多重离子束成像(MIBI)常用于成像组织微阵列以及拼接的连续组织区域,但目前用于设置此类实验的软件操作繁琐。拼接/SED/阵列界面是一种直观、交互式的图形化工具,旨在显著简化并加速MIBI实验的运行设置。
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多重离子束成像(MIBI)常用于成像组织微阵列以及拼接的连续组织区域,但目前用于设置此类实验的软件操作繁琐。拼接/SED/阵列界面是一种直观、交互式的图形化工具,旨在显著简化并加速MIBI实验的运行设置。
多重离子束成像(Multiplexed ion beam imaging, MIBI)是一种基于质谱技术的下一代显微成像方法 可生成组织样本中40余种蛋白质表达的多重图像,实现对细胞表型及组织架构的精细解析。当前一个关键瓶颈在于 当用户选择组织上的物理位置进行成像时,操作即开始。随着MIBI实验在规模和复杂性上的增加,制造商提供的界面及第三方工具在处理大型组织微阵列和拼接组织区域成像时变得愈发笨拙。因此,开发了一种基于网页的、交互式的、所见即所得(WYSIWYG)图形界面层——拼接/SED/阵列界面(TSAI),使用户能够通过熟悉的直观鼠标操作(如拖放、点击拖动和多边形绘制)来设定成像位置。该界面依据现代网页浏览器中已内置的网页标准编写,无需安装任何外部程序、插件或编译器。对于目前全球数百名MIBI用户而言,该界面显著简化并加速了大规模、复杂MIBI实验的设置过程。
多重离子束成像(Multiplexed ion beam imaging, MIBI)是一种可在组织学组织切片上以高达250 nm分辨率同时成像40种以上蛋白质的技术1,2,3。在使用同位素纯的金属元素标记抗体对组织切片进行染色后,MIBI仪器通过二次离子质谱法同时定量组织上各个位点的所有同位素——从而反映40种以上抗原的表达水平。通过对数百万个位点组成的网格进行扫描,所获得的40重以上的蛋白表达图像能够在保留空间信息的前提下,实现细胞边界的界定和特定细胞类型的识别1,2,3,4。该技术已在约20个研究机构被数百名研究人员用于研究数十种组织类型的细胞组成、代谢特征和/或组织结构,相关研究涵盖肿瘤免疫应答、感染因子引发的组织炎症、痴呆的神经病理学以及妊娠期间的免疫耐受等课题5,6,7,8,9,10,11。
MIBI 仪器操作中的一个关键瓶颈是设置视野(FOV)——即用于成像的 200 x 200 µm2 至 800 x 800 µm2 的组织区域。MIBI 每次仅成像一个 FOV,最大为 800 x 800 µm2,因此对更大区域成像需要将多个 FOV 拼接在一起。对组织微阵列(例如 图 1A 中的八个圆形组织)进行成像时,需放置多个相互间隔的 FOV。为设置 FOV,制造商提供的界面包含两项功能:1)载玻片的光学相机图像,其上带有十字准线,大致对应指定的成像坐标(图 1A);2)二次电子探测器(SED)图像,可显示该坐标处的精确区域,据称定位精度在 0.1 µm 以内(图 1B)。首先,用户通过光学图像粗略定位单个 FOV。由于图像分辨率仅为每像素约 60 µm,若定位偏差达两个像素(2 像素 x 60 µm/像素),标准的 400 µm FOV 将偏差 30%。因此,用户必须使用 SED 图像进行精细调整——这一过程繁琐,包含十余个步骤,涉及多个弹出窗口、在文本框中输入坐标、使用方向控制按钮缓慢移动 SED,甚至经常需要将坐标手写记录在纸上(补充图 1)。对于包含 100 个以上组织核心的组织微阵列(TMA),该过程必须重复多次。一些第三方工具可辅助初始粗略定位12,但这些工具仍需要一定的编程知识,且最终定位仍需通过上述十余步流程完成。此外,对相邻 FOV 构成的网格进行定位也极为麻烦,而这些 FOV 后续需拼接成一幅平铺的全景图像。
因此,开发了切片/SED/阵列界面(TSAI),旨在通过直观、可交互的图形界面,使用户能够快速定位大量视野(FOV)。TSAI 包含两个主要组成部分:1)基于网页的图形用户界面(web UI),用于快速放置TMA点和组织切片区域;2)与MIBI用户控制界面的集成,用于生成拼接的SED图像并调整FOV位置。如果仅使用光学图像,可先对多个FOV进行粗略定位,然后利用FOV导航/调整工具快速修正(图2,TSAI,左分支)。然而,若执行SED拼接,则可在拼接后的SED图像上精确地定位FOV,无需在SED模式下进一步调整(图2,TSAI,右分支)。这些工具对当前数百名MIBI用户具有普遍意义,即使初学者也能轻松完成拼接和TMA定位操作,并将原本复杂的MIBI运行设置时间从数小时缩短至几十分钟。
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1. TSAI 的加载
2. 加载MIBI切片并创建模板文件
3. 光学图像-载物台电机联合配准
4. 拼接式 SED 扫描
5. 组织微阵列(TMA)
6. 区域/多边形瓦片
7. 视野导航与调整
8. 生成和导入 JSON 文件
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TSAI 提供了两种设置视野(FOV)的方法(图2)。一种仅使用光学图像(图2,TSAI,左分支),类似于其他现有方法;另一种方法——生成拼接的 SED 图像——是 TSAI 独有的(图2,TSAI,右分支)。TSAI 可将 FOV 精确地绘制到该图像上,从而无需在制造商提供的界面 SED 模式下花费数小时手动调整 FOV 位置。然而,必须正确设置 SED 拼接的校正系数,否则可能导致 FOV 位置不准确。
可通过检查大面积组织切片(至少 1.5 cm 大小)的拼接 SED 扫描图像来评估 SED 拼接系数(步骤 4.1 至 4.11)。正确设置下的预期结果是相邻图块之间的组织错位极小的图像(图 3A-B)。如果 SED 成像方块相对于载物台电机存在角度偏差,或存在步进电机校准错误(例如,指令移动 400 µm,...
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多重离子束成像(MIBI)是一种强大的技术,可用于解析详细的细胞表型和组织形态结构5,6,7,8,9,10,11。目前针对MIBI的计算工作主要集中于成像后的数据处理,而在提升仪器软件在大组织微阵列(TMA)和拼接组织区域等常见应用中的可用性方面,进展甚少。随着MIBI实验在规模和复杂性上的不断增加,制造商提供的仪器界面及第三方工具在执行这些任务时已变得愈发笨拙12。因此,开发了拼接/SED/阵列界面(TSAI),使用户能够通过直观、可交互的图形界面快速定位大量视野(FOV)。
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作者声明无利益冲突。
H. Piyadasa 获得加拿大卫生研究院(CIHR)博士后奖学金(MFE-176490)的支持。B. Oberlton 获得美国国家科学基金会(NSF)奖学金(2020298220)的支持。A. Tsai 获得达蒙·鲁尼恩癌症研究基金会(DRCRF)奖学金(DRG-118-16)、斯坦福大学病理学系、Annelies Gramberg 基金以及美国国立卫生研究院(NIH)1U54HL165445-01 项目的支持。特别致谢 Avery Lam 博士、Davide Franchina 博士和 Mako Goldston 在程序测试与调试过程中提供的帮助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| MIBI 计算机 | Ionpath | ||
| MIBIcontrol(软件) | Ionpath | ||
| MIBIscope | Ionpath | 多重离子束成像(MIBI)显微镜 | |
| MIBIslide | Ionpath | 567001 | MIBI 用导电载玻片 |
| Tile/SED/Array Interface (TSAI)(软件) | https://github.com/ag-tsai/mibi_tsai/ |
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