需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

小鼠假体周围Candida albicans感染模型

1.7K 次观看

⸱

DOI:

10.3791/65263

⸱

2024年2月2日

 ,  ,  ,  ,  , 

本文内容

摘要

由危险病原体引起的假体周围关节感染(PJI)在临床骨科中较为常见。现有的动物模型无法准确模拟PJI的实际状况。本文中,我们建立了一种与白色念珠菌(Candida albicans)生物膜相关的PJI小鼠模型,用于研究和开发针对PJI的新疗法。

摘要

假体周围关节感染(PJI)是Candida albicans(C. albicans)引起的一种常见感染,日益引起外科医生和科学家的关注。通常,C. albicans会在感染部位形成生物膜,从而使其免受抗生素和免疫清除的影响。目前治疗PJI的金标准是手术干预,包括移除感染假体、清创、抗微生物治疗以及假体再植入。因此,建立动物PJI模型对于研发针对PJI的新药或治疗方法具有重要意义。本研究中,在将C. albicans沿导丝接种至关节腔之前,先将一根表面光滑的镍钛合金丝(骨科临床广泛应用的一种植入物)插入C57BL/6小鼠的股骨关节内。14天后,通过扫描电子显微镜(SEM)观察到植入物表面已形成成熟且厚实的生物膜。感染关节组织标本的H&E染色显示骨小梁显著减少。综上所述,本研究成功建立了一种操作简便、成功率高、重复性好且临床相关性强的小鼠PJI模型。该模型有望成为研究C. albicans生物膜相关PJI预防的重要临床前模型。

引言

Candida albicans(C. albicans)可共生存在于人体多个部位1,同时也是最常见的机会性病原真菌,尤其在免疫功能低下患者中可引起危及生命的侵袭性真菌感染2,3。C. albicans 作为一种多形性真菌,可在酵母相和菌丝相之间相互转化。菌丝相具有更高的毒力,对细胞和组织的黏附性及侵袭能力更强4,5。此外,C. albicans 还可在义齿、导管和支架等生物医学材料表面形成生物膜1,6,7。生物膜致密的三维结构限制了抗真菌药物的渗透,同时表达耐药基因,并下调真菌细胞的代谢以抵抗免疫系统的清除作用6,7。因此,与生物膜相关的感染 在临床上极具治疗挑战性8。

Staphylococcus aureus、凝固酶阴性葡萄球菌和肠杆菌是导致PJI的主要病原体9。尽管真菌性PJI的发病率相对较低(约1%)10,但与细菌性PJI相比,其治疗费用更高11,治疗周期更长11,且治疗成功率更低10。近年来,真菌性PJI的发病率逐年上升10。念珠菌性PJI占真菌性PJI的77%–84%10,12,其中C. albicans是最常见的念珠菌种类(占54%)。因此,有必要对真菌性PJI进行深入研究。

目前,假体关节感染(PJI)的治疗采用翻修手术,包括以下步骤:(1)移除受感染的植入物,(2)清创,(3)抗菌治疗,以及(4)重新植入假体。在彻底清创后,植入含抗生素的骨水泥,并对患者进行全身性抗生素治疗,持续超过6周,以在植入新假体前有效控制感染13。然而,该方法无法完全清除组织中的病原体,且长期使用抗菌治疗处理的复发性感染极易导致耐药菌株的产生14,15,16。

建立PJI的动物模型对于研发PJI的新药或治疗方法至关重要。在PJI的发展过程中,假体周围会形成较大的死腔,导致血肿形成,进而阻断周围组织的血液供应,并削弱抗生素的疗效11,15。由于难以模拟假体周围的微环境,传统的动物模型无法准确再现PJI的实际状况17,18。

本研究通过使用临床上广泛应用的钛镍丝模拟关节植入物,构建了一种小鼠C. albicans生物膜相关性人工关节感染(PJI)模型19,20。该PJI模型具有操作简便、成功率高、重复性好以及与临床相关性强等优点,有望成为研究C. albicans生物膜相关性人工关节感染预防与治疗的重要模型。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

实验动物购自西安交通大学。所有动物实验程序均经西安交通大学机构动物伦理委员会批准(批准编号:SCXK [陕西] 2021-103)。小鼠在实验前饲养一周,每笼5只,可自由摄取食物和饮水。动物在室温(RT;24 °C ± 1 °C)及12小时光照/12小时黑暗循环条件下饲养,直至实验开始。

1. 缓冲液与仪器准备

  1. C. albicans 细胞培养
    1. 接种单克隆菌落 白色念珠菌 使用接种环从酵母提取物蛋白胨葡萄糖(YPD)平板培养基中挑取(SC5314)菌株,接种于5 mL YPD液体培养基(YPD + 50 µg/mL 羧苄青霉素)中。
    2. 振荡 C. albicans 细胞随后在30 °C、220 rpm条件下振荡培养过夜。
    3. 将悬液在400 x g 在室温下孵育5分钟。重悬沉淀物 白色念珠菌 生理盐水中的细胞并稀释细胞浓度 至 1 × 106 通过目视调整浊度至与0.5麦氏标准相当,使细胞浓度为cells/mL。
  2. 生理盐水的制备
    1. 称取0.9 g氯化钠,溶于100 mL去离子水中,配制0.9%生理盐水。
  3. 手术器械准备
    1. 使用前将手术器械(剪刀、镊子、止血钳、持针器、缝合针)和钛镍合金丝(直径约0.5 mm)在高压灭菌器中灭菌(121 °C,30 min)。

2. 小鼠假体周围感染模型的建立

  1. 将30只C57BL/6小鼠(雄性,15-20 g)随机分为3组(每组10只),分别为对照组、空白植入组(植入钛镍丝但不感染C. albicans)和PJI组(植入钛镍丝并感染C. albicans)。
  2. 使用1-4%异氟烷吸入麻醉小鼠,在去除左后肢毛发并用碘液消毒前确认麻醉深度,以翻正反射消失且对足趾刺激无反应为标准。在 麻醉期间,双眼涂抹眼膏以防止角膜干燥,并在手术及恢复期间补充热量。
  3. 对于对照组小鼠,不进行任何处理,自由饮水和进食。
  4. 对于空白植入组和PJI组小鼠,使用#10刀片或无菌剃刀在每只左后肢膝关节处做一条5 mm的纵向切口,暴露关节。
  5. 将无菌注射器针头(26 G)插入股骨髓腔,制造一个长度为5 mm的孔洞。
  6. 将一根光滑的镍钛合金丝(直径0.5 mm,长度5 mm)插入孔中,随后用剪刀剪断(图1)。
  7. 对于空白植入组小鼠,在逐层缝合伤口前,沿镍钛合金丝滴加2 µL YPD培养基(逐滴加入),使用尼龙缝线(直径0.15 mm)逐层关闭切口。
  8. 对于PJI组小鼠,在逐层缝合伤口前,沿镍钛合金丝向小鼠关节腔内接种C. albicans细胞 (1 × 106 个细胞/mL)2 µL(逐滴加入),使用尼龙缝线逐层关闭切口。
  9. 将小鼠饲养14天,期间自由饮水和进食。皮下注射美洛昔康(4 mg/kg),每24小时一次,持续最多3天。
  10. 14天后,使用3%异氟烷麻醉小鼠,随后通过颈椎脱位法处死小鼠。

3. 假体关节感染模型评估

  1. 主要器官感染的评估
    1. 处死小鼠后,采集其肾脏、肝脏和脾脏。
    2. 向每种器官中加入 500 µL 无菌生理盐水,在均质器上于 4 °C 条件下研磨组织。
    3. 取步骤 3.1.2 制备的匀浆液 100 µL 接种至 YPD 平板,并用弯头玻璃棒均匀涂布。
    4. 将 YPD 平板倒置于 37 °C 培养箱中培养 48 小时。
    5. 肉眼观察并计数菌落数量。
  2. 观察植入物表面的白色念珠菌(C. albicans)及其生物膜
    1. 用剪刀小心剪开小鼠关节处皮肤,随后用镊子取出植入物。
    2. 将植入物浸入 2.5% 戊二醛溶液中,在 4 °C 条件下固定 48 小时。
    3. 用无菌 PBS 冲洗植入物三次,随后将其浸入 1% 锇酸溶液中 3 小时。
    4. 用无菌 PBS 冲洗植入物三次,再依次浸入 50%、70%、80%、90% 和 100% 乙醇溶液中各 15 分钟进行脱水。
    5. 将植入物在叔丁醇中浸泡 30 分钟,重复三次,随后进行冷冻干燥。
    6. 将植入物样品固定于样品台,喷金(镀金层厚度 10 nm),在高真空条件下、1.5 kV 电压下使用扫描电子显微镜(SEM)进行观察。
  3. 股骨组织的病理学分析
    1. 处死小鼠后,用剪刀采集股骨组织。
    2. 将股骨组织浸入 4% 多聚甲醛溶液中,在 4 °C 条件下固定 48 小时。
    3. 将股骨组织置于 10% 福尔马林溶液中保存 1 周。
    4. 将股骨组织依次浸入 50%、70%、80%、90% 和 100% 乙醇溶液中,各 15 分钟,进行脱水处理。
    5. 将脱水后的股骨组织包埋于石蜡中,使用切片机切成 4 µm 厚的组织切片。
    6. 按照标准方案对股骨切片进行苏木精-伊红染色,随后进行病理学分析21。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

将样本接种至平板培养基,经 overnight 培养后计数菌落,是评估病灶局部病原负荷的常用方法22,23。在本研究中,肝脏、肾脏和脾脏样本的微生物培养结果均为阴性,表明本研究所建立的模型仅导致小鼠局部感染,而未引起全身性感染23。

空白植入组中,镍钛合金丝表面未见白色念珠菌(C. albicans)黏附或定植;而PJI组镍钛合金丝表面可见成熟且厚实的生物膜,表明术后14天小鼠体内成功构建了与C. albicans生物膜相关的假体关节感染(PJI)模型。图2展示了植入物的扫描电镜图像23。

H&股骨组织的E染色结果如图所示 图3对照组中可见清晰完整的骨小梁...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

手术过程中由于手术器械或手术环境受到污染而引起的感染,是大多数植入物相关感染的主要原因24,25,26,27。因此,本研究构建了一种与C. albicans生物膜相关的假体关节感染(PJI)小鼠模型。与传统PJI模型中使用悬浮于生理盐水中的无菌不锈钢颗粒作为植入物的方法不同,本研究采用镍钛合金丝——一种常用的植入材料——以模拟C. albicans、植入材料与骨骼之间的相互作用,更接近临床实际情况。

本文所述的PJI模型能够完美模拟临床中PJI的生理环境。该模型仅可用于研究植入期间的感染,而不能用于研究后期的血源性感染。

C. albicans 可通过两种方式接种。一种是在手术期间直接将 C. albicans<...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

作者声明,他们不存在任何已知的可能影响本文所报告工作的竞争性财务利益或个人关系。

致谢

感谢陕西省自然科学基金(项目编号 2021SF-118)和国家自然科学基金(项目编号 81973409、82204631)的资助。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
0.5 Mactutrius turbidibris上海路径科技有限公司5106063
4 °C 冰箱伊莱克斯(中国)电器有限公司ESE6539TA
琼脂北京奥博星生物技术有限责任公司01-001
分析天平岛津ATX124
高压灭菌器三洋MLS-3750
羧苄西林AmrescoC0885
Eclipse Ci 尼康 upright 光学显微镜 尼康Eclipse Ts2-FL
葡萄糖麦克林 D823520
接种环赛默飞世尔科技251586
异氟烷RWD20210103
NaCl西安京西双和制药有限公司20180108
多聚甲醛碧云天生物技术P0099
蛋白胨北京奥博星生物技术有限责任公司01-001
RWD R550 多通道小动物麻醉机 RWDR550
扫描电子显微镜(SEM)日立TM-1000
恒温培养箱上海智楚仪器有限公司ZQTY-50N
超纯水机Heal ForceNW20VF
超声波仪Do-ChromDS10260D
酵母提取物赛默飞世尔科技 OxoidLP0021B

参考文献

  1. Mayer, F. L., Wilson, D., Hube, B. Candida albicans pathogenicity mechanisms. Virulence. 4 (2), 119-128 (2013).
  2. Fan, F., et al. Candida albicans biofilms: antifungal resistance, immune evasion, and emerging therapeutic strategies. International Journal of Antimicrobial Agents. 60 (5-6), 106673(2022).
  3. Tong, Y., Tang, J. Candida albicans infection and intestinal immunity. Microbiological Research. 198, 27-35 (2017).
  4. Kanaguchi, N., et al. Effects of salivary protein flow and indigenous microorganisms on initial colonization of Candida albicans in an in vivo model. Bmc Oral Health. 12, 36(2012).
  5. Gulati, M., Nobile, C. J. Candida albicans biofilms: development, regulation, and molecular mechanisms. Microbes and Infection. 18 (5), 310-321 (2016).
  6. Douglas, L. J. Candida biofilms and their role in infection. Trends in Microbiology. 11 (1), 30-36 (2003).
  7. Nobile, C. J., Johnson, A. D. Candida albicans biofilms and human disease. Annual Review of Microbiology. 69, 71-92 (2015).
  8. Mack, D., et al. Biofilm formation in medical device-related infection. The International Journal of Artificial Organs. 29 (4), 343-359 (2006).
  9. Miller, R., et al. Periprosthetic joint infection: A review of antibiotic treatment. JBJS Reviews. 8 (7), e1900224(2020).
  10. Brown, T. S., et al. Periprosthetic joint infection with fungal pathogens. The Journal of Arthroplasty. 33 (8), 2605-2612 (2018).
  11. Kojic, E. M., Darouiche, R. O. Candida infections of medical devices. Clinical Microbiology Reviews. 17 (2), 255-267 (2004).
  12. Schoof, B., et al. Fungal periprosthetic joint infection of the hip: a systematic review. Orthopedic Reviews (Pavia). 7 (1), 5748(2015).
  13. Izakovicova, P., Borens, O., Trampuz, A. Periprosthetic joint infection: current concepts and outlook. EFORT Open Reviews. 4 (7), 482-494 (2019).
  14. Tande, A. J., Patel, R. Prosthetic joint infection. Clinical Microbiology Reviews. 27 (2), 302-345 (2014).
  15. Stocks, G., Janssen, H. F. Infection in patients after implantation of an orthopedic device. ASAIO Journal. 46 (6), S41-S46 (2000).
  16. Shahi, A., Tan, T. L., Chen, A. F., Maltenfort, M. G., Parvizi, J. In-hospital mortality in patients with periprosthetic joint infection. The Journal of Arthroplasty. 32 (3), 948-952 (2017).
  17. Carli, A. V., Ross, F. P., Bhimani, S. J., Nodzo, S. R., Bostrom, M. P. Developing a clinically representative model of periprosthetic joint infection. The Journal of Bone and Joint Surgery. American Volume. 98 (19), 1666-1676 (2016).
  18. Stavrakis, A. I., Niska, J. A., Loftin, A. H., Billi, F., Bernthal, N. M. Understanding infection: A primer on animal models of periprosthetic joint infection. The Scientific World Journal. 2013, 925906(2013).
  19. Qiao, B., Lv, T. Electrochemical investigation of interaction of candida albicans with titanium-nickel implant in human saliva. International Journal of Electrochemical Science. 17 (2), 22028(2022).
  20. Oh, Y. R., Ku, H. M., Kim, D., Shin, S. J., Jung, I. Y. Efficacy of a Nickel-titanium ultrasonic instrument for biofilm removal in a simulated complex root canal. Materials. 13 (21), 4914(2020).
  21. Feldman, A. T., Wolfe, D. Tissue Processing and Hematoxylin and Eosin Staining. Histopathology: Methods and Protocols. Christina E, D. ay , Springer, New York. 31-43 (2014).
  22. Sinclair, K. D., et al. Model development for determining the efficacy of a combination coating for the prevention of perioperative device related infections: A pilot study. Journal of Biomedical Materials Research - Part B Applied Biomaterials. 101 (7), 1143-1153 (2013).
  23. Mo, F., et al. In vitro and in vivo effects of the combination of myricetin and miconazole nitrate incorporated to thermosensitive hydrogels, on C. albicans biofilms. Phytomedicine. 71, 153223(2020).
  24. Zahar, A., Sarungi, M. Diagnosis and management of the infected total knee replacement: a practical surgical guide. Journal of Experimental Orthopaedics. 8 (1), 14(2021).
  25. Parvizi, J., Jacovides, C., Zmistowski, B., Jung, K. A. Definition of periprosthetic joint infection: Is there a consensus. Clinical Orthopaedics and Related Research. 469 (11), 3022-3030 (2011).
  26. Karczewski, D., et al. Candida periprosthetic joint infections - risk factors and outcome between albicans and non-albicans strains. International Orthopaedics. 46 (3), 449-456 (2022).
  27. Cobo, F., Rodriguez-Granger, J., Sampedro, A., Aliaga-Martinez, L., Navarro-Mari, J. M. Candida prosthetic joint infection. A review of treatment methods. Journal of Bone and Joint Infection. 2 (2), 114-121 (2017).
  28. Cobrado, L., Silva-Dias, A., Azevedo, M. M., Pina-Vaz, C., Rodrigues, A. G. In vivo antibiofilm effect of cerium, chitosan and hamamelitannin against usual agents of catheter-related bloodstream infections. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 68 (1), 126-130 (2013).
  29. Vila, T., et al. Therapeutic implications of C. albicans-S. aureus mixed biofilm in a murine subcutaneous catheter model of polymicrobial infection. Virulence. 12 (1), 835-851 (2021).
  30. Nishitani, K., et al. Quantifying the natural history of biofilm formation in vivo during the establishment of chronic implant-associated Staphylococcus aureus osteomyelitis in mice to identify critical pathogen and host factors. Journal of Orthopaedic Research. 33 (9), 1311-1319 (2015).
  31. Ormsby, R. T., et al. Evidence for osteocyte-media ted bone-matrix degradation associated with periprosthetic joint infection (PJI). European Cells & Materials. 42, 264-280 (2021).
  32. Garlito-Díaz, H., et al. A new antifungal-loaded sol-gel can prevent candida albicans prosthetic joint infection. Antibiotics (Basel). 10 (6), 711(2021).
  33. Harro, J. M., et al. Development of a novel and rapid antibody-based diagnostic for chronic staphylococcus aureus infections based on biofilm antigens. Journal of Clinical Microbiology. 58 (5), e01414-e01419 (2020).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

探索更多文章

假体周围关节感染小鼠PJI模型生物膜形成镍钛合金植入物动物感染模型关节植入物感染抗菌治疗扫描电子显微镜骨小梁丢失