通过高分辨率呼吸测定法分析精子线粒体功能,可以测量密闭腔系统中自由移动的精子的耗氧量。该技术可用于测量人类精子的呼吸,从而提供有关精子线粒体特征和完整性的信息。
方法文章
通过高分辨率呼吸测定法分析精子线粒体功能,可以测量密闭腔系统中自由移动的精子的耗氧量。该技术可用于测量人类精子的呼吸,从而提供有关精子线粒体特征和完整性的信息。
精液质量通常通过常规精液分析进行研究,常规精液分析是描述性的,通常没有定论。男性不育症与精子线粒体活性的改变有关,因此精子线粒体功能的测量是精子质量的指标。高分辨率呼吸测量法是一种测量密闭腔系统中细胞或组织耗氧量的方法。该技术可用于测量人类精子的呼吸,并提供有关精子线粒体质量和完整性的信息。高分辨率呼吸测量法允许细胞自由移动,这在精子的情况下是一个 先验 的优势。该技术可以应用于完整或透化的精子,并允许研究完整的精子线粒体功能和单个呼吸链复合物的活性。高分辨率氧谱仪使用传感器测量氧气浓度,并结合灵敏的软件来计算氧气消耗量。这些数据用于根据耗氧率计算呼吸指数。因此,这些指数是两种耗氧率的比例,并在内部归一化为细胞数量或蛋白质质量。呼吸指数是精子线粒体功能和功能障碍的指标。
据估计,男性不育症占夫妻不育症病例的 40%-50%1。传统的精液分析在确定男性生育能力方面起着至关重要的作用;然而,大约 15% 的不育男性具有正常的精子参数2.此外,常规精液分析提供的精子功能信息有限,不能反映细微的精子缺陷3.
精子线粒体具有特殊的结构,因为它们在鞭毛周围排列成螺旋鞘。线粒体鞘包含数量不等的线粒体,线粒体通过线粒体间连接子连接,并通过线粒体外膜上的有序蛋白质排列锚定在细胞骨架上 4,5。这种结构使得分离精子线粒体特别困难。因此,大多数精子线粒体功能研究都使用原位分析或脱膜精子6。
精子线粒体结构和功能一直与男性不育症有关7,8,9,10,11,这表明对这些细胞器的结构和功能的分析可能是纳入精子分析的良好候选者。
线粒体在细胞能量代谢中起着重要作用,特别是利用氧气通过氧化磷酸化 (OXPHOS) 产生三磷酸腺苷 (ATP)。特别是在精子中,ATP(糖酵解与OXPHOS)的来源存在争议,许多数据仍然存在争议,并且取决于不同的实验方法4,12,13。通过血氧饱和度测量呼吸为细胞的线粒体呼吸能力、线粒体完整性和能量代谢提供了重要的见解14,15,16。传统上,该技术是使用 Clark 氧电极进行的,该电极是一种用于测量线粒体呼吸的仪器,已有 50 多年的历史17,18。此外,使用经典的克拉克氧电极19,20,21分析了精子线粒体耗氧量。使用氧合仪 (Oroboros) 的高分辨率呼吸测定法 (HRR) 比使用经典呼吸测定仪提供更高的灵敏度22。氧图仪由两个带有进样口的腔室组成,每个腔室都有一个极谱法氧传感器。使用这种技术,可以分析组织载玻片、细胞和分离的线粒体悬浮液。样品在腔室中连续搅拌,在实验过程中,测量耗氧量,并使用特定软件计算氧速率。这些腔室显示出减少的氧气泄漏,这是与传统的氧电极装置14,23相比的优势。
与其他细胞一样,在精子的情况下,HRR设备的灵敏度高于传统的呼吸测定法,这意味着HRR设备可用于分析有限数量的完整或透化精子细胞。通过HRR评估精子线粒体功能有两种主要策略:(a)测量完整细胞中的耗氧量,这涉及在含有葡萄糖等底物的培养基中再现呼吸功能,或(b)使用OXPHOS复合物之一测量透化细胞中的耗氧量,并添加特定的底物以分别监测每种功能。
在本研究中,我们描述了使用 HRR 来确定人类精子细胞中的线粒体呼吸。
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这些实验得到了乌拉圭蒙得维的亚共和国大学医学院伦理委员会的批准。

图 1:高分辨率呼吸测量法评估完整和透化人类精子中线粒体功能的工作流程。 该协议分为四个不同的步骤:1)样品的制备,2)Oroboros仪器中的氧气校准,3)完整和透化细胞的耗氧量测量,以及4)从设备中提取数据和分析。缩写:CASA = 计算机辅助精子分析;BWW = Biggers Whitten Whittingham 中等;MRM = 线粒体呼吸介质;ADP = 二磷酸腺苷;FCCP=羰基氰-p-三氟甲氧基苯腙;AA = 抗霉素 A. 请点击这里查看此图的较大版本.
注:使用HRR测量精子细胞耗氧量的工作流程如图 1所示。有关方案中使用的材料、设备和试剂的信息在 材料表中列出。
1. 样品制备
2. 高分辨率呼吸测定法:OXPHOS分析
注:HRR 集成了高度灵敏的氧图(Oxygraph-2 K;Oroboros Instruments GmbH,奥地利因斯布鲁克)和软件(DatLab,版本 4.2;Oroboros Instruments GmbH)。实验数据显示为氧浓度与时间的关系(以O2/106 个细胞·min−1的pmol)和这些数据的实时转换形式显示,使实验者能够在实验仍在进行时跟踪生物和生化样品的呼吸(耗氧量、氧通量)。HRR 可用于跟踪活细胞和运动细胞的呼吸,这对精子特别有用,精子的活力与精子质量和生育潜力有关。该实验室使用带有两个腔室的 HRR Oroboros Oxygraph2-k、Oroboros 仪器。该协议中描述的步骤必须对两个2 mL腔室独立执行。
3. 数据提取和分析

图 2:从高分辨率呼吸测量实验中获取呼吸参数。 (A,B)如图1所示,分别针对完整细胞和通透细胞获得的图示意图。这些参数在前面已经描述过15。请点击这里查看此图的较大版本.

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测定精子细胞中洋地黄皂苷的最佳浓度
在该协议中,我们介绍了使用HRR来监测人类精子细胞中OXPHOS的实时变化。由于该方法可用于分析完整或洋地黄皂苷透化的精子,我们首先介绍了透化精子细胞所需的洋地黄皂苷浓度的标准化(图3)。
洋地黄皂苷用于化学透化,允许底物进入细胞,并用于测量线粒体活性。该化合物必须在完整细胞中滴定,以获得确保细胞膜通透性而不影响线粒体膜完整性所需的最佳浓度。我们在ADP、谷氨酸和苹果酸盐存在下进行滴定。在基线和逐渐加入洋地黄皂苷后测量呼吸速率(图3A)。耗氧量随着洗涤剂浓度的增加而增加,并达到线粒体外膜完整性开始受损的程度(图3A中的红色箭头)。图3B显示了4个代表性实验的平均值±标准误差。结果表明,在洋地黄皂苷浓度为22.5μM时,透化效果最佳(
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HRR 主要取决于几个步骤:(a) 设备维护,(b) 氧传感器的精确校准,(c) 解偶联滴定26,最后,(d) 充分使用代表线粒体功能的指数。设备维护至关重要。建议定期更换极谱法氧传感器的膜,并校正仪器背景。从腔室收集精子后进行大量洗涤对于获得良好的重复至关重要,尤其是在仪器经常用于分析各种组织或细胞的实验室中。精子对少量鱼藤酮、AA、寡霉素和FCCP敏感,因此必须小心地进行洗涤步骤(至少用乙醇清洗三次,用蒸馏水再洗三次)。校准是关键的一步;它必须每天进行,并且针对使用的每种介质(参见协议步骤2.2)。必须谨慎进行解偶联剂滴定,因为必须使用最佳解偶联剂浓度来实现通量的最大刺激并避免过度滴定,因为过度滴定会抑制呼吸27。最佳解偶联剂浓度取决于细胞类型、细胞浓度和培养基,与完整细胞相比,透化细胞和完整细胞14 不同。因此,在精子样本的情况下,其中精子细胞可能是异质的,解偶联器必须适于每个样本28,29,30
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作者没有什么可透露的。
我们要感谢Fertilab男科诊所,特别是JoséMaríaMontes和Andrea Torrents,让我们能够接触到捐赠者。资金:A.C.得到了共和国大学(CSIC_2018,Espacio Interdisciplinario_2021)的资助。从Programa de Desarrollo de Ciencias Básicas(乌拉圭PEDECIBA)获得了额外资金。P.I.和R.S.由共和国大学(I+D,CSIC 2014;I+D、CSIC 2016、Iniciación a la Investigación、CSIC 2019 和 FMV_1_2017_1_136490 ANII-乌拉圭)。PI 由 POS_FMV_2018_1_1007814 和 CAP-UDELAR 2020 提供支持。这些数字是用 Biorender.com 来说明的。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 无酸 - 牛血清白蛋白 | Sigma Aldrich | A8806 | |
| 腺苷 5'-二磷酸 二钾盐二水合 | Sigma Aldrich | A5285 | |
| 来自链霉菌属的阿尼霉素 A。 | Sigma Aldrich | A8674 | |
| 氯化钙 | Sigma Aldrich | C4901 | |
| 羰基氰化物-P-三氟甲氧基苯腙 | Sigma Aldrich | C2920 | |
| DatLab 软件版本 4,2 | Oroboros Instruments GmbH | N/A | |
| D-葡萄糖 | Sigma Aldrich | G7021 | |
| 洋地黄黄皂苷 | Sigma Aldrich | D141 | |
| EGTA | Sigma Aldrich | E4378 | |
| HEPES | Sigma Aldrich | H3375 | |
| L 谷氨酸 | Sigma Aldrich | G1251 | |
| L 苹果酸 | Sigma Aldrich | M1000 | |
| 硫酸镁 | Sigma Aldrich | M7506 | |
| 微升注射器 | Hamilton | 87900 或 80400 | |
| 显微镜相机 | Basler | acA780-75gc | |
| 显微镜 具有相差功能的 Eclipse E200 10X Ph+ | Nikon | N/A | |
| 磷酸二氢钾 | Sigma Aldrich | P5655 | |
| MOPS | Sigma Aldrich | M1254 | |
| 寡霉素 A | Sigma Aldrich | 75351 | |
| Oxygraph-2 K | Oroboros Instruments GmbH | N/A | |
| 氯化钾 | Sigma Aldrich | P3911 | |
| Power O2k-Respirometer | Oroboros Intruments | 10033-01 | |
| 鱼藤酮 | Sigma Aldrich | R8875 | |
| 蔗糖 | Sigma Aldrich | S0389 | |
| 碳酸氢钠 | Sigma Aldrich | S5761 | |
| 乳酸钠 | Sigma Aldrich | L7022 | |
| 丙酮酸钠 | Sigma Aldrich | P2256 | |
| 精子类别分析仪 6.3.0.59 Evolution-SCA Research | Microptic | N/A | |
| 精子计数室 DRM-600 | Millennium Sciences CELL-VU | N/A | |
| 琥珀酸二钠盐 | Sigma Aldrich | W327700 |
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申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表
申请许可An erratum was issued for: High-Resolution Respirometry to Assess Mitochondrial Function in Human Spermatozoa. The Protocol and Representative Result sections were updated.
Step 2.4.12 of the Protocol was updated from:
Finally, inject 1 µL of 5 mM antimycin A (2.5 µM final concentration). This is a complex II inhibitor to discriminate between the mitochondrial and residual oxygen consumption (non-mitochondrial respiration). For the analysis of complex I, add 1 µL of 1 mM rotenone (0.5 µM final concentration), an inhibitor of this complex, instead of AA. Measure the oxygen consumption until the signal decreases and stabilizes.
to:
Finally, inject 1 µL of 5 mM antimycin A (2.5 µM final concentration). This is a complex III inhibitor to discriminate between the mitochondrial and residual oxygen consumption (non-mitochondrial respiration). For the analysis of complex I, add 1 µL of 1 mM rotenone (0.5 µM final concentration), an inhibitor of this complex, instead of AA. Measure the oxygen consumption until the signal decreases and stabilizes.
Figure 3 in the Representative Results section was updated from:

Figure 3: Determination of the optimal concentration of digitonin for the permeabilization of human sperm cells. The respiration rates were measured at 37 °C in MRM medium with glutamate, malate, and adenosine diphosphate. (A) Representative respiratory trace. The blue line is the O2 concentration, and the red line represents the O2 flow per volume correlated. (B) Mitochondria respiration rate means ± standard error, n = 4. The red arrow represents the optimal concentration. Abbreviation: dig = digitonin. Please click here to view a larger version of this figure.
to:

Figure 3: Determination of the optimal concentration of digitonin for the permeabilization of human sperm cells. The respiration rates were measured at 37 °C in MRM medium with glutamate, malate, and adenosine diphosphate. (A) Representative respiratory trace. The blue line is the O2 concentration, and the red line represents the O2 flow per volume correlated. (B) Mitochondria respiration rate means ± standard error, n = 4. The red arrow represents the optimal concentration. Abbreviation: dig = digitonin. Please click here to view a larger version of this figure.