勘误：利用 体内 出生后电穿孔法研究小脑颗粒神经元形态及突触发育

摘要

已发布更正声明： 利用 体内 出生后电穿孔法研究小脑颗粒神经元形态与突触发育. 更新了一幅图。

摘要

已发布更正声明： 利用 体内 出生后电穿孔法研究小脑颗粒神经元形态及突触发育. 更新了一幅图。

图2已从以下内容更新：

图 2：体内对出生后第7天野生型小鼠幼崽颗粒神经元前体细胞进行小脑电穿孔。（A）使用浓度为4%、流速为0.8 L/min 的异氟烷对幼崽进行麻醉，以确保在整个DNA溶液注射过程中维持麻醉状态。异氟烷的输送速率为0.8 L/min。（B）用聚维酮碘和70%乙醇对小鼠头部皮肤进行三次消毒后，做一横切口，切口跨度与双耳间距一致，以暴露后脑。（C）颅骨上白色分界线的放大图像，该分界线可作为注射位点的解剖标志。DNA构建物应注射于该标志上方1 mm范围内；虚线标示出分界线轮廓，黑色箭头指示注射位点。小脑蚓部的皱褶可能可见，有助于定位注射部位。（D）镊子型电极的放置方向，以实现高效的电穿孔。正极（+）必须朝下，以便在施加电脉冲前将带负电荷的DNA拉入小脑实质。（E）注射1 µL浓度为0.02%的快绿染料进行测试，结果显示染料局限分布于小脑蚓部第5至第7小叶之间的中段区域。请点击此处查看该图的放大版本。

至：

图 2：体内对出生后第7天野生型小鼠幼崽颗粒神经元前体细胞进行小脑电穿孔。（A）使用浓度为4%、流速为0.8 L/min的异氟烷对幼崽进行麻醉，以确保在整个DNA溶液注射过程中维持麻醉状态。异氟烷的输送速率为0.8 L/min。（B）用聚维酮碘和70%乙醇对小鼠头部皮肤进行三次消毒后，沿双耳之间距离做一切口，暴露后脑。（C）颅骨上一条白色分界线的放大图像，该分界线可作为注射位点的解剖标志。DNA构建体应注射在该标志上方1 mm范围内；虚线勾勒出分界线，黑色箭头指示注射位点。小脑蚓部的皱褶可能可见，有助于确定注射位置。（D）镊子型电极的放置方向，以实现高效的电穿孔。正极（+）必须朝下，以便在施加电脉冲前将带负电荷的DNA拉入小脑实质。（E）注入1 µL浓度为0.02%的快绿染料进行测试，结果显示染料定位在小脑蚓部第5至第7小叶之间的中段区域。请点击此处查看该图的放大版本。

方案

已发布更正： 利用 体内 出生后电穿孔法研究小脑颗粒神经元形态及突触发育. 更新了一幅图。

图2已从以下内容更新：

图 2：体内对 P7 野生型小鼠幼崽颗粒神经元前体细胞进行小脑电穿孔。（A）以 0.8 L/min 的流速输送 4% 异氟烷对幼崽进行麻醉，以确保在整个 DNA 溶液注射过程中维持麻醉状态。异氟烷的输送速率为 0.8 L/min。（B）用聚维酮碘和 70% 乙醇对小鼠进行三次消毒后，做一个横跨双耳距离的切口，暴露后脑。（C）颅骨上白色分界线的放大图像，作为注射位点的解剖标志。DNA 构建体应注射在该标记上方 1 mm 范围内；虚线标出分界区域，黑色箭头指示注射位点。小脑蚓部的脊状结构可能可见，有助于定位注射位点。（D）镊子型电极的放置方向，以实现高效的电穿孔。正极（+）必须朝下放置，以便在施加电脉冲前将带负电荷的 DNA 牵引至小脑实质内。（E）注射 1 µL 的 0.02% 快绿染料进行测试，结果显示染料局限在小脑蚓部第 5–7 小叶之间的中段区域。请点击此处查看该图的放大版本。

至：

图 2：体内对出生后第7天野生型小鼠小脑颗粒神经元前体细胞进行电穿孔。（A）使用浓度为4%的异氟烷，以0.8 L/min的流速进行麻醉，确保在整个DNA溶液注射过程中维持麻醉状态。异氟烷的输送速率为0.8 L/min。（B）用聚维酮碘和70%乙醇对小鼠头部皮肤进行三次消毒后，沿两耳之间做一纵向切口，暴露后脑区域。（C）颅骨上一条白色分界线的放大图像，该线作为注射位点的解剖标志。DNA构建物应注射在该标志上方1 mm范围内；虚线标示出此分界线，黑色箭头指示注射位点。小脑蚓部的皱褶可能可见，有助于确定注射位置。（D）镊子型电极的正确放置方向，以实现高效电穿孔。正极（+）必须朝下，以便在施加电脉冲前将带负电荷的DNA拉入小脑实质。（E）注射1 µL浓度为0.02%的快绿染料进行测试，结果显示染料集中在小脑蚓部第5至第7小叶之间的中段区域。请点击此处查看该图的放大版本。