我们设计、制造并验证了一种可快速处理富含韧皮部的柑橘接穗组织的仪器。与现有方法相比,接穗组织提取仪(BTE)提高了样品通量,同时降低了所需的人力和设备成本。
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我们设计、制造并验证了一种可快速处理富含韧皮部的柑橘接穗组织的仪器。与现有方法相比,接穗组织提取仪(BTE)提高了样品通量,同时降低了所需的人力和设备成本。
柑橘的嫁接传播性韧皮部限制病原体,如病毒、类病毒和细菌,已在全球范围内引发严重流行病并造成重大经济损失。例如,柑橘衰退病毒(citrus tristeza virus)已导致全球超过1亿棵柑橘树死亡,而"Candidatus Liberibacter asiaticus"仅在佛罗里达州就造成了90亿美元的损失。使用经病原体检测的柑橘接穗进行苗木繁殖,是防控此类病原体的关键措施。加州大学河滨分校的柑橘无性系保护计划(Citrus Clonal Protection Program, CCPP)每年利用聚合酶链式反应(PCR)检测技术,对来自柑橘接穗母树的数千个样本进行检测,以保护加利福尼亚州的柑橘产业,并向国家无病植株网络提供无病繁殖材料。然而,柑橘病毒和类病毒高通量分子检测中的一个严重瓶颈是植物组织处理步骤。
适当的组织制备对于提取高质量核酸并用于后续PCR检测至关重要。植物组织的切碎、称重、冷冻干燥、研磨以及低温离心等防止核酸降解的操作耗时且劳动强度大,并需要昂贵且专用的实验设备。本文介绍了专门设计用于快速处理富含韧皮部的柑橘接穗树皮组织的一种仪器——接穗组织提取仪(budwood tissue extractor, BTE)的验证结果。与现有方法相比,BTE使样本通量提高了100%,同时降低了人力成本和设备费用。本研究中,BTE提取样本的DNA得率为80.25 ng/µL,与CCPP手工切碎法(77.84 ng/µL)相当。该仪器及快速植物组织处理方案可惠及加利福尼亚州多家柑橘诊断实验室和项目,并有望成为全球其他木本多年生作物组织处理的示范系统。
柑橘韧皮部限制性、可嫁接传播的病原体,如类病毒、病毒和细菌,已在全球所有柑橘种植区引发毁灭性流行病,并造成严重的经济损失。柑橘类病毒因其对具有重要经济价值的柑橘类型(如枳、枳杂交种、宽皮橘、克莱门蒂橘和柑橘)引起碎皮病和萎黄病,已成为限制生产的因素1,2,3。在加利福尼亚州,随着消费者对易剥皮、分瓣和无籽果实的偏好转变,这些对类病毒敏感的柑橘类型构成了不断增长且盈利的“易剥柑橘”市场基础4,5,6。因此,加利福尼亚州食品与农业部(CDFA)通过“柑橘苗圃种苗病虫害清洁计划—参议院法案140”对柑橘类病毒进行监管,CDFA植物病虫害诊断科的实验室每年进行数千次柑橘类病毒检测7,8,9,10。自20世纪30年代全球疫情暴发以来,柑橘衰退病毒(CTV)已导致超过1亿棵柑橘树死亡3,9,10,11。在加利福尼亚州,该病毒的茎陷点株系和破坏枳抗性的株系对价值36亿美元的加州柑橘产业构成严重威胁12,13,14。因此,CDFA将CTV列为管制性A类植物害虫,中央加利福尼亚衰退病根除机构(CCTEA)的实验室每年开展广泛的田间调查并进行数千次病毒检测15,16。据估计,细菌“Candidatus Liberibacter asiaticus”(CLas)及其引起的黄龙病(HLB)已导致佛罗里达州柑橘种植面积减少40%、柑橘运营减少57%、近8,000个工作岗位流失,造成近90亿美元的经济损失17,18。在加利福尼亚州,假设因HLB导致柑橘种植面积减少20%,预计将造成超过8,200个工作岗位流失,并使该州国内生产总值减少逾5亿美元。因此,柑橘病虫害预防计划每年投入超过4,000万美元用于调查、检测和根除加州境内的CLas14,17,19,20。
管理柑橘类病毒、病毒和细菌的关键措施是使用经过病原体检测的繁殖材料(即接穗)进行植株培育。经过病原体检测的柑橘接穗是在综合性的检疫项目中生产并维持的,这些项目采用了先进的病原体清除与检测技术10,21。位于加州大学河滨分校的柑橘克隆保护计划(Citrus Clonal Protection Program, CCPP)每年对大量新引入加州及美国的柑橘品种接穗样本以及柑橘接穗母树进行检测,以保护加州的柑橘产业,并支持国家清洁植株网络(National Clean Plant Network for Citrus)的运行10,17,22。为了应对大规模的柑橘检测需求,高通量、可靠且成本效益高的病原体检测方法是CCPP等项目成功实施的基本组成部分7,10,22。
尽管基于分子的病原体检测方法(如聚合酶链式反应,PCR)已显著提高了植物诊断实验室的检测通量,但根据我们的经验,高通量检测流程实施过程中最关键的瓶颈之一是植物组织样本的前处理步骤。这一问题在柑橘检测中尤为突出,因为目前可用于富含韧皮部组织(如叶片叶柄和接穗树皮)处理的方案均耗时耗力,且需要昂贵且专用的实验设备。这些方案通常包括手工切碎、称重、冷冻干燥、研磨以及低温离心,以避免核酸降解8,23,24。例如,在CCPP诊断实验室中,样本前处理包括以下步骤:(i) 手工切碎(每位操作人员每小时处理6–9个样本),(ii) 冷冻干燥(16–24小时),(iii) 粉碎(30–60秒),以及(iv) 离心(1–2小时)。该过程还需要专用耗材(如高强度安全锁螺帽管、不锈钢研磨珠、适配器、刀片、手套)以及多种昂贵的实验设备(如超低温冰箱、冷冻干燥机、组织粉碎仪、液氮冷冻站、冷藏离心机)。
与任何行业一样,设备工程和流程自动化是降低成本、提高通量并提供高质量、均一产品与服务的关键。柑橘产业亟需低成本的组织处理设备,这类设备应操作简便、对操作人员技术要求低,便于推广至诊断实验室和田间现场应用,从而实现高通量样本处理,以支持下游病原体的快速检测。Technology Evolving Solutions(TES)与CCPP共同研发(即设计与制造)并验证(即使用柑橘样本进行测试,并与标准实验室流程进行比较)了一款低成本(即无需依赖专业实验室设备)的仪器,用于快速处理富含韧皮部的柑橘组织(即接穗枝条),该仪器被命名为接穗组织提取仪(budwood tissue extractor, BTE)。如图1所示,BTE包含一个用于供电和控制的底座组件,以及一个可拆卸的腔室,用于处理柑橘接穗。BTE腔室配备有专门设计的研磨轮,可有效剥离柑橘接穗上富含韧皮部的树皮组织。被粉碎的树皮组织通过滑道迅速排入含有提取缓冲液的注射器中,经过过滤后即可直接用于核酸的提取与纯化,无需额外的人工操作或预处理步骤(图1)。BTE系统还配备无纸化样本追踪应用程序和集成称重功能,可将样本处理信息实时记录至在线数据库中。
BTE 系统使 CCPP 的实验室诊断能力提高了 100% 以上,持续生产出适合纯化高质量核酸的柑橘组织提取物,并可用于通过 PCR 检测柑橘嫁接传播病原体的下游分析。更具体而言,BTE 将组织处理时间从 24 小时以上缩短至每样本约 3 分钟,替代了成本超过 60,000 美元的实验室仪器(图 2,步骤 2-4),并实现了更大样本量的处理。
本文展示了利用来自母树的柑橘接穗样品,通过BTE高通量柑橘树皮组织处理、核酸提取及病原体检测所获得的验证数据,样品包括分别来自CCPP Rubidoux检疫中心和Lindcove基础育种中心的所有相应阳性和阴性对照。我们还展示了与当前实验室流程相比的通量及处理时间的变化(图2)。此外,本研究为柑橘病原体检测实验室提供了详细的分步操作方案,并展示了BTE如何支持无病原体苗圃材料、病原体调查及根除计划的相关功能。

图1:接穗组织提取装置。 BTE包含一个用于供电和控制的底座组件,以及一个可拆卸的腔室,用于处理柑橘接穗。BTE腔室配备有专门设计的研磨轮,可剥离富含韧皮部的柑橘接穗树皮组织。粉碎后的树皮组织通过滑动出口快速排入注射器,经过滤后即可用于核酸提取与纯化,无需额外操作或预处理。缩写:BTE = budwood tissue extractor(接穗组织提取装置)。请点击此处查看该图的放大版本。

图2:传统手工切碎实验流程与BTE处理方法的逐步对比。 BTE处理包括高通量柑橘树皮组织处理、核酸提取和病原体检测。各步骤所需时间在括号中注明。请点击此处查看该图的放大版本。
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1. 采集待运输的柑橘接穗样品
2. 在通风橱中设置
注意:建议在通风橱内操作BTE。这将降低植物组织交叉污染和实验室污染的风险。
3. 设置清洁站(补充图 S1)。
4. 用于柑橘接穗脱皮的BTE材料处理
5. 清洁BTE可拆卸腔室
警告:如果注射器套装中的缓冲液沾到腔室或载玻片上,应立即冲洗,并在清洁前遵守实验室的所有安全规则。注射器套装中含有硫氰酸胍。若该缓冲液与漂白剂接触,将产生氰化物气体。
6. 处置与消毒
7. BTE 柑橘接穗提取物中组织处理及纯化 RNA 质量的评估
注意:在本实验方案中,我们使用了来自255棵柑橘树的接穗样品,比较了采用BTE方法处理柑橘接穗组织所需的时间以及从树皮组织提取物中纯化RNA的质量(图2右侧,步骤1、步骤5和步骤6),与Dang等人23所述的经监管批准的柑橘接穗组织处理方法(包括手工剥皮和切碎、冷冻干燥、研磨及树皮组织离心)所制备样品的相应指标(图2左侧,步骤1-6)。
8. 利用从BTE柑橘接穗提取物中纯化的RNA评估交叉污染及检测柑橘病毒和类病毒
注意:在本实验方案中,我们使用了来自72棵无病毒感染的柑橘树和1棵混合感染病毒与类病毒的柑橘树的接穗材料,以评估在使用BTE处理样本时(图2右侧,步骤1、步骤5和步骤6)样本间发生交叉污染的可能性,以及通过BTE从树皮组织提取物中纯化的RNA是否适合作为逆转录定量PCR(RT-qPCR)检测柑橘病毒和类病毒的模板。
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利用BTE处理的接穗柑橘组织进行RNA提取、纯化及质量评估,并比较组织处理所需时间
本实验采用255株代表性柑橘植株的接穗样品,比较BTE法与标准方法所提取RNA的质量。样品通过接穗组织提取仪(BTE)进行处理(操作步骤4.1–4.6及图2右侧的步骤1、步骤5和步骤6),或按照监管机构批准的柑橘接穗组织处理方法制备,后者包括手工剥皮与切碎、冷冻干燥、研磨粉碎以及树皮组织的离心,具体方法见Dang等人的文献23(图2左侧,步骤1–6)。
将BTE与传统的手工切碎及实验室设备方案在柑橘组织处理中进行并行比较,结果表明,所提取的核酸质量(即浓度、纯度和完整性)(图3A-C)以及用于柑橘病原体PCR检测的适用性(数据未显示)相当。同时,采用TE/BTE系统显...
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随着柑橘黄龙病(HLB)的出现,为了减少损失,柑橘产业、监管机构和诊断实验室被敦促依赖高通量核酸提取方法,结合低通量的手动样品处理和病原体检测分析技术(如qPCR34),对单株柑橘树进行检测,同时配合病害管理措施35。加利福尼亚州的HLB阳性率已从2012年的0.01%上升至2020年的1.2%。尽管qPCR是一种强大且可靠的病原体检测工具,但目前可用的技术无法采集和处理足够量的植物组织,导致对加利福尼亚州柑橘树中的亚洲韧皮杆菌(CLas)存在明显的采样不足和检测不足。采样不足和检测不足既体现在被检测树木的数量上,也体现在每棵树所处理的植物材料数量(即叶片数量)上;并且由于受感染叶片在树冠内的分布具有随机性,早期或轻度感染极易被遗漏。当前的采样和CLas检测方法因成本(如人力和设备)限制,难以随检测需求的增加而扩大规模。目前,加利福尼亚州大多数柑橘诊断实验室用于获取适合柑橘病原体检测的核酸的样品处理方法,需要超过17小时的手动操作,以及成本超过10万美元的专业耗材和设备。
本文介绍了用于...
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作者声明不存在竞争性财务利益。
作者谨向卡惠拉人致以敬意,感谢他们作为实验工作所在地的传统守护者。我们感谢加州大学河滨分校的诺曼·埃尔斯兰德教授(Norman Ellstrand)提供实验室空间,使本项目得以在该校加州农业与食品企业(CAFÉ)计划支持下开展研究活动。本研究得到了加州食品与农业部(CDFA)特色作物区块拨款计划(资助编号:18-0001-055-SC)的支持。额外支持还来自加州研究委员会(CRB)项目6100;美国农业部国家食品与农业研究所哈奇项目(Hatch project 1020106);以及美国国家清洁植株网络—美国农业部动植物卫生检验局(AP17PPQS)。&T00C118, AP18PPQS&T00C107, AP19PPQS&T00C148, & AP20PPQS&T00C049),授予Georgios Vidalakis。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 0.08" 六角割草线 | PowerCare | FPRO07065 | 更换刀片时需要使用 |
| 1 马力,8 加仑空气压缩机 | California Air Tools | 8010 | 冲洗后快速干燥腔室 |
| 1.5 mL 微量离心管 | Globe Scientific | 111558B | 用注射器冲洗后储存样品 |
| 10 mL 注射器套装 | Technology Evolving Solutions | TE006-F1-10A-G1000-E1 | 用于切割注射器材料。含硫氰酸胍缓冲液的 1 L 瓶装。警告——含有硫氰酸胍,需使用危险废物处理服务——切勿与漂白剂混合 |
| 12" 尺子 | Westcott | 16012 | 切割前测量割草线长度 |
| 12% 次氯酸钠 | Hasa | 1041 | 处理后对腔室进行消毒 |
| -20 °C 冰箱 | Insignia | NS-CZ70WH0 | 处理后储存样品 |
| 4" × 12" 塑料袋 | Plymor | FP20-4x12-10 | 运输过程中用于盛放枝条。O型圈将袋子连接到BTE腔室以实现密封 |
| 6" 棉签 | Puritan | 806-PCL | 用于清除堵塞的棉签 |
| 7 加仑储物箱 | HDX | 206152 | 用于盛放次氯酸钠溶液以消毒腔室,以及用于冲洗腔室的水 |
| 气动吹枪 | JASTIND | JTABG103A | 将高压空气导入腔室 |
| 黑色记号笔 | Sharpie | S-19421 | 标记1.5 mL离心管,以便后续识别样品 |
| 瓶口分液器 | Brand | Z627569 | 可调节的瓶口分液器,用于将硫氰酸胍加入注射器中 |
| BTE腔室 | Technology Evolving Solutions | TE002BB-A05-E1 | 用于处理接穗枝条。包含O型圈、BTE滑块、滑动活塞、排水阀、盖子、刀片组及刀片组拆卸工具 |
| 洗洁精 | Dawn | 57445CT | 表面活性剂,可增强次氯酸钠对腔室的渗透性 |
| 带HEPA过滤器的通风橱 | Air Science | P5-36XT-A | 带HEPA过滤器的通风橱(ASTS-030) ,用于减少可能的污染并防止化学液体溅出 |
| 隔热泡沫运输容器 | PolarTech | 261/J50C | 隔热运输容器,用于采集后在冰上运送样品 |
| 实验服 | Red Kap | KP14WH LN 46 | 实验服,用于减少可能的污染并防止化学液体溅出 |
| 笔记本电脑 | Microsoft | Surface | 具备Wi-Fi功能的笔记本电脑,用于运行TES图形用户界面。初始设置需要使用,可提供有关组织处理底座的更详细信息 |
| 支持NFC功能的手机 | Samsung | Galaxy S9 | 用于下载并使用TES手机应用程序的手机 |
| NFC夹式标签 | Technology Evolving Solutions | TE005-Clip-E1 | 可与树木关联的样品标签。设计用于与TES手机应用程序配合使用 |
| NFC颈圈标签 | Technology Evolving Solutions | TE005-Collar-E1 | 固定在树木上的标签。设计用于与TES手机应用程序配合使用 |
| 腈类手套 | Usa Scientific | 3915-4400 | 手套,用于减少可能的污染并防止化学液体溅出 |
| 降噪耳罩 | 3M | 90565-4DC-PS | 操作空气压缩机和组织处理底座时保护耳朵 |
| 聚氨酯回弹空气软管 | FYPower | 510019 | 连接气枪与压缩机 |
| 安全护目镜 | Solidwork | SW8329-US | 防护眼睛免受化学和物理危害 |
| 喷雾瓶 | JohnBee | B08QM81BJV | 喷洒漂白剂以对表面进行去污 |
| 组织提取底座 | Technology Evolving Solutions | TE001-A-E1 | 用于处理植物组织的系统。需配合BTE或LTE腔室使用。包含电源线、刀片适配器和8/32" 内六角扳手 |
| 组织处理底座称重秤 | Technology Evolving Solutions | TE003-A05-200g-01-E1 | 量程200 g、分辨率为0.01的称重秤,可连接至组织处理底座以强制执行重量范围和/或关联样品重量。包含秤体、电源线、连接线缆、5 mL注射器支架和塔式气流屏蔽罩 |
| 蛭石 | EasyGoProducts | B07WQDZGRP | 使用危险废物处理服务运输危险废物(硫氰酸胍)时所需 |
| 电线剪 | Boenfu | BOWC-06002-US | 用于剪断割草线的剪线钳 |
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申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表
申请许可An erratum was issued for: Automating Citrus Budwood Processing for Downstream Pathogen Detection Through Instrument Engineering. The Authors section was updated from:
Deborah Pagliaccia1,6
Douglas Hill2
Emily Dang1
Gerardo Uribe1
Agustina De Francesco1
Ryan Milton2
Anthony De La Torre2
Axel Mounkam2
Tyler Dang1
Sohrab Botaghi1
Irene Lavagi-Craddock1
Alexandra Syed1
William Grover3
Adriann Okamba4,5
Georgios Vidalakis2
1Department of Microbiology and Plant Pathology, University of California Riverside
2Technology Evolving Solutions (TES)
3Department of Bioengineering, University of California Riverside
4Ecole Supérieure d'Ingénieurs Léonard de Vinci ESILV
5University of California Riverside
6California Agriculture and Food Enterprise (CAFÉ), University of California Riverside
to:
Deborah Pagliaccia1,6
Douglas Hill2
Emily Dang1
Gerardo Uribe1
Agustina De Francesco1
Ryan Milton2
Anthony De La Torre2
Axel Mounkam2
Tyler Dang1
Sohrab Bodaghi1
Irene Lavagi-Craddock1
Alexandra Syed1
William Grover3
Adriann Okamba4,5
Georgios Vidalakis1
1Department of Microbiology and Plant Pathology, University of California Riverside
2Technology Evolving Solutions (TES)
3Department of Bioengineering, University of California Riverside
4Ecole Supérieure d'Ingénieurs Léonard de Vinci ESILV
5University of California Riverside
6California Agriculture and Food Enterprise (CAFÉ), University of California Riverside