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方法文章

采用甲酸铵改良型 QuEChERS 方法分析土壤样品中的有机氯农药

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DOI:

10.3791/64901

2023年1月20日

本文内容

摘要

本实验方案描述了利用甲酸铵进行QuEChERS法中的相分离,并结合气相色谱-质谱联用技术,成功测定土壤样品中有机氯农药残留的方法。

摘要

目前,QuEChERS 方法是全球官方和非官方实验室中用于分析多种基质中农药残留的最广泛使用的样品前处理方法。此前已证明,使用甲酸铵的 QuEChERS 方法相较于原始方法和两种官方版本具有优势。一方面,每克样品仅需加入 0.5 g 甲酸铵即可诱导相分离并实现良好的分析性能;另一方面,甲酸铵可减少常规分析中的维护需求。本研究采用了一种使用甲酸铵的改进型 QuEChERS 方法,用于同时分析农业土壤中有机氯农药(OCP)残留。具体而言,取 10 g 样品加入 10 mL 水进行水化,随后用 10 mL 乙腈进行提取。接着,使用 5 g 甲酸铵实现相分离。离心后,上清液经分散固相萃取净化,所用净化剂包括无水硫酸镁、伯-仲胺和十八烷基硅烷。分析技术采用气相色谱-质谱法。结果表明,使用甲酸铵的 QuEChERS 方法是提取土壤样品中 OCP 残留的有效替代方案。

引言

近几十年来,为满足日益增长的粮食生产需求,全球范围内已广泛且集约化地使用农药。农药被施用于农作物,以保护其免受病虫害侵袭并提高作物产量,但其残留物通常最终进入土壤环境,尤其是在农业地区1。此外,某些农药(如有机氯农药(OCPs))具有非常稳定的化学结构,因此其残留物难以降解,可在土壤中长期存留2。通常情况下,土壤具有较强的农药残留累积能力,特别是当土壤中有机质含量较高时,更易积累残留物3。因此,土壤是受农药残留污染最严重的环境介质之一。例如,迄今为止一项全面的研究发现,来自欧盟各地的317个农业土壤样本中,有83%受到一种或多种农药残留的污染4

农药残留对土壤的污染可能因其残留物的高毒性,通过食物链影响非靶标物种、土壤功能以及消费者健康5,6。因此,评估土壤中农药残留对于判断其对环境和人类健康的潜在负面影响至关重要,尤其是在缺乏严格农药使用监管制度的发展中国家7。这使得农药多残留分析变得日益重要。然而,由于土壤中存在大量干扰物质,且这些分析物浓度低、理化性质多样,农药残留的快速准确分析仍是一项艰巨的挑战4

在所有农药残留分析方法中,QuEChERS 方法已成为最快捷、简便、经济、高效、稳健且安全的首选方法8QuEChERS 方法包括两个步骤。第一步是基于分配原理的微型提取 通过 在第一步中,进行水相与乙腈相之间的盐析分离。第二步采用分散固相萃取(dSPE)进行净化;该技术利用少量多种多孔吸附剂的组合,去除基质干扰成分,克服了传统固相萃取的缺点。9因此,QuEChERS 是一种环境友好型方法,所用溶剂和化学试剂几乎无浪费,可提供非常准确的结果,并最大限度地减少随机误差和系统误差的潜在来源。事实上,该方法已成功应用于数百种农药的高通量常规分析,在几乎所有类型的环境、农业食品和生物样品中均具有很强的适用性。8,10本研究旨在应用并验证一种新改进的QuEChERS方法,该方法此前已开发并联用气相色谱-质谱法(GC-MS)用于分析农业土壤中的有机氯农药(OCPs)。

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方案

1. 储备液的配制

注意:建议在整个实验过程中佩戴腈类手套、实验服和安全眼镜。

  1. 使用商品化的有机氯农药(OCPs)混合标准品(见材料表),在25 mL容量瓶中用丙酮配制浓度为400 mg/L的储备液,该标准品在正己烷:甲苯(1:1)中的浓度为2,000 mg/L。表1列出了所选的每种有机氯农药。
  2. 在10 mL容量瓶中用丙酮配制后续的储备液,浓度分别为50 mg/L、1 mg/L和0.08 mg/L,并将溶液储存于棕色玻璃小瓶中,置于−18 °C保存。
    注意:这些溶液可在整个实验过程中重复使用,但每次使用后必须立即在上述条件下储存。
  3. 使用100 mg/L的4,4'-DDE-d8商品标准品(溶于丙酮),在10 mL容量瓶中用丙酮配制浓度为20 mg/L和0.4 mg/L的储备液,并将溶液储存于棕色玻璃小瓶中,置于−18 °C保存。使用4,4'-DDE-d8作为内标物(IS)。

2. 样本采集

  1. 用玻璃容器采集约 0.5 kg 农田土壤表层 10 cm 的土样。本研究的土壤样品采自传统马铃薯种植区的农田。
    注意:采用刮铲进行表层取样。然而,土壤深度可能影响其理化特性。因此,若有机碳含量随深度变化,则需在不同深度进行采样。
  2. 将土壤样品带回实验室,用孔径为 1 mm 的筛子过筛,并在分析前于 4 °C 条件下保存在棕色玻璃容器中。
    ​注意:同一样品可在整个实验过程中重复使用,但每次使用后均需立即按上述条件保存。

3. 样品制备 通过 使用甲酸铵的改进型QuEChERS方法

注意:图1展示了改进的QuEChERS方法的示意图。

  1. 称取10 g土壤样品于50 mL离心管中,加入50 µL浓度为20 mg/L的内标(IS)溶液,使终浓度为100 µg/kg。为进行回收率测定,另加入步骤1.2中配制的农药溶液,使终浓度分别为10 µg/kg、50 µg/kg和200 µg/kg(每种浓度设3个重复)。
  2. 使用涡旋振荡器振荡30 s,使加标物充分混匀于样品中。
  3. 加入10 mL水,使用自动振荡器在10 × g条件下振荡5 min。
  4. 加入10 mL乙腈,再次在10 × g条件下振荡5 min。
  5. 加入5 g甲酸铵(见材料表),手动剧烈振荡1 min,然后在1,800 × g条件下离心5 min。
  6. 取1 mL乙腈提取液转移至含有150 mg无水MgSO4、50 mg初级-次级胺(PSA)和50 mg十八烷基硅烷(C18)的2 mL离心管中(见材料表),用于分散固相萃取(d-SPE)净化8,涡旋振荡30 s后,在1,800 × g条件下离心5 min。
  7. 取200 µL提取液转移至带有300 µL熔融石英插管的适当标记的自动进样瓶中,使用气相色谱-质谱联用仪(GC-MS)进行仪器分析(步骤4)。
    ​注:基质匹配校准曲线的制备采用与上述相同步骤,但使用空白提取液,并在d-SPE步骤(步骤3.6)中将5 mL上清液于15 mL离心管中进行净化 ,内标和加标溶液直至步骤3.7才加入。将校准标准溶液加入自动进样瓶中,使终浓度分别为5 µg/kg、10 µg/kg、50 µg/kg、100 µg/kg、200 µg/kg和400 µg/kg,氮气吹干后加入200 µL基质提取液。

4. 采用气相色谱-质谱法进行仪器分析

  1. 使用配备单四极杆质谱仪和电子轰击电离接口(−70 eV)的气相色谱-质谱联用系统进行GC-MS分析(参见材料表)。
  2. 将质谱传输线温度设为280 °C,离子源温度设为230 °C。
  3. 采用5%苯基-甲基聚硅氧烷色谱柱(30 m × 250 µm × 0.25 µm)(参见材料表),以超高纯度氦气作为载气,流速为1.2 mL/min,保持恒定。
  4. 初始时将气相色谱柱温箱温度维持在60 °C,持续2 min,然后以25 °C/min的速率升温至160 °C,保持1 min;随后以15 °C/min的速率升至175 °C,保持3 min;再以40 °C/min的速率升至220 °C,保持3 min;接着以30 °C/min的速率升至250 °C,保持2 min;最后以30 °C/min的速率升至310 °C,保持2 min。总分析时间为22.125 min。
  5. 在每一轮分析序列开始前,执行完整的自动调谐以及空气和水峰检查。
    1. 打开控制GC-MS系统所有参数的MassHunter采集软件。
      注:仪器系统默认包含MassHunter采集软件。
    2. 在工具栏中打开"View"选项,点击Vacuum control,再点击Tune,然后点击Autotune。自动调谐将在数分钟后完成。
    3. 打开"View"选项,点击Instrument control
    4. 点击Yes,并保存此次自动调谐生成的新调谐文件。
    5. 在工具栏中打开"View"选项,点击Vacuum control,再次点击Tune,然后点击Air & Water check。空气和水峰检查将在数秒后完成。
    6. 打开"View"选项,点击Instrument control
    7. 点击Yes,并保存此次空气和水峰检查生成的新调谐文件。
  6. 使用自动进样器(参见材料表)在不分流模式下进样,进样口温度为280 °C,进样体积为1.5 µL。进样后0.75 min时,以40 mL/min的流速打开分流阀。
    注:每次进样之间,10 µL进样针须用乙酸乙酯清洗三次,再用环己烷清洗三次。所有样品均进行双样重复进样。
  7. 以选择离子监测(SIM)模式分析目标分析物。这是单四极杆质谱系统常用的标准检测模式。
    ​注:表1列出了有机氯农药(OCPs)和内标物(IS)的保留时间(min)及定量参数,其中每个目标物采用一个定量离子和两个定性离子进行分析。定量分析基于目标物定量离子峰面积与内标物离子峰面积的比值。

5. 数据采集

  1. 打开控制气相色谱-质谱联用系统所有参数的MassHunter采集软件。
  2. 在工具栏中打开"序列"选项,编辑序列信息,包括样品名称、样品瓶编号、进样次数、仪器方法以及将生成的文件名称。根据需要添加相应数量的行。
  3. 点击确定,并保存新序列。
  4. 再次在工具栏中打开"序列"选项,然后在下拉菜单中点击运行序列。此时将弹出一个新窗口,用于确认进样方法及样品数据的保存文件夹。再次点击运行序列,进样过程即开始。

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结果

分析方法的全面验证包括线性、基质效应、回收率和重复性。

采用在六种浓度水平(5 µg/kg、10 µg/kg、50 µg/kg、100 µg/kg、200 µg/kg 和 400 µg/kg)下添加空白样品的基质匹配校准曲线进行线性评估。所有有机氯农药(OCPs)的测定系数(R2)均大于或等于 0.99。最低校准水平(LCL)设定为 5 µg/kg,满足食品应用中监测目的所规定的最高允许限量 10 µg/kg11

通过比较有机氯农药在纯溶剂中的校准曲线斜率与基质匹配校准曲线的斜率,进行基质效应评估。基质效应的计算采用以下公式12

基质效应(%)=(基质匹配校准曲线的斜率 − 纯溶剂校准曲线的斜率)/(纯溶剂校准曲线的斜率)× 100。

图2

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讨论

原始的9以及QuEChERS方法的两个官方版本13,14均采用硫酸镁与氯化钠、乙酸盐或柠檬酸盐共同作用,以促进提取过程中乙腈/水混合物的相分离。然而,这些盐类倾向于在质谱(MS)离子源表面沉积形成固体残留,从而增加了基于液相色谱(LC)-MS方法的维护频率。为克服上述缺点,González-Curbelo等人15报道,更具挥发性的甲酸铵在诱导相分离及农药残留提取方面表现良好,适用于液相色谱和气相色谱串联质谱(LC-和GC-MS/MS)。后续研究也采用每克样品添加0.5 g甲酸铵的方法,从多种复杂基质中提取农药残留16,17,18,19。此外,研究表明使用甲酸铵可减少共提取杂...

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披露

本人无任何利益冲突需要披露。

致谢

我要感谢 Javier Hernández-Borges 和 Cecilia Ortega-Zamora 提供的宝贵支持。同时,我也感谢 EAN 大学和拉古纳大学。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
15 mL 一次性玻璃锥形离心管PYREX99502-15
2 mL 离心管Eppendorf30120094
带螺旋盖的 50 mL 离心管VWR21008-169
5977B 质量选择性检测器Agilent Technologies1617R019
7820A 气相色谱系统Agilent Technologies16162016
丙酮Supelco1006582500
乙腈VWR83642320
甲酸铵VWR21254260
自动摇床 KS 3000 i controlIKA3940000
天平Sartorius Lab Instruments Gmbh & CoENTRIS224I-1S
Bondesil-C18,40 µmAgilent Technologies12213012
Bondesil-PSA,40 µmAgilent Technologies12213024
环己烷VWR85385320
EPA TCL 农药混合物Sigma Aldrich48913
乙酸乙酯Supelco1036492500
G4567A 自动进样器Agilent Technologies19490057
HP-5ms Ultra Inert(5%苯基)-甲基聚硅氧烷 30 m x 250 µm x 0.25 µm 色谱柱Agilent Technologies19091S-433UI
一水合硫酸镁Sigma Aldrich434183-1KG
Mega Star 3.R 离心机VWR521-1752
Milli-Q gradient A10MilliporeRR400Q101
p,p'-DDE-d8Dr EhrenstorferDRE-XA12041100AC
移液器吸头 2 - 200 µLBRAND732008
移液器吸头 5 mLBRAND702595
移液器吸头 50 - 1000 uLBRAND732012
移液器 Transferpette S 可调式 10 - 100 µLBRAND704774
移液器 Transferpette S 可调式 100 - 1000 µLBRAND704780
移液器 Transferpette S 可调式 20 - 200 µLBRAND704778
移液器 Transferpette S 可调式 500 - 5000 µLBRAND704782
带熔封内插管的小瓶Sigma Aldrich29398-U
OCPsCAS 登记号
α-BHC319-84-6
β-BHC319-85-7
林丹58-89-9
δ-BHC319-86-8
七氯76-44-8
艾氏剂309-00-2
七氯环氧化物1024-57-3
α-硫丹959-98-8
4,4'-DDE-d8(内标)93952-19-3
4,4'-DDE72-55-9
狄氏剂60-57-1
异狄氏剂72-20-8
β-硫丹33213-65-9
4,4'-DDD72-54-8
硫丹硫酸酯1031-07-8
4,4'-DDT50-29-3
异狄氏剂酮53494-70-5
甲氧滴滴涕72-43-5

参考文献

  1. Sabzevari, S., Hofman, J. A worldwide review of currently used pesticides' monitoring in agricultural soils. Science of The Total Environment. 812, 152344(2022).
  2. Tzanetou, E. N., Karasali, H. A. Comprehensive review of organochlorine pesticide monitoring in agricultural soils: The silent threat of a conventional agricultural past. Agriculture. 12 (5), 728(2022).
  3. Farenhorst, A. Importance of soil organic matter fractions in soil-landscape and regional assessments of pesticide sorption and leaching in soil. Soil Science Society of America Journal. 70 (3), 1005-1012 (2006).
  4. Silva, V., et al. Pesticide residues in European agricultural soils - A hidden reality unfolded. Science of The Total Environment. 653, 1532-1545 (2019).
  5. Vischetti, C., et al. Sub-lethal effects of pesticides on the DNA of soil organisms as early ecotoxicological biomarkers. Frontiers in Microbiology. 11, 1892(2020).
  6. Alengebawy, A., Abdelkhalek, S. T., Qureshi, S. R., Wang, M. -Q. Heavy metals and pesticides toxicity in agricultural soil and plants: Ecological risks and human health implications. Toxics. 9 (3), 42(2021).
  7. Zikankuba, V. L., Mwanyika, G., Ntwenya, J. E., James, A. Pesticide regulations and their malpractice implications on food and environment safety. Cogent Food & Agriculture. 5 (1), 1601544(2019).
  8. Varela-Martínez, D. A., González-Sálamo, J., González-Curbelo, M. Á, Hernández-Borges, J. Quick, Easy, Cheap, Effective, Rugged and Safe (QuEChERS) extraction. Handbooks in Separation Science. , Elsevier. Amsterdam, the Netherlands. 399-437 (2020).
  9. Anastassiades, M., Lehotay, S. J., Štajnbaher, D., Schenck, F. J. Fast and easy multiresidue method employing acetonitrile extraction/partitioning and "dispersive solid-phase extraction" for the determination of pesticide residues in produce. Journal of AOAC International. 86 (2), 412-431 (2003).
  10. González-Curbelo, M. Á, et al. Evolution and applications of the QuEChERS method. Trends in Analytical Chemistry. 71, 169-185 (2015).
  11. European Union. European Regulation (EC) NO 396/2005 of the European Parliament and of the Council of 23 February 2005 on maximum residue levels of pesticides in or on food and feed of plant and animal origin and amending Council Directive 91/414/EEC. Official Journal of the European Union. 70, 1-16 (2005).
  12. Kwon, H., Lehotay, S. J., Geis-Asteggiante, L. Variability of matrix effects in liquid and gas chromatography-mass spectrometry analysis of pesticide residues after QuEChERS sample preparation of different food crops. Journal of Chromatography A. 1270, 235-245 (2012).
  13. Lehotay, S. J., et al. Determination of pesticide residues in foods by acetonitrile extraction and partitioning with magnesium sulfate: Collaborative study. Journal of AOAC International. 90 (2), 485-520 (2007).
  14. European Committee for Standardization (CEN). Standard Method EN 15662. Food of plant origin-Determination of pesticide residues using GC-MS and/or LC-MS/MS following acetonitrile extraction/partitioning and clean-up by dispersive SPE-QuEChERS method. European Committee for Standardization. , (2008).
  15. González-Curbelo, M. Á, Lehotay, S. J., Hernández-Borges, J., Rodríguez-Delgado, M. Á Use of ammonium formate in QuEChERS for high-throughput analysis of pesticides in food by fast, low-pressure gas chromatography and liquid chromatography tandem mass spectrometry. Journal of Chromatography A. 1358, 75-84 (2014).
  16. Han, L., Sapozhnikova, Y., Lehotay, S. J. Method validation for 243 pesticides and environmental contaminants in meats and poultry by tandem mass spectrometry coupled to low-pressure gas chromatography and ultrahigh-performance liquid chromatography. Food Control. 66, 270-282 (2016).
  17. Lehotay, S. J., Han, L., Sapozhnikova, Y. Automated mini-column solid-phase extraction clean-up for high-throughput analysis of chemical contaminants in foods by low-pressure gas chromatography-tandem mass spectrometry. Chromatographia. 79 (17), 1113-1130 (2016).
  18. Lehotay, S. J. Possibilities and limitations of isocratic fast liquid chromatography-tandem mass spectrometry analysis of pesticide residues in fruits and vegetables. Chromatographia. 82 (1), 235-250 (2019).
  19. Han, L., Matarrita, J., Sapozhnikova, Y., Lehotay, S. J. Evaluation of a recent product to remove lipids and other matrix co-extractives in the analysis of pesticide residues and environmental contaminants in foods. Journal of Chromatography A. 1449, 17-29 (2016).
  20. Varela-Martínez, D. A., González-Curbelo, M. Á, González-Sálamo, J., Hernández-Borges, J. Analysis of pesticides in cherimoya and gulupa minor tropical fruits using AOAC 2007.1 and ammonium formate QuEChERS versions: A comparative study. Microchemical Journal. 157, 104950(2020).
  21. González-Curbelo, M. Á, Varela-Martínez, D. A., Riaño-Herrera, D. A. Pesticide-residue analysis in soils by the QuEChERS method: A review. Molecules. 27 (13), 4323(2022).
  22. Anastassiades, M., Maštovská, K., Lehotay, S. Evaluation of analyte protectants to improve gas chromatographic analysis of pesticides. Journal of Chromatography A. 1015 (1-2), 163-184 (2003).
  23. Maštovská, K., Lehotay, S., Anastassiades, M. Combination of analyte protectants to overcome matrix effects in routine GC analysis of pesticide residues in food matrixes. Analytical Chemistry. 77 (24), 8129-8137 (2005).
  24. Rahman, M., Abd El-Aty, A., Shim, J. Matrix enhancement effect: A blessing or a curse for gas chromatography? - A review. Analytica Chimica Acta. 801, 14-21 (2013).
  25. Rouvire, F., Buleté, A., Cren-Olivé, C., Arnaudguilhem, C. Multiresidue analysis of aromatic organochlorines in soil by gas chromatography-mass spectrometry and QuEChERS extraction based on water/dichloromethane partitioning. Comparison with accelerated solvent extraction. Talanta. 93, 336-344 (2012).
  26. Lesueur, C., Gartner, M., Mentler, A., Fuerhacker, M. Comparison of four extraction methods for the analysis of 24 pesticides in soil samples with gas chromatography-mass spectrometry and liquid chromatography-ion trap-mass spectrometry. Talanta. 75 (1), 284-293 (2008).
  27. Ðurović-Pejčev, R. D., Bursić, V. P., Zeremski, T. M. Comparison of QuEChERS with traditional sample preparation methods in the determination of multiclass pesticides in soil. Journal of AOAC International. 102 (1), 46-51 (2019).
  28. European Commission. SANTE/11312/2021. Guidance document on analytical quality control and method validation procedures for pesticide residues analysis in food and feed. European Commission. , (2021).

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QuEChERS