法、新一代 X 射线源以及用于数据采集和处理的新复杂方法而发生了革命性的变化36,37,38.因此,室温连续微晶体学的出现,无论是使用XFEL还是同步加速器光源进行,已成为结构生物学中的重要工具,特别是在膜蛋白领域39。然而,需要数千个微晶体才能产生足够的数据来形成稳健的结构解决方案,这不是一件容易的事(至少通过传统的结晶方法)。这里描述的透析结晶方法可以生产大量的微晶。一旦通过使用微透析板确定了生产微晶(1-10 μm)的结晶条件,就可以使用0.5 mL透析器装置生产大量高密度微晶(图5)。这些晶体非常适合使用固定目标或液体射流样品输送系统27,40进行数据收集。通过这种方法获得的晶体也适用于MicroED应用。然而,这些可能需要铣削到适合此特定应用的尺寸和厚度,因为电子与晶体的相互作用比X射线光子41强得多。
总之,这里描述的透析结晶方法增加了蛋白质结晶结构测定的不断发展策略,并扩大了可用于确定以前其他传统方法无法成功的新型蛋白质靶标的努力范围。
合著者Pascelle Draper和Paul Reardon受雇于SWISSCI。
我们感谢英国商业、能源和工业战略部 (BEIS) 的资助。我们感谢国家物理实验室的Alex R. Jones和Mike Shaw对手稿的反馈。
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
|---|---|---|---|
| 0.2 mL 试管 | Thermo Scientific | AB0620 | 用于分装蛋白质溶液。 |
| 0.2 和微量;m 针头式过滤器 | Sartorius | 17823----------K | 不含表面活性剂的醋酸纤维素过滤器。用于过滤透析液。 |
| 0.22 和微量;m 膜过滤器 | Millipore | GSTF04700 | 用于过滤大量缓冲液的膜过滤器 |
| 12 通道,可变 0.5 – 10 µL Research plus 移液器 | Eppendorf | 3125000028 | 用于将蛋白滴分配到 Diaplate 上。 |
| 12 通道,可变 30 – 300 µL Eppendorf Research plus 移液器 | Eppendorf | 3125000060 | 用于在 Diaplate 储液槽上分配透析液。 |
| 20 mL 注射器 | Fisherbrand | 15889152 | 用于注射器过滤器。 |
| 96 孔 2.2 mL 深孔板Thermo | Scientific | AB0788 | 聚丙烯深孔储存板;用于使用 Hamilton Microlab STARlet 制备筛选。 |
| 离心机 5425 | Eppendorf | 5405000565 | 配备 FA-24x2 转子,最大 g 力为 21,300 x g。 |
| 透析器 | SWISSCI | W72010 | 透析器管,带有截留分子量为 10 kDa 的再生纤维素膜。适用于高达 0.5 mL 的蛋白质溶液。 |
| Diaplate 96 孔板 | SWISSCI | W82010 | 微量透析板。Diaplate 由两侧组成,中间有一层再生纤维素膜,截留分子量为 10 kDa。 |
| Falcon 50 mL 高透明度 PP 离心管 | Corning | 352070 | 用于保存透析溶液。 |
| 浮动架 | SWISSCI | n/a | 包含在 Diacon 套件中 |
| 落地式无振动培养箱 | 分子尺寸 | MD5-01 | 400 L 温控培养箱,设置为 20 &°C。 |
| 徕卡 M205 C 体视显微镜 | 徕卡 | Planapo 1.0 倍物镜,7.8 倍 – 160 倍变焦范围,带 DMC 4500 相机 | |
| 来自鸡蛋清的溶菌酶 | Sigma Aldrich | 62971 | 冻干蛋白 |
| Memgold2 | 分子尺寸 | MD1-64 | 稀疏基质筛选 |
| Microlab STARlet | Hamilton | n/a | 液体处理系统。 |
| 储液槽盖膜 | SWISSCI | n/a | 包含在 Diaplate 套件中 |
| 可重复使用的瓶顶过滤器 | Thermo Scientific | DS0320-5045 | 用于填充大量缓冲液,适用于 0.22 &m 膜过滤器 |
| 密封桨 | SWISSCI | n/a | 包含在 Diaplate 套件中 |
| Thaumatin from Thaumatococcus daniellii | Sigma Aldrich | T7638 | 冻干蛋白 |
| UV 覆盖膜 | SWISSCI | n/a | 包含在 Diaplate 套件中 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission